齿瓣石斛种子培养及扩繁技术研究

研究了齿瓣石斛种子培养及扩繁技术。结果表明：低盐和椰子乳及适当的激素（BA 1.0-1.5 mg/L、NAA 0.02-0.2 mg/L）组合对石斛种子萌发有促进作用;在NAA一定时,随BA的提高,原球茎的扩繁系数提高;在BA一定时,随NAA的提高,原球茎的扩繁系数降低,但诱导出的原球茎体积大,分化的苗健壮。     

鼓槌石斛组培快繁技术体系研究

以鼓槌石斛八成熟蒴果为外植体,通过对其种子无菌萌发培养、原球茎继代增殖及生根壮苗培养基的筛选,建立鼓槌石斛的组培快繁技术体系。结果表明:1/2 MS+1.0 mg/L NAA+8.0%土豆泥+0.10%活性炭培养基效果较理想,种子萌发率较高,发芽快;最适增殖培养基为3/4 MS+3.0 mg/L 6-BA+8%香蕉泥,增殖系数可达7.23;最佳生根培养基为3/4 MS+1.0 mg/L NAA+0.5 mg/L CA+8%香蕉泥,平均根数量达7.49条。炼苗移栽到松树皮作为栽培基质的苗床上,1个月以后,成活率均达80%。     

鼓槌石斛组培苗移栽试验

以鼓槌石斛组培苗为材料进行移栽试验,研究了其生长条件,包括基质选择、炼苗移栽技术、移栽后管理等方面.结果表明:恰当的生长条件加上合理的栽培管理可以使鼓槌石斛组培苗移栽成活率达95％以上.     

鼓槌石斛仿野生种植

鼓槌石斛在医学和园林观赏方面有着重要的应用价值,近年来,市场对其的需求也在不断的加大,但市面上的石斛植物多采用人工繁殖的方式,其中的一些独特特性得不到很好的研究,基于此,主要以鼓槌石斛为主要的研究材料,对其进行仿野生种植,在云南省普洱市选择不同的寄宿树种、种植时间、肥料种类、捆绑材料以及捆绑方式,来研究石斛的仿野生种植。经过多年的摸索研究发现:与龙眼树或者橘树套种的石斛生长良好,一般平均成活率在90%以上,植株的生长质量较好,植株的重量和抽芽数量较高,与荔枝树套种的成活率最低;石斛的种植季节一般安排在2-4月,9-10月间进行;在肥料的使用种类上一般选用牛粪为宜。     

鼓槌石斛研究进展

在系统查阅相关文献的基础上,对鼓槌石斛的研究进行了综述,着重介绍了野生鼓槌石斛资源分布与现状、种苗繁育、化学成分、药理作用与活性几方面的研究情况。     

鼓槌石斛研究进展

鼓槌石斛是传统的名贵药用植物,近年来对该植物的研究取得了显著的进展。在系统查阅相关文献的基础上,对鼓槌石斛种质资源分布、化学成分、药理作用、菌根真菌及基因多态性和指纹图谱的研究进展进行总结,以为鼓槌石斛的合理利用提供依据。     

鼓槌石斛种子萌发培养与小苗组培快繁技术研究

[目的]利用鼓槌石斛蒴果,通过无菌播种萌发发育成苗及小苗快繁技术试验研究,从而获得大量种苗。[方法]用鼓槌石斛种子通过无菌播种获得大量原球茎,分别转接到4组不同的诱导芽培养基上,筛选出最适合鼓槌石斛小苗分化和成长的培养基,以其设置以N6为基本培养基,添加浓度均为1.0、1.5、2.0 mg/L的NAA和IAA,筛选最适合鼓槌石斛小苗生根壮苗培养基。[结果]将鼓槌石斛种子在MS＋6-BA1mg/L＋10%香蕉汁＋20 g/L蔗糖＋6 g/L琼脂＋1 g/L AC培养基上进行培养种子,种子萌发率达90%以上;最利于原球茎分化的培养基为N6＋NAA2 mg/L＋BA0.5 mg/L＋10%香蕉汁＋20 g/L蔗糖＋0.5 g/L牛肉蛋白胨＋5.8 g/L琼脂＋0.5g/L AC,培养出的苗整齐度高,均匀;最佳生根壮苗培养基为N6＋NAA 1.5 mg/L＋10%香蕉汁＋20 g/L蔗糖＋5.8 g/L琼脂＋1 g/LAC,苗生根数多、粗壮、整齐,叶浓绿。[结论]该研究结果为鼓槌石斛快速繁育技术提供了参考。     

鼓槌石斛开花习性与人工授粉对结实率的影响

[目的]研究鼓槌石斛开花习性及人工授粉对结实率的影响。[方法]对鼓槌石斛开花期、果实主要特征及种子进行观察,开展种内人工授粉育种试验,采用培养基离体萌发法测定不同花期的花粉活力。[结果]鼓槌石斛开花期为3月上旬~5月上旬,盛花期为3月下旬~4月下旬,从花芽萌发到完全开放需要36~40 d,鼓槌石斛不同唇瓣中心斑块颜色有4种:分别为棕橘色(RHS 165B)、深黑红色(RHS 187A)、深褐红色(RHS 183A)、深棕橘色(RHS 163A);鼓槌石斛有活力花粉比例在花蕾期为32.6%,开花当天为80.5%,开花15 d后为1.8%,直到花谢花粉仍有活力;于开花第2~3天进行人工授粉,异丛异花授粉结实率达92.9%,同丛异花结实率为58.1%,同株异花结实率为41.2%,而自花授粉结实率为20.2%。[结论]鼓槌石斛花粉在整个花期均有活力,通过种内人工辅助授粉可大大提高鼓槌石斛的结实率。     

鼓槌石斛种子萌发培养与小苗组培快繁技术研究（英文）

[目的]利用鼓槌石斛蒴果,通过无菌播种萌发发育成苗及小苗快繁技术试验研究,从而获得大量种苗。[方法]用鼓槌石斛种子通过无菌播种获得大量原球茎,分别转接到4组不同的诱导芽培养基上,筛选出鼓槌石斛最适合小苗分化和成长的培养基,以其设置以N6为基本培养基,添加浓度均为1.0、1.5、2.0mg/L的NAA和IAA,筛选最适合鼓槌石斛小苗生根壮苗培养基。[结果]将鼓槌石斛种子在MS＋6-BA1mg/L＋10%香蕉汁＋20g/L蔗糖＋6g/L琼脂＋1g/LAC培养基上进行培养种子,种子萌发率达90%以上;最利于原球茎分化的培养基为N6＋NAA2mg/L＋BA0.5mg/L＋10%香蕉汁＋20g/L蔗糖＋0.5g/L牛肉蛋白胨＋5.8g/L琼脂＋0.5g/LAC,培养出的苗整齐度高,均匀;最佳生根壮苗培养基为N6＋NAA1.5mg/L＋10%香蕉汁＋20g/L蔗糖＋5.8g/L琼脂＋1g/LAC,苗生根数多、粗壮、整齐,叶浓绿。[结论]该研究结果为鼓槌石斛快速繁育技术提供了参考。     

CO2倍增对鼓槌石斛光合作用特性的影响

研究高浓度CO2对鼓槌石斛光合作用的影响,对鼓槌石斛野生资源保护和开发利用具有重要的科学意义。CO2加倍处理后(30 d),利用气体交换技术和叶绿素荧光技术测定鼓槌石斛净光合速率、蒸腾速率、水分利用效率和叶绿素荧光等参数。结果表明:高浓度CO2使鼓槌石斛净光合效率(Pn)、胞间CO2浓度(Ci)和水分利用率(WUE)升高,而气孔导度(Cond)和蒸腾效率(Tr)降低;通过慢速荧光诱导动力学曲线得出鼓槌石斛最大光化学效率(Fv/Fm)变化不显著,实际光化学效率(Yield)和电子传递速率(ETR)升高,光化学淬灭系数(qP)显著上升,而非光化学淬灭系数(qN)显著下降。表明鼓槌石斛在未来高CO2和干旱环境条件下将具有良好的适应能力和生长优势。     

石斛属植物一种新型种苗快繁途径——种子自然繁殖方法学探讨

针对当前用于生产的石斛属植物各种育苗技术存在的不足,结合石斛种子自然繁殖的调查研究,分析石斛属植物种子自然繁殖方法的可行性,探讨种子自然繁殖的方法学研究策略,旨在降低石斛种苗培育成本,为石斛属植物的种苗快繁途径提供新的研究思路。     

流苏石斛的离体快速繁殖

以流苏石斛茎段为外植体进行离体快速繁殖研究。结果显示：茎段诱导芽的适宜培养基为MS＋BA2.0mg·L^-1＋NAA0.5mg·L-^1＋CH0.5g·L^-1,芽的诱导率达58.3％;培养基Ms＋BA4.0mg·L^-1＋NAA0.5mg·L^-1＋CH0.5g·L^-1可促进丛芽的形成,而丛芽增殖的适宜培养基为MS＋BA2.0mg·L^-1＋NAA0.2mg·L^-1＋CH0.5g·L^-1,增殖系数达6.23;试管苗生根的最佳培养基为1/2 MS＋IBA0.5mg·L^-1＋NAA0.5mg·L^-1,50d后试管苗生根率可达100％。研究还发现,壮苗的适宜培养基为1／2 MS＋BA0.5mg·L^-1＋NAA0.1mg·L^-1＋CH0.2g·L^-1,丛芽在该培养基上培养75d后,可同时完成增殖与生根程库。     

霍米斛人工繁殖栽培技术

为保护和开发利用该珍稀物种、规范种植行为,解决生产中的实际问题,从霍米斛的生物学特性、种苗繁殖、大棚栽培、管理和采收加工等方面对霍米斛人工栽培技术进行了总结。     

小美石斛茎段培养的研究

用小美石斛茎段作外殖体,进行试管繁殖。筛选出各培养阶段适宜的培养基,(1)腋芽萌生MS 6-BA5mg/L NAA0.4mg/L;(2)继代增殖MS 6-BA2mg/L NAA0.2mg/L,三种培养基MS,1/2MS,N6,以MS增殖效果最好,(3)适宜的生根培养基为1/2MS NAA0.1mg/L PP3330.1mg/L其中平放的芽块生根速度,生根质量和生根率均高于直立放置的。     

金钗石斛的组织培养和快繁技术

以宝天曼国家自然保护区野生的金钗石斛茎段为试材,消毒后接种于MS 6-BA2.0mg/L NAA0.5mg/L 2.0%蔗糖培养基上诱导出新生芽,在MS 6-BA2.0mg/L NAA1.0mg/L 2.0%蔗糖培养基上,增殖系数可达5～6,在MS KT2.0mg/L IBA0.5mg/L 2.0%蔗糖培养基上,培养30d左右,可形成3～4条粗壮的根和6～7cm的完整植株,移栽到小树皮 小兰基石 椰壳粉(1.5:1.5:1)基质上,成活率可达到95%。     

春石斛的组织培养和快速繁殖研究

试验结果表明:春石斛不定芽诱导、增殖的最佳培养基为1/2MS+6-BA1 mg/L+NAA 1 mg/L+香蕉泥100 g/L;原球茎诱导的培养基以1/2MS+NAA最佳;不加任何生长调节剂的1/2MS培养基最适宜原球茎的增殖;原球茎分化的最适基本培养基为1/2MS;最适宜的壮苗生根培养基为1/2MS+NAA2 mg/L+香蕉泥100 g/L。