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1.
[目的]探讨黄檗离体培养生根的最佳条件,为建立其再生体系提供理论依据。[方法]以黄檗试管苗为试材,研究IBA浓度、培养基和活性炭浓度对其生根的影响。[结果]IBA浓度为2.0 mg/L时,黄檗试管苗的生根率为64.2%,生根数为3.9,根长2.4 cm,且植株生长健壮;3/4MS培养基是最适合诱导黄檗试管苗生根的基本培养基,地上部生长健壮,地下部生长良好;活性炭对黄檗试管苗生根有明显促进作用,当培养基中加入1.0 g/L活性炭时,黄檗试管苗的生根率达85.1%,生根数达9.3条,根平均长度达3.1 cm。[结论]黄檗试管苗适宜的生根培养基为3/4 MS+2.0 mg/L IBA+1.0 g/L活性炭。 相似文献
2.
[目的]提高百合组培苗的质量和移栽成活率,筛选适宜的生根培养基配方。[方法]以百合组培苗为试验材料,比较不同配比基本培养基、不同浓度IBA和活性炭对百合组培苗生根的影响。[结果]基本培养基选用1/2MS为最好,添加IBA和活性炭后均加速根的形成,IBA添加的最佳浓度为0.10 mg/L,活性炭加入量以0.2 g/L为最佳。[结论]百合组培苗理想的生根培养基为1/2MS+IBA 0.10mg/L+活性炭0.2 g/L,此配方下平均生根率为100%,且根密而壮。 相似文献
3.
《延边大学农学学报》2019,(3)
为提高草莓生根工作效率,以"赤颜"草莓组培苗为材料,研究了培养基种类、生长素浓度及种类、活性炭浓度、糖源种类及浓度对生根的影响。结果表明:"赤颜"草莓组培苗在基本培养基为1/2 MS培养基,IBA浓度为0.5 mg/L时,试管苗生根率达100%,其根鲜重(75.5 mg)和干重(8.5 mg)均达最大值;且根粗壮,根数达16.8条,根长为2.6 cm。当培养基中活性炭浓度为1.0 g/L和蔗糖浓度为30 g/L时,利于"赤颜"草莓组培苗的生根及生长。因此,"赤颜"草莓试管苗生根的适宜培养基为1/2 MS+IBA 0.5 mg/L+活性炭1.0 g/L+蔗糖30 g/L+琼脂8 g/L。 相似文献
4.
多花黄精组培快繁技术研究 总被引:3,自引:0,他引:3
以多花黄精的地下根茎为材料进行组织培养,结果表明:诱导产生不定芽的适宜培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L;理想的增殖培养基为MS+6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,增殖率达5.67倍;理想的生根培养基为MS+NAA1.0 mg/L+CA(活性炭)0.3 mg/L+IBA 0.2 mg/L,生根率达93.52%,平均根数5.09条,平均根长0.93cm。生根苗经炼苗移栽后成活率达92%以上。 相似文献
5.
6.
以药用植物林荫银莲花不定芽组培苗为试验材料,研究培养基添加不同植物激素、不同质量浓度蔗糖和活性炭对组培苗生根的影响。结果表明:以1/2 MS为基本培养基,添加0.5 mg/L NAA+0.5 mg/L IBA,30 g/L蔗糖作为碳源,另加入1.0 g/L活性炭,培养55 d后,林荫银莲花组培苗的生根率为93.9%,平均根条数为10.5,根长最长达1.73 cm,根较粗且褐化轻微。 相似文献
7.
大麻试管苗生根培养基的优化 总被引:1,自引:0,他引:1
[目的]寻找适合大麻试管苗生根的培养基。[方法]以大麻试管苗为试材,设置不同的生长激素、基本培养基、蔗糖浓度和pH值处理,统计不同处理试管苗的生根数、腋芽数、茎粗和根长等指标,并计算根的诱导率。[结果]0.1 mg/L IBA和0.05 mg/L NAA处理的试管苗平均生根数最多,达2.45条/株,而0.5 mg/L IBA和0.05 mg/L NAA处理的试管苗平均生根数最少。1/2 MS和MS基本培养中的试管苗平均生根数较多,分别达到2.05和2.45条/株。30 mg/L蔗糖处理的试管苗平均生根数和根诱导率均显著高于其他处理,分别为2.25条/株和80.0%;pH值为5.8的处理试管苗平均生根数和根诱导率均最大,分别达到2.35条/株和75.0%。[结论]大麻试管苗生根的优化培养基为1/2 MS+0.1 mg/L IBA+0.05 mg/L NAA+30 mg/L蔗糖,培养基pH值为5.8。 相似文献
8.
《江苏农业科学》2016,(1)
以蓝靛果忍冬组培苗为材料,采用正交试验对影响蓝靛果忍冬分化、增殖、生根的因素进行优化筛选。结果表明,蓝靛果忍冬分化的最优组合为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA+30 g/L蔗糖,分化率可达98.43%,各因素的影响程度为6-BANAA蔗糖;增殖的最优组合为MS+25 g/L蔗糖+1.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA,增殖系数为3.81,各因素的影响程度为蔗糖6-BANAA;生根的最适宜培养基为1/2 MS+0.5 mg/L IBA+1.0 mg/L NAA,生根率达100%、平均生根数5.29条、平均根长1.45 cm,各因素的影响程度为IBA基本培养基NAA。 相似文献
9.
本研究以黄斑大吴风草叶基部的新生芽为外植体,进行组织培养快繁,结果表明:丛生芽诱导的最佳培养基为MS+6- BA 2.0 mg/L+ NAA 0.5 mg/L,诱导率为90%,芽增长1.5 cm;丛生芽增殖的最佳培养基为MS+6-BA0.5 mg/L+ NAA 0.05 mg/L,增值倍数为5,芽增长1.8 cm;生根培养的最佳培养基为1/2MS+ NAA 1.0 mg/L+ IBA1.0 mg/L+活性炭0.3 g/L,平均生根数为7条,平均根长1.2 cm,组培苗移栽成活率可达85%左右,再生植株金斑性状稳定. 相似文献
10.
对黄梁木组培快繁及规模化育苗技术进行了研究,结果表明:最适诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA0.1 mg/L+GA3 2.0 mg/L;最佳增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.05 mg/L,增殖系数达3.4以上;适宜的生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,15 d内生根率100%以上,平均根数为7.8条,平均根长为1.42 cm. 相似文献
11.
12.
几种外部因子对春石斛组培生根的影响 总被引:1,自引:1,他引:1
[目的]为春石斛种苗的规模化生产提供理论依据。[方法]以春石斛组培增殖的不定芽为外植体,研究MS培养基浓度、IBA浓度、活性炭浓度及天然物质等外部因子对春石斛试管苗生根的影响。[结果]MS培养基浓度对试管苗生根影响较大,试管苗在1/2 MS培养基中生根效果较好,生根率达95%,根多且长。在1/2 MS培养基中加入0.5 mg/LIBA和0.5 mg/L活性炭对试管苗生根及生长有明显促进作用。在培养基中添加天然物质对试管苗生根有促进作用,其中添加100 g/L椰子汁时生根效果最佳,生根率可达97%。[结论]当培养基配方为1/2 MS+0.5 mg/LIBA+0.5 mg/L活性炭+100 g/L椰子汁时,春石斛试管苗生根及生长效果较好。 相似文献
13.
[目的]寻求适合乌桕生长与生根的最佳培养基组分,以提高乌桕组培苗的成活率。[方法]以中国原产乌桕试管苗为材料,WPM为基本培养基,添加不同浓度的激素(IAAI、BA、NAA、6-BA、KT),组配成11种不同组分的培养基,比较研究不同培养基组分对乌桕植株生长与生根的影响。[结果]在11种培养基中,以附加10 g/L蔗糖8、g/L琼脂、Vc 5 mg/LI、AA 0.3 mg/LI、BA 0.5 mg/L、NAA 0.2 mg/L组分的培养基效果最佳,其组培苗的成活率为95.00%,生根率55.36%,株高(13.17±1.52)cm,根数目(14.01±0.52)根,侧根数目(13.01±0.51)根,主根长度(5.83±0.19)cm,是本研究中乌桕组培苗植株健壮生长与根生长最快的培养基。[结论]附加0.2%活性炭不利于乌桕的组培苗植株生长和根发育。 相似文献
14.
[目的]建立杉木(Cunninghamia lanceolata)优良无性系组培快繁技术体系,为杉木规模化育苗提供技术支持.[方法]以桂林市全州县15年生优良杉木单株基部或根部萌芽条的茎尖为外植体,筛选最佳HgCl2浸泡灭菌时间;以1/2MS为基本培养基添加不同激素组合进行芽的诱导和增殖,以1/4MS为基本培养基添加不同生长素或生长素组合进行生根培养,筛选适宜杉木组织培养和快繁的培养基.[结果]在改良培养基1/2MS+0.8 mg/L 6-苄氨基嘌呤(6-BA)+0.3 mg/L吲哚丁酸(IBA)中,杉木茎尖芽的诱导率达74.3%,平均芽长达2.3 cm;在改良培养基1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IBA中,杉木茎尖诱导芽的继代培养增殖倍数适中,增殖芽生长较快,有效苗数较多;在改良培养基1/4MS+0.5 mg/L IBA+1.0 mg/L ABT 6号生根粉中,杉木继代苗的生根率达90.7%.[结论]6-BA质量浓度是影响杉木外植体诱导率的主要因素,同时影响新芽的萌发数量;IBA则主要影响新芽的生长速度.适宜质量浓度的生长素可促进杉木组培苗生根,但质量浓度过高会抑制苗木生根.在实际生产中,以1/2MS+0.8 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IBA为杉木茎尖芽诱导和生长的培养基、1/2MS+0.6 mg/L 6-BA+0.3 mg/L IBA为杉木茎尖诱导芽的继代增殖培养基、1/4MS+0.5 mg/L IBA+1.0 mg/L ABT 6号生根粉为杉木组培苗的生根培养基,可实现杉木优良无性系规模化育苗. 相似文献
15.
激素因子对野生红芽大戟组培苗生根诱导的影响 总被引:2,自引:1,他引:2
[目的]为了研究激素对红芽大戟组培苗生根诱导的影响。[方法]以红芽大戟组培继代苗为试验材料,1/2 MS为基本培养基,研究了不同浓度的生长素、多效唑(MET)、生根粉(ABT)对红芽大戟组培苗生根诱导的影响。[结果]NAA不利于红芽大戟的生根诱导,IBA和IAA单一使用的最佳浓度均为0.5 mg/L,IAA 0.5 mg/L+IBA 1.0 mg/L的配组处理对根的诱导效果相对较好;MET在浓度为1.4 mg/L时对红芽大戟生根诱导效果最好;4类生根粉中2.0 mg/L的ABT8对红芽大戟生根诱导效果较好。[结论]最佳的生根诱导激素配组为MET 1.4 mg/L+IBA 0.2 mg/L,生根率、平均生根条数和平均根粗达最大,分别为89%6、.27条和0.78 mm。 相似文献
16.
[目的]更好地开发利用菝葜。[方法]以菝葜幼嫩茎段为外植体,以MS1、/2 MS1、/4 MS为基本培养基,研究不同植物激素组合对菝葜组织培养快速繁殖的影响。[结果]外植体的最佳消毒方式为0.1%升汞消毒9 min。1/2 MS1、/4 MS培养基更有利于菝葜芽的诱导、增殖及生根,6-BA对芽丛的增殖培养具有关键作用。最佳启动培养基为1/2 MS+6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L+NAA 0.2 mg/L。最佳增殖培养基为1/2 MS+6-BA 3.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L+NAA 0.2 mg/L。最佳生根培养基为1/4 MS+IBA 0.1 mg/L+NAA 1.5 mg/L+活性炭1 000 mg/L,生根率最高,达75%。[结论]该研究建立了菝葜的组织培养繁殖体系,增加了菝葜的繁殖系数。 相似文献
17.
[目的]建立红蛇果接穗组织培养体系。[方法]于早春取红蛇果接穗两年生苗半木质化茎段作为外植体,通过消毒、萌芽、增殖、生根过程建立组织培养体系。[结果]最适宜的萌芽培养基为MS+6-BA(1.0 mg/L)+IBA(0.1 mg/L),其萌芽率可达93.33%,添加PVP(0.5 g/L)和VC(100 mg/L)可以有效地防止褐化。将萌发后的芽转入MS+6-BA(1.2~1.6 mg/L)中,可以进行高效增殖的同时抑制玻璃化情况的发生,增殖倍率可以达3.79。最适宜红蛇果接穗顶芽生根的培养基为1/2MS+IBA(1.0 mg/L),生根率为34.17%。[结论]该研究可为提供大量的红蛇果组培苗以及之后的组培微嫁接提供技术基础。 相似文献
18.
激素对水仙组培苗生根的影响 总被引:1,自引:0,他引:1
[目的]确定水仙组培苗小鳞茎生根诱导的适宜激素种类和水平。[方法]以水仙栽培品种Fortissimo的组织培养小鳞茎为试验材料,以1/2MS为基本培养基,设计1.0、0.5、0.10、.05 mg/L 4个NAAI、BA浓度,研究激素对水仙组培苗生根诱导的影响。[结果]添加0.1mg/L NAA或0.1 mg/L IBA培养基处理的小鳞茎根生长健壮,生根诱导率高,与其他处理存在显著差异(P<0.05);添加0.05 mg/L IBA处理的根生长比较细短;添加1.0 mg/L NAA或0.5 mg/L IBA处理的小鳞茎生长较快,但对根的诱导效果不明显。[结论]在1/2MS培养基中,加入0.1 mg/L NAA或0.1 mg/L IBA均对水仙组培苗的生根诱导有显著促进作用。 相似文献
19.
[目的]建立红掌的组织培养再生体系。[方法]以红掌幼嫩叶柄为材料,筛选红掌愈伤组织诱导、不定芽分化、生根时的最佳激素配比。[结果]红掌叶柄愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L 2,4-D,此时愈伤组织诱导率可达80.0%;不定芽分化的最佳培养基为MS+1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L 2,4-D+1.5 mg/L KT,此时分化率可达96.7%;生根的最佳培养基为MS+1.0mg/L IBA,此时生根率可达86.7%。[结论]为红掌的快速繁殖提供了技术依据。 相似文献
20.
[目的]为红叶李的商品化生产、遗传转化和品种定向改良奠定基础。[方法]以红叶李茎段为外植体,在MS、1/2MS基本培养基中添加不同浓度的6-BA和NAA,研究不同激素浓度对红叶李增殖和生根的影响,建立红叶李的离体繁殖体系。[结果]适量浓度的6-BA和NAA组合比单独使用6-BA诱导率高,处理⑤(6-BA、NAA的浓度分别为1.0、0.2mg/L)的诱导率达75.0%,且腋芽生长良好。处理⑥(6-BA、NAA的浓度分别为2.0、0.2mg/L)的增殖系数为7.67,芽苗高度大于2cm的芽数为4.76。适合红叶李生根的最佳IBA浓度为0.5mg/L,生根率达98.3%。试管苗移栽成活率达85%以上。[结论]红叶李离体培养的最佳启动培养基为MS+6-6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L,最佳增殖培养基为MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L。 相似文献