减毒沙门氏菌载体在兽用疫苗研发中的应用

减毒沙门氏菌可以作为DNA疫苗载体表达外源抗原基因,已受到医学界的广泛重视。本文对沙门氏菌的减毒、载体疫苗的优越性及作为口服活载体疫苗在动物病毒、细菌和寄生虫疫苗的最新应用成果进行了综述。     

减毒沙门氏菌载体构建策略研究进展

减毒沙门氏菌能诱导粘膜、体液及细胞免疫,不仅其自身能够产生免疫效应,而且还能携带外源基因诱导宿主特异性应答,是具有广泛应用前景的疫苗载体。本文从减毒致弱菌株构建、外源基因高效表达等方面综述了减毒沙门氏菌载体构建策略的新进展,进而对减毒沙门氏菌活载体应用中待解决的科学问题进行了归纳。     

减毒鼠伤寒沙门氏菌载体在兽医疫苗中的运用

重组疫苗的研究中,减毒鼠伤寒沙门氏菌可以作为真核表达载体。其原理是将免疫原基因片段连接到某种真核质粒中,然后将质粒导入减毒鼠伤寒沙门氏菌,构建针对该特异病原的重组活疫苗。本文介绍了减毒鼠伤寒沙门氏菌作为DNA载体,在动物细菌、病毒和支原体重组活疫苗中的运用。     

沙门氏菌的基因工程减毒以及在DNA疫苗载体中的应用

沙门氏菌是最常见的人畜共患的重要病原菌,引起人和动物肠热症、胃肠炎、败血症等,呈全球性分布.通过基因工程技术对沙门氏菌进行减毒,感染宿主细胞后可在体内长期存活并诱导产生保护性免疫反应.同时,沙门氏菌是一种侵袭性胞内菌,减毒沙门氏菌运载编码有外源基因的真核表达质粒可在体细胞内进行持续表达,诱导产生特异性的体液和细胞免疫应答.因此,减毒沙门氏菌既可作为针对同源抗原的活疫苗,也可作为诱导针对其他病原微生物产生保护性反应DNA疫苗的载体[1].本文综述了沙门氏菌的基因工程减毒以及在DNA疫苗载体中应用方面的最新进展.     

减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗的研究进展

减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗是通过基因工程手段等方法将鼠伤寒沙门氏菌减毒,利用减毒鼠伤寒沙门氏菌将外源蛋白或抗原基因运送到机体免疫细胞内,诱导机体产生特异性免疫应答。近年来,国内外学者已通过多种方法构建了不同疾病的减毒鼠伤寒沙门氏菌活载体疫苗,其展示了良好的应用前景。本文主要对鼠伤寒沙门氏菌的生物学特性、减毒途径、应用现状及应用前景进行阐述。     

减毒沙门氏菌载体的研究进展

减毒沙门氏菌作为载体具有无可比拟的优越性,同时也有很多缺点,在不断解决这些缺点的同时使其更加完美,下面就减毒沙门氏菌载体的优缺点及应用作一个简要的总结。     

外源基因在减毒沙门氏菌载体中的遗传稳定性和表达

减毒沙门氏菌接种机体后,能够诱导自身及所携带的外源基因免疫,是具有前景的重组疫苗。文章简要介绍了减毒沙门氏菌菌株及外源抗原基因表达产物的免疫应答,重点讨论了提高外源基因在沙门氏菌中的稳定性和表达量这两方面问题。     

减毒沙门氏菌运送的口服DNA疫苗研究进展

DNA疫茁被誉为疫苗技术领域一场新的革命,但如何优化质粒DNA的免疫途径和运送方法以激发有效的免疫应答成为研究的热点.采用减毒胞内菌通过黏膜自然感染途径运送DNA疫苗成为近年来研究的热点[1].沙门氏菌是一类重要的人兽共患病原菌,目前利用它作为载体原核表达各种外源抗原已得到广泛的研究并取得良好的免疫效果;而利用沙门氏菌作为DNA疫苗运送载体的研究方兴未艾,已显示出诱人的前景.本文就减毒沙门氏菌作为外源DNA运送系统的入侵途径、诱导产生免疫应答的机制以及免疫预防传染病等方面的应用作简要综述.     

携带IBV DNA疫苗重组减毒沙门氏菌的构建及免疫原性研究

为研究携带IBV DNA疫苗重组减毒沙门氏菌免疫原性,本研究将携带有禽传染性支气管炎病毒(IBV)S1、M、N基因的pVAX1-S1、pVAX1-M和pVAX1-N重组质粒转入减毒沙门氏菌X4550株,构建IBV S1、M、N基因DNA质粒重组减毒沙门氏菌X4550疫苗株(X4550/pVAX1-S1,X4550/pVAX1-M,X4550/pVAX1-N),用间接免疫荧光法(IFA)检测重组质粒体外表达,SPF鸡经口服免疫,测定体内组织分布及稳定性、特异性IgG、IgA、CD4+和CD8+T细胞含量并进行攻毒实验。结果表明,重组质粒可在体外细胞中表达目的蛋白;重组减毒沙门氏菌X4550疫苗株可在肠、脾、肝、心、肾、肺6个组织中分布并稳定存在;特异性IgG,IgA、CD4+和CD8+T细胞显著升高(p0.01),用104EID50IBV M41株攻毒,保护率达到73%(11/15)。本研究为研制IBV基因减毒沙门氏菌疫苗提供了依据。     

以减毒鼠伤寒沙门氏菌为载体的重组NDV-HN口服疫苗的构建与鉴定

试验旨在构建表达鸡新城疫病毒(NDV)HN基因的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌SL1344ΔcrpΔasd(pYA3493-HN)。以pMD18-T-HN为模板,通过PCR扩增出NDV HN基因片段,定向插入原核表达载体pYA3493中,将重组表达质粒pYA3493-HN转入χ6097,再转入减毒鼠伤寒沙门氏菌SL1344ΔcrpΔasd,通过双酶切和PCR对质粒进行鉴定。结果表明,携带NDV HN基因片段的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌SL1344ΔcrpΔasd(pYA3493-HN)构建成功。本研究结果为开发鸡新城疫的口服基因工程活载体疫苗奠定了基础。     

结核分支杆菌重组活疫苗研究进展

结核分支杆菌(MTB)引起的结核病 是一种人兽共患的慢性传染病,短程督导化 疗是治疗该病的主要措施,卡介苗是预防该 病的惟一疫苗,但其免疫效果极不稳定。分 子生物学技术的发展为研制新型MTB疫苗 提供了理想方法,人们利用鼠伤寒沙门氏菌 (Salmonellatyphimurium,St)减毒株作为 载体,将编码MTB保护性抗原的基因导入其 中,可构建重组St疫苗,如rSt Ag85B疫苗 和rSt ESAT 6疫苗;将编码MTB保护性抗 原的基因导入小鼠巨噬细胞或骨髓细胞可构 建MTB活细胞疫苗,如J774 HSP65疫苗和 BMC HSP65疫苗;利用基因诱变可构建 MTB减毒活疫苗,如MTB嘌呤营养缺陷株, ICL基因剔除株,VitB5营养缺陷株和十一萜 醇激酶基因变异株。文章介绍了结核分支杆 菌重组鼠伤寒沙门氏菌疫苗,活细胞疫苗和 减毒活疫苗的构建及其免疫机制等方面的研 究进展。     

非洲猪瘟疫苗研制方向及进展

非洲猪瘟(African swine fever,ASF)给全球养殖业造成了巨大的威胁和挑战.非洲猪瘟病毒(African swine fever virus,ASFV)具有比寻常病毒更加巨大的基因组、迅速的变异能力和更加复杂多变的免疫逃逸机制,目前市场上仍无有效预防疫苗.科研人员几十年来,从灭活疫苗、减毒活疫苗、亚单...     

减毒沙门菌在禽用疫苗应用中的研究进展

减毒沙门菌感染宿主细胞后,可诱导机体产生强烈的体液免疫、细胞免疫和黏膜免疫反应,不仅可以用作疫苗,而且也是理想的疫苗载体.文章对禽用疫苗中的减毒沙门菌活疫苗、减毒沙门菌携带的重组疫苗和DNA疫苗的研究进行了综述,以期为新型禽用疫苗的研究提供参考.     

Salmonella enterica serovar Choleraesuis derivatives harbouring deletions in rpoS and phoP regulatory genes are attenuated in pigs, and survive and multiply in porcine intestinal macrophages and fibroblasts, respectively

Live attenuated Salmonella enterica strains have been extensively studied as potential vectors for the oral delivery of heterologous antigens. Due to its ability to target immune cells, its specific mechanism for crossing the intestinal barrier, and its swine-restricted tropism, S. enterica subspecies enterica serovar Choleraesuis (S. Choleraesuis) has attracted a great deal of interest for the production of bacterial-based oral carriers specifically adapted to swine. In this study, two mutants of S. Choleraesuis were constructed and their attenuation and intracellular fate analysed with the purpose of engineering new attenuated live strains with improved properties as oral vaccine carriers. Those strains harboured a specific deletion either within the phoP or rpoS genes, which encode virulence-related regulators in S. Typhimurium. In comparison to the wild-type parental S. Choleraesuis, the mutant strains, especially DeltaphoP, were extremely low in virulence in the murine model and in the natural host, the pig. Moreover, when compared with a commercial live vaccine strain, SC-54, the two mutants showed a higher level of attenuation in mice and DeltaphoP also in pigs. In addition, DeltarpoS and DeltaphoP presented a proliferation and survival phenotype within swine intestinal primary fibroblast and macrophage cell cultures, respectively. Collectively, the present results indicate that the DeltarpoS and DeltaphoP strains of S. Choleraesuis gather adequate features to be potential candidates for vaccine vectors for the specific delivery of heterologous antigens adapted to pigs.     

猪支原体肺炎疫苗的免疫原理及应用效果概述

猪支原体肺炎灭活疫苗和弱毒活疫苗的临床应用均有很好的效果。简述了猪支原体肺炎灭活疫苗以体液免疫为主、弱毒活疫苗以细胞免疫和粘膜免疫为主的不同免疫学特性,分析认为占位效应可能是猪支原体肺炎弱毒活疫苗独特的免疫原理之一,提出了灭活疫苗可能的改良方向及保证弱毒疫苗高效免疫的三项措施,以期为猪支原体肺炎防控提供参考。     

高致病性猪蓝耳病弱毒疫苗与灭活疫苗的免疫效果评估试验

在相同饲养条件下,对35日龄仔猪分别使用高致病性猪蓝耳病弱毒疫苗与灭活疫苗进行免疫接种。在接种当天、接种后28d、58d分别检测高致病性猪蓝耳病免疫抗体水平。结果显示,使用弱毒疫苗免疫的试验猪,其高致病性猪蓝耳病抗体上升速度和抗体水平均优于使用灭活疫苗的试验猪。弱毒疫苗可在接种后21～28d产生免疫力,免疫期为4个月。猪繁殖与呼吸综合征流行地区应该首先考虑使用弱毒疫苗。     

口蹄疫新型疫苗研究进展

口蹄疫是由口蹄疫病毒感染引起的偶蹄动物共患的急性、热性、接触性传染病,接种疫苗是特异性预防口蹄疫的有效手段,口蹄疫疫苗主要有弱毒疫苗、灭活疫苗及新型疫苗。自20世纪80年代开始,基因工程亚单位疫苗、合成肽疫苗、病毒活载体疫苗、基因缺失疫苗、重组表位疫苗、核酸疫苗等新型疫苗研究日趋活跃,现对各类型疫苗的研究进展作一综述。     

核酸疫苗研究进展

核酸疫苗 (DNA疫苗 )是 2 0世纪 90年代诞生的一种新型疫苗 ,具有能够激发机体全面免疫反应、不散毒、便于储存和运输等优点。抗原递呈细胞在 DNA疫苗诱导产生的 CTL反应中起主导作用。 DNA疫苗的运输载体 (脂质体、减毒突变的胞内菌等 )、佐剂 (细胞因子等 )以及疫苗接种方法和途径等因素可以提高和改变 DNA疫苗的免疫效果与反应类型。 DNA疫苗自诞生以来 ,其安全性一直是人们关心的问题 ,也是 DNA疫苗得以日后应用于临床的关键。     

Comparative immunogenicity of M. hyopneumoniae NrdF encoded in different expression systems delivered orally via attenuated S. typhimurium aroA in mice

The Mycoplasma hyopneumoniae ribonucleotide reductase R2 subunit (NrdF) gene fragment was cloned into eukaryotic and prokaryotic expression vectors and its immunogenicity evaluated in mice immunized orally with attenuated Salmonella typhimurium aroA CS332 harboring either of the recombinant expression plasmids. We found that NrdF is highly conserved among M. hyopneumoniae strains. The immunogenicity of NrdF was examined by analyzing antibody responses in sera and lung washes, and the cell-mediated immune (CMI) response was assessed by determining the INF-gamma level produced by splenocytes upon in vitro stimulation with NrdF antigen. S. typhimurium expressing NrdF encoded by the prokaryotic expression plasmid (pTrcNrdF) failed to elicit an NrdF-specific serum or secretory antibody response, and IFN-gamma was not produced. Similarly, S. typhimurium carrying the eukaryotic recombinant plasmid encoding NrdF (pcNrdF) did not induce a serum or secretory antibody response, but did elicit significant NrdF-specific IFN-gamma production, indicating induction of a CMI response. However, analysis of immune responses against the live vector S. typhimurium aroA CS332 showed a serum IgG response but no mucosal IgA response in spite of its efficient invasiveness in vitro. In the present study we show that the DNA vaccine encoding the M. hyopneumoniae antigen delivered orally via a live attenuated S. typhimurium aroA can induce a cell-mediated immune response. We also indicate that different live bacterial vaccine carriers may have an influence on the type of the immune response induced.