菊花组织培养技术研究

以菊花的叶片为外植体,在MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L培养基诱导叶片产生愈伤组织,并进行丛生芽的继代培养,研究6-BA和NAA不同配比对愈伤组织丛生芽的分化及不同浓度的IBA对根诱导的影响,并对试管苗的移栽成活率进行了比较。结果表明:丛生芽诱导的最适培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;试管苗在1/2MS+IBA 0.5 mg/L的生根培养基上生根效果最佳;在练苗3 d时,试管苗移栽的成活率最高,达95%以上。通过调节生长素与细胞分裂素的浓度比例可以有效的控制菊花丛生芽的分化、生长及生根。     

菊花组织培养技术研究

通过组培试验,初步得出了菊花组培育苗时最佳的材料选取及诱导、增殖和生根的最佳培养基配方:用花蕾做外植体,在MS BA0.1 mg/L的培养基上接种诱导分化丛生芽,然后再在MS BA0.1 mg/L的培养基上快速增殖,在1/2MS NAA0.1 mg/L培养基上生根壮苗,再出瓶培养成生产用苗.     

不同食用菊花品种主要营养成分的比较

研究了10个不同食用菊花品种中微量元素、氨基酸和总黄酮等物质的含量。结果显示：食用菊花中Fe、Zn的含量相对较多,Cu含量其次,Se含量最低。总体来说,Long5和Xiab的微量元素含量水平较高。对食用菊花氨基酸含量的分析显示：谷氨酸的含量水平最高,其次是天门冬氨酸、脯氨酸和亮氨酸;Long4的氨基酸含量水平最高,其次是Long5、Long2和Long1。同时发现,Long1和Long2的总黄酮含量显著高于其他品种;Xiab蛋白质含量水平最高,其次是Zaoch、Long2和Long5;各品种可溶性糖和K、Na含量差异不大。     

菊花的组织培养技术规程

菊花(Dendranthema morifolium)为菊科菊属宿根草本花卉,园艺品种和栽培品种繁多,是我国的十大名花之一。菊花开放在百花凋零的仲秋之节,傲霜而立,     

菊花不同外植体组培快繁及其再生体系的研究

以菊花不同外植体为试材,采用离体培养快速繁殖的方法,研究菊花不同外植体在不同的培养基中诱导不定芽再生的频率。结果表明:菊花不同基因型外植体在含适宜6-BA、NAA等激素的培养基中形成愈伤组织的难易程度不同,愈伤组织诱导形成不定芽的能力强弱也不一样;不同基因型菊花外植体的不定芽诱导率高低排序是花蕾花瓣茎段叶片;对菊花的花蕾、花瓣、茎段和叶片来说最适合的培养基配方是MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.2mg/L,不同培养基诱导不定芽的能力为花蕾花瓣茎段叶片,其中,菊花花蕾和花瓣的再生能力较强。最合适的生根培养基是1/2MS+NAA 0.2mg/L。该研究成功的建立了菊花不同外植体离体培养再生途径,并获得了再生植株。     

菊花的快速繁殖

以带顶芽的菊花茎段为外植体,接种在诱导侧芽生长培养基中(MS NAA0.2mg/L 6-BA2.0mg/L),25d左右诱导成芽,再将芽接种于愈伤组织诱导培养基中(MS NAA0.1mg/L 6-BA3.0mg/L)进行继代培养,最后接种于生根培养基中(1/2MS NAA0.1mg/L),15d即可生根,30～35 d平均生根率达100%.将生根试管苗开盖练苗,移栽,成活率达95%以上.     

菊花的组织培养和快速繁殖

菊花（Dendranthema morifolium）是世界上栽培面积较大的花卉,其用途广泛,不仅能供观赏、布置园林、美化环境,而且可食用、药用。近年来市场对菊花的需求量越来越大,其经济价值越来越高。因此,大量快速繁殖技术就成为菊花栽培取得高经济效益的关键。生产上常用的扦插、分株、嫁接等繁殖方法都不能在短时间内提供大量种苗。     

菊花花瓣的组织培养

以菊花花瓣为外植体,在离体条件下既可通过诱导愈伤组织,再由愈伤组织诱导不定芽发生,也能直接由外植体表面诱导不定芽发生.在试验中探讨了NAA,6-BA对诱导愈伤组织和不定芽的影响,并筛选出诱导愈伤组织的最佳脱分化培养基为MS 6-BA 1.0 mg/L NAA0.2mg/L;诱导不定芽的最佳分化培养基为MS 6-BA 2.0mg/L NAA0.1 mg/L.     

菊花花瓣的组织培养技术研究

以紫色线状菊花花瓣为外植体,研究了不同培养基组成、外植体摆放方式、光照条件对其再生的影响.结果表明:菊花花瓣诱导适宜光照时间是12～16 h/d;花瓣花背向上比花背向下效果不定芽的诱导效果好,而在愈伤组织诱导时花背向下比花背向上效果好;MS+NAA 1.0 mg/L或2,4-D 1.0 mg/L+6-BA 1.0 mg/L可作为外植体的愈伤组织诱导的培养基;MS+6-BA 1.0 mg/L能直接从花瓣上诱导产生不定芽;MS+IBA 0.2 mg/L+6-BA 1.5 mg/L丛生芽诱导率高,且产生的丛生芽质量高;1/2MS+IBA 0.3 mg/L为适宜的生根培养基.     

药用菊花不同栽培类型植物学形态比较

目的:探究药用菊花不同栽培植物的植物学形态的不同,为日后栽种药用菊花以及优良品种的选育提供理论帮助。方法:随机区组田间试验设计,对药用菊花的叶片形状、头状花序中舌状花以及管状花的颜色进行对比,并结合统计学方式,分析药用菊花不同栽培类型的植物学形态。结果与结论:药用菊花的不同栽培类型植物学的形态存在差异,并且菊花的叶片锯齿数以及叶柄长度为相对独立的性状,是不同药用菊花叶片形态的关键因素。     

切花夏菊促成栽培技术研究

以夏菊品种夏黄为材料在日光温室内对切花夏菊的促成栽培技术进行了研究,经过适当 的种苗准备、采穗时间、插穗冷藏等处理以后,夏黄的始花期可提前到１月上旬。叶面喷施乙烯利１０００mg/Ｌ以后组侏形成脚芽的数量多于传统的施肥埋土处理。乙烯利处理后侧芽表现为莲座状生长,而脚芽生长正常,但量以脚 和侧芽为插穗进行促成栽培时,脚芽开花较晚,表现出更旺盛的营养生长特性。扦插、定植日期较早时开花较早。插穗冷藏后,从定     

一品红的组织培养研究

以一品红腋芽、顶芽、茎段、嫩叶为初次诱导外植体,对一品红的组织培养途径进行研究,建立了一品红植株再生体系.结果表明:组织培养的取材部位为腋芽、顶芽和茎段.诱导愈伤组织外植体为茎段,培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L+蔗糖30 g/L.诱导丛生芽的外植体为腋芽、顶芽和愈伤组织,培养基配方为腋芽、顶芽:MS+6-BA 0.6mg/L+NAA0.1 mg/L+蔗糖30 g/L;愈伤组织:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L.丛生芽继代增殖的培养基配方为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L+蔗糖30 g/L.生根培养基配方1/2MS+NAA 1.0 mg/L+蔗糖30 g/L.     

宽叶红门兰组织培养育苗研究

以花梗腋芽为外植体,筛选出宽叶红门兰组织培养育苗的适宜培养基配方。结果表明:宽叶红门兰最佳诱导培养基MS+BA 2.0 mg/L,增殖培养基MS+BA 1.5 mg/L+NAA 0.3mg/L,生根培养基1/2MS+BA 0.1 mg/L+NAA 1.0 mg/L。     

“中宁小枣”组培快繁技术研究

以宁夏中宁小枣种仁为外植体,进行了愈伤组织、不定芽诱导、分化、生根试验研究。结果表明:MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 1.0mg/L为最适合种子萌芽诱导的培养基;MS+KT 2.0mg/L+IBA 1.0mg/L+GA31.0mg/L为最佳试管苗分化的培养基;IBA和NAA能明显促进难繁植物生根反应,1/2MS+IBA 0.8mg/L+NAA 0.2mg/L为最适合试管苗生根培养基。     

水毛茛组织培养研究

以水毛茛带腋芽茎段为外植体进行离体培养研究。结果表明:带腋芽茎段在6-BA1.0mg/L+IBA 0.1mg/L激素配比下能直接诱导出大量生长健壮的丛生芽,诱导率达66.7%。最佳生根培养基为1/2MS+IBA 2.0mg/L,生根率达72.0%。对培养方式和培养温度研究得出,液体培养比固体培养更有利于丛芽的诱导和生长,较适合的培养温度为25℃。生根苗练苗3 d后,移入自来水中,成活率达63.3%。     

菊花珍品绿牡丹的组培技术研究

以菊花珍品绿牡丹的茎段为外植体,MS为基本培养基,进行了离体培养.结果表明:初始培养的较好培养基为MS BA 0.5 mg/ L NAA 0.1mg/L,丛生芽增殖培养的最佳培养基为 MS BA 0.2 mg/ L NAA 0.1 mg/L,最佳生根培养基为1/2 MS NAA 0.05 mg/L.     

食用夏菊促成栽培技术研究

为开发食用夏菊的促成栽培技术,从10月10日起,2品种的扦插苗经过5℃的低温处理30～40 d后,栽植于10℃以上的加温温室内,1月下旬就可以采收,单株商品花重约279～319 g.以此建立起食用夏菊1月底促成栽培技术.     

不同海拔蕨麻组织培养的初步研究

对不同海拔蕨麻茎尖培养芽的形成和生长进行了研究。结果表明:不同海拔的蕨麻最适宜芽分化的生长调节剂配比情况为:生长于较低海拔的是NAA 0.5 mg/L+BA 1.0 mg/L;居中的是NAA 0.5 mg/L+KT 1.0 mg/L;较高海拔的是NAA 0.5 mg/L+BA 0.5 mg/L。从芽的长势看,3种海拔蕨麻芽的的生长均较旺盛,无显著差异。     

“库拉索”芦荟的组织培养研究

以“库拉索”芦荟为试材,以MS为基本培养基,添加不同浓度的NAA和6-BA,研究不同浓度激素组合对“库拉索”芦荟不定芽诱导及组培苗生根的影响.结果表明:MS+6-BA 4.0mg/L+NAA 0.2 mg/L+AC 500 mg/L为最佳的不定芽诱导培养基;继代培养以MS+6-BA 4.0mg/L+NAA0.1 mg/L+AC 500 mg/L的效果最好;生根培养基以MS+NAA 1.5 mg/L+AC0.12％最佳.