脂质体转染胚盘细胞制备携pEGFP-C2基因的转基因鹌鹑

利用脂质体转染第X期胚盘细胞的方法将外源质粒pEGFP-C2经脂质体包裹后注射到鹌鹑种蛋X期胚盘下腔,处理种蛋110枚,封口后孵化。出壳9只G0代,出壳率为8.18%。经检验6只鹌鹑中有4只为阳性,阳性率为66.67%。对成年的4只转基因鹌鹑中的1只内脏组织进行PCR分析以及切片荧光检测,证实外源基因在G0代成年鹌鹑组织中成功表达。将3只成年转基因鹌鹑分别与野生型鹌鹑进行杂交,得到G1代阳性率分别为33.96%、20.59%、10%。再将3只成年转基因公母鹌鹑之间进行杂交,得到G1代阳性率分别为10.87%、42.86%。证实利用脂质体转染胚盘细胞制备转基因鹌鹑是可以将外源基因整合到G0代生殖系中,且外源基因能遗传给后代。     

脂质体转染胚盘细胞将外源质粒pEGFP-C2导入鹌鹑胚的研究

运用脂质体转染第Ⅹ期胚盘细胞的方法将外源质粒pEGFP C2经脂质体包裹后注射到鹌鹑种蛋Ⅹ期胚盘下腔,孵化种蛋.提取孵化6d的鹌鹑胚基因组DNA,进行PCR检测,嵌合体阳性率为84％,证实外源基因在胚胎中的表达.对孵化至出壳的G0代鹌鹑组织进行DNA提取并PCR分析,以及组织切片荧光检测,证实外源基因在G0代鹌鹑组织中成功表达.结果表明脂质体转染胚盘细胞是一种制备转基因鹌鹑行之有效的方法.     

阳离子脂质体转染家蚕培养细胞的技术体系研究

阳离子脂质体转染家蚕培养细胞是家蚕基因功能研究的重要技术之一。利用阳离子脂质体Lipofectamine2000与pBac[A3Neo+A3EGFP]转基因表达载体,对家蚕卵巢细胞BmN-SWU1、BmN-SWU2、BmN和草地贪夜蛾卵巢细胞Sf21进行了外源DNA质量、脂质体用量、转染细胞密度和转染孵育时间等4个转染条件的优化实验,筛选到了阳离子脂质体转染效率最高的细胞系BmN-SWU1。BmN-SWU1细胞的最佳转染条件为:外源DNA0.6μg,脂质体2.5μL,细胞密度1×105mL-1,无血清条件下孵育24 h。此条件下转染效率可达55.08%。用抗生素G418筛选转染后的BmN-SWU1细胞,建立了GFP转基因细胞系。     

胚盘下腔显微注射慢病毒载体制备转基因鹌鹑

利用显微注射法给每枚新鲜鹌鹑种蛋胚盘下腔注射滴度为1×109 TU/mL人类免疫缺陷病毒I型(human immunodeficiency virus-1,HIV-1)慢病毒载体1μL,直接封口后孵化出雏,应用倒置荧光显微镜及分子生物学方法检测。结果显示:在注射慢病毒后第4天,倒置荧光显微镜下观察到发育胚胎卵黄膜上绿色荧光蛋白较强表达;试验操作240枚鹌鹑种蛋,孵化出雏34只,孵化率为14.1%;对新出雏鹌鹑解剖后,可检测到喙部、眼部、羽毛、肝脏、肾脏、盲肠、肺脏、小肠、大肠、输卵管、心脏、胸肌及大脑等内脏器官中绿色荧光蛋白广泛性表达,但在性腺中绿色荧光蛋白表达信号较弱;对发育到性成熟期的G0代19只雄性鹌鹑精液基因组聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)检测,其中3只为阳性,阳性率为15.7%(3/19);在3只阳性雄性鹌鹑的236只后代中,有4只经PCR及印迹杂交(Southern-blot)检测为阳性,阳性率为1.69%(4/236)。结果表明:利用慢病毒载体胚盘下腔注射成功生产出转基因鹌鹑,为转基因禽类制备提供了一种简便易行的好方法。     

脂质体介导法转染体细胞效率的优化

为建立脂质体介导的高效体细胞转染体系,采用脂质体TransfastTM包裹编码增强型绿色荧光蛋白(EGFP)的pCMV-EGFP质粒,转染5～13代山羊胎儿成纤维细胞,并用流式细胞仪检测不同DNA剂量、细胞汇合度、血清、转染时间及脂质体与DNA比例等参数对转染效率的影响。实验发现0.75μgDNA按1∶1的脂质体与DNA比例,在无血清条件下转染汇合50%细胞3h,转染效率最高可达40.7%±5%。4h转染时间、细胞汇合80%及转染体系中有血清会降低转染效率。随着DNA剂量的增加,转染效率呈剂量依赖性增高,但山羊成纤维细胞的活细胞数显著下降。实验表明TransfastTM能高效安全地介导外源基因转染山羊成纤维细胞。     

阳性脂质体介导的转染法的研究

阳性脂质体介导的转染法是一种新的高效转染技术,以转染效率高,对外源核酸的大小无限制并可在体内和体外进行转染等优点已逐渐成为转染外源核酸进入真核细胞的重要方法.作者结合自己的试验结果及分析就阳性脂质体的组成、脂质体-DNA复合物(Lipoplex)的形成原理、基因转染的机制及影响转染效率的因素等作一综述.     

脂质体法转染山羊骨骼肌特异细胞条件的优化

试验旨在通过脂质体转染法检测pIMAU-EGFP载体在山羊骨骼肌细胞中的表达情况,并探索其最佳的转染条件。在构建的适合携带外源基因的山羊骨骼肌特异表达载体pIMAU-EGFP基础上,以绿色荧光蛋白为报告基因,采用脂质体转染法检测了pIMAU-EGFP载体在山羊骨骼肌细胞中的表达,并对转染条件进行了摸索。试验结果表明,成功把测序验证正确的pIMAU-EGFP载体转染到山羊骨骼肌细胞中,筛选的最佳转染条件:脂质体与质粒的最佳比例为1：2,质粒浓度为3.5 μg/μL,细胞密度不低于80%,以转染24~36 h观察记录转染效率为宜。本试验初步建立了转染山羊骨骼肌细胞的方法,绿色荧光蛋白可作为报告基因优化脂质体转染条件,这将为快速和规模化筛选山羊肉质特性相关基因提供新思路和研究方法。     

基因转染真核细胞的应用及3种常用非病毒转染方法的优化

随着生命科学的发展．将外源基因导入动物体内已成为一项重要的基因工程技术。为众多畜牧兽医、生物学及医学领域的研究室所采用．获得了许多有价值的研究成果。同时也引起了食品等生产领域的广泛兴趣，成为商业的热点。现就哺乳动物基因转移技术的应用及3种常用非病毒转染方法的优化作一简要的综述。     

以骡鸭为宿主的PGCs转染途径制备转基因家禽

转基因技术在基础理论研究和生产实际中都展示出良好的应用前景。目前,哺乳类与鱼类的转基因技术已相当成熟,并获极大成功,而家禽的转基因技术还十分落后。家禽为体内受精,受精后在卵子周围形成卵白、壳膜及蛋壳,同时受精卵发生快速分裂。受精约20h后产出体外时,胚胎已发育到6000个细胞。因此,对家禽进行早期遗传操作十分困难。尽管如此,国外仍在努力探讨克服家禽胚胎遗传操作的难题,并取得一定的进展。据报道,到目前为止国外实验室已研究的家禽转基因技术主要有:1逆转录病毒感染技术,2DNA显微注射技术3精子介导法[1,2]。其中逆转录病毒感…     

Transgenic chimera quail production by microinjecting lentiviral vector into the blood vessel of the early embryo

In the past, several strategies have been used to generate transgenic birds. The most successful method has proven to be injection of lentiviral vector into the subgerminal cavity of the newly laid egg. In this study, we directly injected lentiviral vector into the blood vessel of HH13–15 quail embryos to produce transgenic chimeras. In the manipulated, hatched birds, the green fluorescent protein (GFP) gene driven by a cytomegalovirus (CMV) promoter was extensively expressed. All tissues analyzed were GFP‐positive, and gonad cells from some of the manipulated embryos expressed GFP. The semen genome of 21.4% of mature male birds was determined to be GFP‐positive by PCR, indicating these male birds were transgenic chimeras.     

Characterization and expression of non‐polymorphic liver expressed antimicrobial peptide 2: LEAP‐2 in the Japanese quail,Coturnix japonica

Liver‐expressed antimicrobial peptide 2 (LEAP‐2) is a cationic peptide that plays an important role in innate immunity for host defense. The aim of this study was to characterize the LEAP‐2 gene in the Japanese quail (Coturnix japonica). Japanese quail LEAP‐2 (CjLEAP‐2) was identified from the Japanese quail draft genome database by a local BLAST analysis using chicken LEAP‐2 (GgLEAP‐2). The exon‐intron structure of CjLEAP‐2, analyzed from three quails, is composed of three exons, as is the chicken LEAP‐2 homolog (GgLEAP‐2). An analysis of the coding sequence revealed that CjLEAP‐2 is 231 bp long, like GgLEAP‐2, and 93% identical to GgLEAP‐2 at the nucleic acid level. The predicted amino acid sequence of CjLEAP‐2 contained the liver‐expressed antimicrobial peptide 2‐precursor domain and four cysteine residues characteristic of the LEAP‐2 protein. The amino acid sequence of the mature peptide of CjLEAP‐2 was 100% identical to that of GgLEAP‐2. We confirmed that CjLEAP‐2 was transcribed in at least seven tissues, including the digestive system. Additionally, the mature peptide region of CjLEAP‐2 exhibited no polymorphisms in 99 quails from six strains. Taken together, these findings indicate that CjLEAP‐2 is non‐polymorphic and therefore, it likely plays an important role in the innate immunity of quail as it does in chicken.     

真核表达NDV F基因重组质粒的构建及其在CEF细胞中的转染

通过PCR方法自含NDVZF基因的克隆质粒中扩增NDVF基因 ,将其与真核表达载体pcDNA3..1/V5_His_TOPO重组。经核酸内切酶酶切 ,阳性克隆鉴定准确无误 ,核酸序列测定结果与原始基因比较 ,同源性大于 99% ,启始密码和终止密码未出现变异 ,将该重组质粒命名为pcDNANDVZF。将pcDNANDVZF在脂质体作用下转染CEF细胞 ,用间接免疫荧光试验检测 ,结果证明pcDNANDVZF可在CEF细胞中大量表达F蛋白。     

猪MEF2C基因慢病毒表达载体构建及C2C12细胞转染条件的优化

MEF2C基因能够控制肌细胞分化过程中的基因转录,特别在骨骼肌、心肌和平滑肌中介导细胞的分化。本研究将猪 MEF2C 基因化学合成后经 Bam HI 和 Asc I 双酶切后克隆到慢病毒表达载体 pLen-ti6.3_MCS_IRES2-EGFP中,获得的重组质粒用限制性内切酶酶切分析和测序鉴定;利用慢病毒阴性对照侵染靶细胞C2C12来确定最佳MOI值以及靶细胞最适抗生素Blasticidin剂量。结果显示猪MEF2C基因成功克隆到慢病毒表达载体中;该重组质粒侵染靶细胞C2C12的最佳MOI值为300;靶细胞抗生素的筛选剂量为4μg/mL,维持剂量为3μg/mL上述试验为建立MEF2C稳定过表达细胞系提供了前期工作基础。     

猪瘟病毒E2基因密码子优化后在昆虫细胞中的表达

将猪瘟病毒E2基因密码子改造后,克隆入pFastBac1质粒载体,经转座、转染后构建重组杆状病毒.并对表达产物进行鉴定分析.结果:E2基因改造后与设计序列一致;成功获得了重组杆状病毒(BAC/SE2M),采用猪瘟E2单抗WH303进行Western-blot和ELISA鉴定,证明:表达的CSFV E2蛋白特异性好,纯化后的E2蛋白,可用于猪瘟抗体检测试剂盒的开发.