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1.
【目的】建立华重楼组培快繁技术体系。【方法】以华重楼幼苗为试材,研究外植体预处理方式
和消毒方法,筛选适宜诱导的外植体,筛选不定芽诱导、增殖以及生根和结鳞茎最佳培养基。【结果】华重楼
外植体先经过 0.5% 多菌灵浸泡 2 h,再利用 75% 乙醇浸泡 45 s 和 0.1% HgCl2 消毒 10 min,污染率最低(1.67%),
诱导的不定芽长势最好。高 5~10 cm、带根系的华重楼幼苗或去掉茎叶的幼苗是最适外植体,不定芽诱导最佳
培养基为 WPM+2.0 mg/L ZT+0.1 mg/L NAA+30 g/L 蔗糖,诱导率达 98.33%,萌发的新芽生长更快;不定芽增殖
最适培养基为 MS+2.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L IAA+30 g/L 蔗糖,培养 90 d 后增殖系数为 3.75;不定芽生根和结鳞茎
最适培养基为 WPM+2.0 mg/L ZT+0.1 mg/L NAA+30 g/L 蔗糖,生根和结鳞茎率达 96.67%,根系数 3.84 条,根长
4.15 cm,鳞茎直径 0.86 cm。生根苗 3—5 月份移栽到基质为泥炭土︰珍珠岩︰河沙 =2 ∶ 1 ∶ 1 的组合物中成活
率最高,为 30%。【结论】建立了适合华重楼幼苗组培快繁的技术体系,为华重楼的资源保护及规模化生产优
质种苗奠定了基础。 相似文献
2.
为了建立和优化‘燕山红栗’组培快繁体系,以种子为材料,在种子萌发后,取带腋芽茎段作为外植体,通过正交试验和单因素随机区组实验筛选快繁体系最适宜的培养条件。实验结果表明:最适宜种子萌发的基础培养基为WPM,最适茎段初代诱导培养基为WPM+1.0mg/L ZT+0.15mg/L NAA,诱导率达到90.56%;最佳增殖培养基为WPM+1.5mg/L ZT+0.15mg/L NAA,增殖系数可达到3.32;将试管苗基部于2mg/L IBA中浸泡4min后接入WPM基础培养基得到最大生根率,为55.33%。 相似文献
3.
为了建立和优化‘燕山红栗’组培快繁体系,以种子为材料,在种子萌发后,取带腋芽茎段作为外植体,通过正交试验和单因素随机区组实验筛选快繁体系最适宜的培养条件。实验结果表明:最适宜种子萌发的基础培养基为WPM,最适茎段初代诱导培养基为WPM+1.0mg/L ZT+0.15mg/L NAA,诱导率达到90.56%;最佳增殖培养基为WPM+1.5mg/L ZT+0.15mg/L NAA,增殖系数可达到3.32;将试管苗基部于2mg/L IBA中浸泡4min后接入WPM基础培养基得到最大生根率,为55.33%。 相似文献
4.
为建立一套完整、高效的蓝莓快繁体系,以南高丛蓝莓‘南金’的幼嫩枝条为试验材料,取带腋芽的茎段为外植体,分别进行外植体消毒、丛生芽诱导、组培苗继代增殖、组培苗生根和组培苗移栽试验。结果表明:用5%Na Cl O溶液消毒10 min、用0.1%Hg Cl2溶液消毒7 min时外植体的消毒效果最好;蓝莓茎段诱导形成丛生芽的最佳培养基是改良WPM+ZT 4.0 mg/L,增殖倍数达3.86,平均芽高为19.4 mm;组培苗最佳继代增殖培养基是改良WPM+ZT 1.0 mg/L,增殖倍数为1.82,平均株高达44.7 mm;组培苗最佳生根培养基组合是改良1/4 WPM+IBA0.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L;组培苗最佳移栽基质是蛭石+草炭土(体积比1∶1),移栽成活率可达96.95%。 相似文献
5.
以矮首领紫薇当年生半木质化带腋芽茎段、硬枝茎段以及叶片为外植体,从消毒时间、启动培养基、增殖培养基和生根培养基选择等方面进行离体培养体系的优化。结果表明,茎段为较好的外植体。最佳消毒时间:带腋芽茎段用0.1%升汞处理8 min,诱导率为66.67%;带水培芽茎段用0.1%升汞处理4 min,诱导率为65.55%;叶片用0.1%升汞处理4 min,诱导率为55.56%。带腋芽茎段最佳启动培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.10 mg/L,诱导率为83.33%。腋芽和水培芽的最佳增殖培养基均为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.30 mg/L。腋芽增殖系数为2.42,芽长为3.2 cm;水培芽增殖系数为3.21,芽长为2.1 cm。腋芽最佳生根基本培养基为1/2MS,最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg/L,生根率为96.67%;水培芽最佳生根培养基为1/2MS+IBA0.5 mg/L+活性炭(AC)0.1 g/L,生根率为81.25%。 相似文献
6.
以藜麦带腋芽茎段为外植体,通过外植体消毒、腋芽诱导、不定芽增殖、生根培养和驯化移栽等过程建立藜麦离体再生体系。结果表明,带腋芽茎段的最佳消毒方案为75%酒精30 s、0.1%HgCl_2 9 min;腋芽诱导最佳培养基为MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L,该培养基条件下,萌芽率为90.0%,芽体饱满;不定芽增殖最适培养基是MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,该培养基条件下,增殖系数为4.9;最优生根培养基为1/2 MS+IBA 0.5 mg/L,该培养基条件下生根率为76.7%,不定根数量多,根较粗壮;最佳移栽基质为蛭石∶草炭土体积比3∶1,该基质条件下,组培苗移栽成活率可达93.3%、生长高度为2.86 cm。 相似文献
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8.
利用两种优良成龄蓝莓的茎段腋芽为外植体,研究了基本培养基、植物生长调节剂对诱导蓝莓丛生芽增殖的影响,剪除丛生芽对诱导新一代丛生芽增殖的影响,同时进行了试管微芽继代增殖培养.结果表明:南高丛蓝莓丛生芽最佳诱导增殖培养基为WPM+ ZT 2.5 mg/L,试管微芽继代增殖最适培养基为WPM+ZT 0.3 mg/L;兔眼蓝莓丛生芽最佳诱导增殖培养基是WPM-A+ZT 2.5 mg/L,试管微芽继代增殖最佳培养基是WPM+ZT 2.0 mg/L.剪除丛生芽对诱导新一代丛生芽具有较显著促进作用. 相似文献
9.
《云南农业大学学报(自然科学版)》2015,(1)
采用无籽刺梨嫩枝茎段为外植体,MS为基本培养基,进行无籽刺梨组织培养研究,探讨了影响无籽刺梨组培快繁的主要因素,包括外植体的消毒;最佳激素浓度及组合;最佳生根培养基及组培苗的移栽等。结果表明:无籽刺梨茎段在0.1%升汞中处理12min中消毒效果最佳,有效存活率达77.78%;腋芽诱导的最佳激素配比为6-BA0.5mg/L+IBA0.1mg/L,诱导率为100%;去顶后芽的增殖最适培养基为MS+6-BA0.2mg/L+IBA0.02mg/L,增殖倍数可达3.22倍;在1/2MS+IBA0.3mg/L的生根培养基上,不定芽生根率为100%,移栽后成活率在95%以上。 相似文献
10.
《云南农业大学学报(自然科学版)》2017,(1)
生根困难一直是影响山月桂应用的主要问题,本研究以山月桂‘奥运圣火’带芽茎段为外植体,研究基本培养基、植物生长调节剂,以及珍珠岩对其腋芽萌发、组培苗的增殖、伸长和生根的影响。结果表明:最适合茎段腋芽萌发的培养基为WPM+1.0 mg/L 2-ip,萌发率可达72.5%;组培苗增殖的最佳培养基为WPM+1.0 mg/L 2-ip+0.05 mg/L NAA,增殖系数可达5.42,平均苗高达3.42 cm;最适合的生根培养基为:1/2 WPM+1.0 mg/L IBA+0.1 mg/L NAA+珍珠岩,生根率80.03%。将已经生根的组培苗炼苗后移栽到泥炭土和珍珠岩(1∶1,体积比)的混合基质中,成活率在60%左右。 相似文献
11.
花叶锦带花组织培养的研究 总被引:1,自引:1,他引:0
以花叶锦带花的幼嫩茎段为外植体,进行组织培养与快速繁殖试验。研究结果表明:(1)初代培养的适宜培养基为MS+6-BA 0.50 mg/L+IBA 0.05 mg/L,附加480 mg/L氨苄青霉素钠,可有效抑制内生菌的污染,抑菌率达93.3%;(2)适宜增殖的培养基为MS+6-BA 0.50 mg/L+NAA 0.05 mg/L,增殖系数达6.70,苗健壮,无玻璃化现象;(3)生根最佳培养基为1/2MS+IBA 0.50 mg/L,生根率达98%,根系粗壮。 相似文献
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以高氏白澳山龙眼新枝上部嫩茎茎段作为外植体,研究影响茎段诱导分化丛生芽、增殖与生根的主要因素.结果表明:外植体茎段的最佳消毒方式是先用75%乙醇消毒30s后,再用0.11%№Cl2溶液处理4min(2 min/次×2次,处理后用无菌水冲洗3遍);最佳丛芽增殖培养基是WPM+ KT 1.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖25 g/L;最佳生根培养基为1/2MS+ 1.50 mg/L IBA. 相似文献
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16.
以酥李带芽茎段为外植体进行组织培养,研究了植物生长调节剂组合对腋芽诱导、增殖及生根的影响,初步建立酥李离体快繁技术体系。结果表明,外植体消毒采用1 g/LHgCl2浸泡8 min的效果较好,适宜腋芽诱导培养基为WPM+1.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L KT+0.1 mg/L NAA,适宜芽增殖培养基为WPM+1.0 mg/LKT+0.1 mg/L IBA+1.0 mg/L GA3,适宜生根培养基为1/2MS+0.4 mg/L IBA+15 g/L蔗糖,其生根率达95%,移栽成活率在90%以上。 相似文献
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以红叶石楠扦插苗的茎尖作为外植体,研究了不同消毒剂的消毒灭菌效果,以及不同培养基、不同激素组合对茎尖生长扩繁的影响。试验结果表明:(1)红叶石楠茎尖外植体最佳消毒方法为用0.1%的升汞消毒处理4 min,存活率达56.7%;(2)最合适的基础培养基为MS培养基;(3)最佳的增殖培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,愈伤诱导率为52.0%,增殖系数为4.1;(4)最佳的生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg/L,生根率达55%,平均根数为2.2。 相似文献
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