蝴蝶兰组织培养的研究进展

从外植体选择出发,阐述了培养基、激素以及其他添加物对蝴蝶兰类原球茎诱导、增殖以及分化等的影响,概述了蝴蝶兰组织培养的研究进展,为蝴蝶兰研究提供了一定的参考依据、     

蝴蝶兰丛生芽途径的组织培养技术

对蝴蝶兰丛生芽途径的组织培养进行研究,结果表明,不经过愈伤组织直接诱导丛生芽的过程中,6-BA是影响蝴蝶兰丛生芽诱导的重要因素,6-BA浓度达3.0mg/L以上时丛生芽的诱导率就可达100%;在丛生芽增殖过程中,6-BA8.0mg/L处理效果最好,丛生芽增殖率可达304%;6-BA8.0mg/L+NAA0.5mg/L的处理更能促进蝴蝶兰丛生芽的增殖效果,丛生芽增殖率可达506%;生根培养基组合MS+NAA0.5mg/L+10%椰子汁的生根效果较好。     

蝴蝶兰花梗的组织培养及快速繁殖

以蝴蝶兰的花梗为外植体，在1／2MS＋6－BA3mg/L NAA0.2mg/L的培养基上诱导花梗苗；以去茎法的茎段为增殖材料，增殖培养基为花宝1号2g/L,6-BA5-10mg/L,NAA0.2mg/L，腺嘌呤0mg/L,肌醇100mg/L，椰子汁10％（V／V），可取得较高的增殖率，增殖芽在生根培养基中，花宝1号3．5g/L,NAA2mg/L,IBA1mg/L，水解乳蛋白1g/L，香蕉泥105，活性炭1g/L，生根效果好。     

辣木组织培养技术研究进展

辣木作为一种新兴的多功能经济树种。近年来,因市场需求旺盛,资源短缺,促使辣木组织培养技术发展迅速。本文综述了辣木组培外植体的选择、增殖培养、瓶内生根以及炼苗移栽等方面的研究进展,并对培养过程中存在的问题进行了分析,以期为辣木的组培提供一定的参考。     

蝴蝶兰新品种‘8411’花梗离体培养技术研究

以蝴蝶兰新品种‘8411’花梗为外植体,研究了各种因素对其离体培养各阶段的影响。结果表明：蝴蝶兰花梗芽的无菌消毒以0.1% HgCl2处理15 min较好,污染率和萌芽率分别为24.0%和72.0%;蝴蝶兰不定芽最适继代增殖培养基为1/2MS＋6-BA5.0mg/L＋AD5mg/L＋NAA0.1mg/L＋CH1.0g/L＋糖30g/L,增殖系数达2.43;香蕉泥、土豆泥、椰汁的添加均有利于蝴蝶兰的壮苗生根,叶片大小及平均根数与对照组相比均有显著增加,叶片大小均达2.58 cm以上,平均根数均达2.65条以上,生根率均达100%。     

外殖体部位,激素浓度对卡特兰,蝴蝶兰原球茎形成和增殖的影响

卡特兰、蝴蝶兰具有艳丽的花色．大而奇特美丽的花朵形态、鹅绒般的质感和开花期很长的特点．深受各国人民的喜爱．卡特兰和蝴蝶兰在国内较少栽培,还谈不上大量供应市场．主要是自然繁殖速度慢．卡特兰一般采用分株繁殖．而蝴蝶半是单茎类型植株,顶端优势极强,必须靠摘心发出胶芽进行繁殖,这样会牺牲母林．因此,采用组培分生的繁殖方法更加受到重视．供试材料的卡特兰、蝴蝶半种源均来自台湾．所取的外殖作为茎尖组织（l－Zcm）、茎段（0．scm）、叶片（0．scm）、根段（Zmm）、花梗液芽（不带花梗组织,仅取液芽）．材料经75％酒精和…     

蝴蝶兰叶片体细胞胚胎发生发育及其分化成苗的研究

蝴蝶兰幼叶离体培养直接诱导体细胞胚胎的发生并进一步发育成原球茎和分化成苗。体细胞胚胎发生起源于上表皮细胞或上表皮下方的叶肉细胞,为单细胞起源。单细胞原胚分裂形成多细胞原胚,历经球形胚、梨形胚、心形胚和子叶胚的发育过程,最终成为较大颗粒状的原球茎。较高浓度的苄基腺嘌呤(6-BA)和腺嘌呤硫酸盐(AdSO4)配合使用能有效诱导体细胞胚胎的发生,最高诱导率可达40%。适当降低6-BA和AdSO4浓度有利于原球茎分化成苗,但两者浓度过低苗的生长发育会受到影响。     

用组织培养法快速繁殖苎麻良种

苎麻是我国的特产和重要的纺织纤维作物。它既是多年生宿根作物，又是异花授粉作物，并且当前全国苎麻优良品种多属杂交种。生产上长期利用无性繁殖法，能保持品种纯度和良种特性，但繁殖系数太低，远远不能满足目前全国纷纷建立苎麻纺织原料基地、实行品种区域化、迅速扩大种植优良品种的需要。如果能用组织培养法繁殖苎麻，既有繁殖系数高，     

杜仲组织培养外植体的选择和消毒

[目的]找出杜仲外植体选择和消毒的适宜方式方法。[方法]以华中8号杜仲优良母株为外植体材料,进行杜仲的植物组织培养。在进行杜仲组培外植体选取和处理时,研究选取不同部位、采用不同消毒剂对杜仲离体组培的影响。[结果]进行杜仲组织培养外植体选取时,4—5月所选取的顶芽为最适合的材料;预处理后放入流水冲洗2.0～2.5 h,先用酒精浸泡30～40 s,再用0.1%HgCl₂浸泡消毒8 min,消毒效果最好,存活率最高。[结论]该研究为杜仲的组培快繁技术提供了依据。     

基于B/S结构的农产品质量安全追溯系统研究

以蝴蝶兰嫩叶提取的DNA为材料,蝴蝶兰SRAP反应体系中的重要参数Mg2+、Taq酶、模板DNA及随机引物,建立了一套适合蝴蝶兰基因扩增的SRAP反应体系：25 μL的反应体系中Mg2+浓度为2.0 mmol/L,Taq酶1.0 U,DNA模板40 ng,上下游引物0.8 mmol/L。该体系扩增条带清晰,重复性好,有望在蝴蝶兰属植物的遗传育种研究中运用。     

马铃薯两个基因型不同外植体的组织培养与植株再生

以Favorita和东农303两个马铃薯基因型的幼叶、茎段、微型薯和种薯的块茎为外植体,在6种培养基中诱导愈伤组织和植株再生。试验中观察到马铃薯的分化率在不同外植体间差异较大,ZT有可能是诱导马铃薯芽分化的理想激素。     

“神马”菊组织培养技术研究

利用“神马”菊花的茎段作外植体,采用不同的诱导、继代和生根培养基进行菊花组织培养技术研究,结果表明,丛生芽诱导的最佳培养基为MS＋6-BA2mg·L-1,丛生芽继代培养的最佳培养基为MS＋6-BA1.5mg·L-1＋NAA0.05mg·L-1,最佳生根培养基为MS＋NAA0.1mg·L-1。     

TDZ和暗培养对蝴蝶兰叶片不定芽发生的影响

以蝴蝶兰幼嫩花梗诱导的无菌苗叶片为外植体,以MS为基本培养基,研究不同暗培养时间和TDZ浓度对蝴蝶兰叶片诱导不定芽的影响。结果表明：暗培养和TDZ对接种的蝴蝶兰叶片的成活率均具有显著影响,暗培养60 d时,叶片的存活率在90%以上,而在同一暗培养时间条件下,叶片的存活率随着TDZ浓度的增加而上升;在TDZ浓度为3.0 mg/L,暗培养60 d时,蝴蝶兰存活叶片不定芽的诱导率最高,达到93.45%;诱导的不定芽数最多,平均每个外植体诱导的不定芽数为13.22个。综合考虑外植体的成活率、不定芽诱导率和诱导的不定芽数,蝴蝶兰叶片诱导不定芽的最佳条件为：MS＋TDZ 3.0 mg/L,暗培养60 d。     

海南龙血树的组织培养与快速繁殖

以海南龙血树的顶芽和侧芽作为外植体,把其接种于MS＋BA1mg/L＋NAA0．1mgg/L＋PVP100 mg/L＋蔗糖30g／L培养基上培养40-50d可诱导其腋芽萌发,再把萌发后所形成的新芽切割下来接种于MS＋BA 2mg／L＋KT 0．5mg／L＋蔗糖30g／L的培养基上培养25-30d可诱导形成丛生芽,丛生芽在继代培养过程中每25-30d可增殖3～5倍。把丛生芽分割成单株并接种于MS＋BA3mg厂L＋GA,1mg／L＋蔗糖30g／L培养基上培养4周后使其壮苗后再接种于MS＋NAA0．5～1．0mg／L＋蔗糖30g／L培养基上培养4周可诱导小芽形成完整的根系,小植株移栽成活率可达98％。该体系的建立为海南龙血树的工厂化育苗奠定了坚实的基础。     

蒲公英的组织培养研究

以盆栽蒲公英的叶柄和叶片为试材,对蒲公英进行组织培养。结果表明：300mg/L的抗坏血酸能够较好地防止褐化,直接诱导再生植株的最佳组合是MS＋0.5mg/L6-BA＋0.1mg/LNAA;诱导愈伤组织和继代的最佳组合是6-BA0.5mg/L＋2,4-D0.5～1.0mg/L;1/2MS＋15g/L蔗糖＋NAA0.1mg/L是诱导生根的理想培养基。     

优良豆科牧草百脉根一次性生根成苗组培快繁技术的研究

以百脉根品种—里奥为材料,通过不同组培配方培养基培养后,观察萌芽、生根和生长情况,确定用于百脉根一次性生根成苗的组织培养快繁方法和培养程序,其最佳培养基配方为：MS＋IBA 0.1 mg/L＋NAA 0.05 mg/L＋蔗糖30 g＋琼脂8 g,pH 5.5～5.8。该配方和程序具有培养周期短、操作简便、成本较低、易于操作等特点。     

山奈组织培养

以山奈的带芽块茎为试验材料,研究其表面消毒的方法和不同配比培养基对山奈块茎诱导、增殖以及生根的影响.结果表明:外植体表面消毒采用体积分数75%酒精消毒1 min,无菌水漂洗1次,然后用质量分数0.1%升汞浸泡10min,无菌水漂洗2次后,再用0.1%升汞浸泡6min,无菌水漂洗4次效果为最佳,污染率可降至6.67%;适宜的诱导培养基为MS+6-BA3.0 mg/L+NAA0.1 mg/L,芽的萌发率达100%,分化率达146.67%;增殖培养基以MS+6-BA3.0 mg/L为最好,增殖倍数可达6.1倍;适宜的生根培养基为MS+NAA0.1 mg/L.生根率可达100%;试管苗移栽到疏松透气的基质中即可,成活率可达93%.     

番木瓜优质组培苗生产体系的建立

用含有100mg/LVc＋1mg/LAgNO;+20mg/LPVP液体处理成龄番木瓜（CricappayaL）侧芽,再用70%酒精浸泡50s、0.15%升汞消毒5min,经消毒的外植体接种于MS+KT0.5mg/L+NAA0.2mg/L+GA31.0mg/L＋30g/L蔗糖+7g/L琼脂（pH=5.7）,26~28℃,每日光照培养12h,光照强度为15001x,连续培养20d;外植体经初始培养后,继代接种于MS＋BA0.5mg/L+NAA0.1 mg/L+GA,1.0mg/L+蔗糖30gL＋琼脂7g/L（pH=5.7）,26~28℃,每日光照培养16h,光照强度为2000Ix,连续培养40d,繁殖系数达3~5倍;继代芽接种MS+BA0.2mg/L+KT0.3mg/L+NAA0.Img/L+NAA0.1 mg/L+GA;1.0 mg/L+ADS40mg/L＋蔗糖30g/L＋琼脂7g/L（pH=5.7）,26~28℃,每日光照培养16h,光照强度为20001x,连续培养20d进行壮苗培养,经壮苗培养芽接种于MS+KT0.1~0.2mg/L+ NAA0.05~0.1mg/L+ IBA0.2-0.3mg/L+蔗糖20~30gL+琼脂6.5g/L（pH=5.6）,26~28℃,每日光照培养12h,光照强度为1500kx,连续培养 15~20d 进行催根培养,生根率达85%以上。生根苗经2~3d的自然光炼苗后,移栽于沙土∶椰糠∶菜园土质量比为1∶1∶1 混和的基质中,移苗后1周内,每天喷施浓度为200～400mg/L的IBA,移栽成活率达80%以上。笔者就目前番木瓜组培快繁中的问题作了系统的研究,建立了一套适合番木瓜优质种苗生产的技术体系。