中涡1号杨树叶片再生体系的建立

以中涡1号杨树叶片为材料,对其再生体系建立进行研究。结果表明:叶片的最佳消毒方法为使用75%的酒精消毒15s,0.1%的HgCl2消毒4min;适宜的诱导愈伤培养基为MS+6-BA0.2mg/L+NAA1.0mg/L;适宜的诱导分化培养基为MS+KT0.1mg/L+NAA0.1mg/L+6-BA1.0mg/L+蔗糖25g/L;生根的最佳培养基为1/2MS+IBA0.6mg/L;无菌苗叶片最佳不定芽诱导培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L。     

丽格海棠叶片再生体系的建立

以丽格海棠品种巴克斯(Barkos)的叶片为外植体,研究光照强度和时间、植物生长调节剂对不定芽诱导的影响;植物生长调节剂对不定芽增殖的影响;组培苗生根的最佳培养基。结果表明:丽格海棠叶片的最佳不定芽再生培养基为MS+1mg/L TDZ+0.1mg/L 2,4-D或MS+1mg/L 6-BA+0.1mg/L TDZ,给予40d弱光培养可促进不定芽再生,再生率可达88.3%;不定芽最佳增殖培养基为2mg/L 6-BA+0~0.1mg/L NAA,组培苗最佳生根培养基为MS+0.1~0.3mg/L IBA。     

三抗杨叶片高效再生系统的建立

以三抗杨为试材,建立了三抗杨叶片外植体高效再生系统,为三抗杨遗传转化体系的建立奠定了良好的基础.以三抗杨无菌苗叶片作外植体,接种干附加不同浓度的生长素(NAA,IAA)和细胞分裂素(6-BA)的MS培养基上,筛选出叶片分化不定芽的最佳培养基为MS 6-BA 1.0 mg/L NAA 0.1 mg/L,蔗糖30 g/L,琼脂6.0 g/L,pH值5.8,不定芽分化率为83.3%.将不定芽接种干附加不同浓度的生长素(NAA,IBA)的MS培养基上,筛选出三抗杨最佳生根培养基为MS IBA 0.1 mg/L NAA 0.1 mg/L,蔗糖15 g/L,琼脂6.0 g/L,pH值5.8.生根率为91.7%.     

野生金银花高效组培繁殖技术再生研究

以野生金银花当年生茎段为外植体,MS和1/2MS作基本培养基,研究不同激素对金银花外植体灭菌消毒效果、不定芽诱导、增殖培养和组培苗生根诱导的影响,以建立野生金银花高效快繁体系。结果表明:外植体最佳消毒灭菌方法为75%碱化乙醇+0.1%升汞消毒12min,外植体无菌苗率达到82.67%;不定芽诱导最佳培养基配方为MS+6-BA 1.5mg/L+NAA 0.12mg/L,不定芽诱导率为88.67%;继代增殖最佳培养基配方为MS+6-BA1.5mg/L+NAA 0.02mg/L,增殖倍数达到4.11,与其他处理差异达到极显著水平(P0.01);生根诱导培养基配方以1/2MS+IBA 2.5mg/L+NAA 0.2-0.6mg/L较好,生根率和根长分别达到85.56%-92.22%和3.14-3.27cm。     

非洲紫罗兰离体叶片不定芽的诱导及植株再生

为建立非洲紫罗兰的离体培养及植株再生体系,以叶片为外植体,采用MS作为基础培养基,试验研究了不同因子对不定芽诱导、增殖分化、生根壮苗和移栽的影响。结果表明:非洲紫罗兰诱导不定芽产生的最佳培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L,平均诱导率达100%,平均芽数4.80个;不定芽增殖的适宜培养基为MS+6-BA2.0mg/L+NAA 0.2mg/L,增殖系数为18.60;生根壮苗的最佳培养基为MS+NAA2.0mg/L,生根率为91.11%;在表土∶椰糠(V1∶V5)的混合基质上移栽,成活率达86.67%。该试验建立了非洲紫罗兰的离体再生体系,实现了开发利用及工厂化育苗。     

山哈杨三倍体无性系高效再生体系的建立

以山哈杨三倍体无性系的茎段为外植体进行组织培养,研究了不同激素配比对其不定芽诱导分化及生根的影响,确定了其最佳培养基,建立了山哈杨三倍体无性系高效稳定的再生体系。结果表明:最佳的不定芽诱导分化培养基:MS+6-BA0.6 mg/L+TDZ0.01 mg/L+NAA0.02 mg/L,其分化率可达82.2%;生根效果最好的培养基:1/2MS+IBA 0.2 mg/L,生根率达100%。     

广藿香的组培快繁技术研究

以广东省遂溪县乌塘镇广藿香嫩茎为外植体,研究影响丛生芽诱导、增殖与壮苗生根的主要因素。结果表明:遂溪乌塘广藿香的外植体处理过程中,用0.1%升汞(加2滴吐温-80)溶液消毒8min.,污染率和褐变率最低;适宜丛生芽诱导分化的培养基是MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L;最佳增殖培养基是MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.2mg/L;生根培养基以MS+IAA0.5 mg/L+IBA0.5 mg/L最佳,生根率达100%,而且根系发育良好。     

矮牵牛快速繁殖技术

通过研究利用矮牵牛种子建立无菌系,在启动培养基MS培养21d得到的嫩苗切成茎段,在诱导分化培养基MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L培养14～21d产生丛生状不定芽。不定芽在继代增殖培养基MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L经21d培养增殖9.7倍。经MS培养基壮苗14d后,在1/2MS+IBA0.1mg/L生根培养基上再培养14d即可获得完整植株。     

短柄五加愈伤组织诱导及再生体系的建立

以短柄五加(Acanthopanax brachypus Harms)当年生嫩枝为材料,选择叶片、叶柄为外植体,使用6-BA、NAA、IBA、2,4-D等激素,配制成不同质量浓度的培养基,进行短柄五加愈伤组织诱导,同时分析愈伤组织诱导丛生芽和丛生芽增殖培养基的最佳配方,建立短柄五加植株的再生体系。结果表明,短柄五加叶片是较适宜诱导愈伤组织的外植体,愈伤组织诱导的培养基是MS+0.3mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA,诱导率为75.0%;愈伤组织诱导不定芽形成的适宜培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L,不定芽诱导率为100%;适宜不定芽增殖的培养基为MS+6-BA3.0mg/L+NAA 0.2mg/L,增殖系数为5.80;同时活性炭能够有效防止愈伤组织诱导过程中的褐化问题。     

紫苏组织培养的研究

以紫苏为材料,通过对其子叶、下胚轴、幼嫩叶片最佳外植体的筛选、愈伤组织诱导、不定芽分化及生根培养,建立紫苏的离体培养再生体系,为紫苏种质资源保存及快速繁殖提供理论依据和技术支撑。结果表明:紫苏种子萌发最佳培养基MS培养基;最佳消毒方法为0.1%升汞消毒8 min。此时种子萌发率最高达96%。离体培养最佳外植体为叶片。紫苏叶片和子叶诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+6-BA3.0 mg/L+NAA0.3mg/L,诱导率分别为97.5%和91.7%;愈伤组织分化的最佳培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,叶片优于子叶。最佳生根培养基为1/2MS+NAA0.1 mg/L,生根率为100%。     

黑金刚以芽繁芽组培技术研究

以黑金刚当年生嫩梢为材料,探讨黑金刚以芽繁芽组培的最佳培养基配方。结果表明:培养基MS+0.2mg/L NAA+1.0mg/L 6-BA有助于不定芽的形成,且不定芽生长好。增殖培养中培养基MS+0.2mg/L NAA+0.5mg/L 6-BA增殖系数较高,达2.8,且不定芽生长壮。在生根诱导中以1/2 MS+0.2mg/L NAA+1.0mg/L IBA组合的生根率较高且生根情况好。     

青蒿的离体快繁技术研究

以青蒿的带芽嫩茎为外植体,研究了0.1%的升汞在不同消毒时间的消毒效果,不同浓度的植物生长调节剂对相同外植体的不定芽诱导、生根的影响。结果表明:0.1%的升汞的消毒时间为8min时污染率明显较高,消毒时间为10min时会给外植体造成严重伤害,使其不能继续生长,消毒时间在9min左右效果最佳。青蒿茎段丛生芽诱导培养基为MS+6-BA 1mg/L+IBA0.1mg/L,不定芽诱导率高达100%。生根培养基为1/4MS+IBA1.5mg/L+NAA0.1mg/L,生根率可以达到90%以上,生根数量多且根系粗壮。     

红檵木高效再生体系的建立

红檵木是极具观赏价值的常绿灌木。以红檵木的叶片和茎段为材料,通过优化愈伤组织诱导与增殖,不定芽诱导、增殖与生根的培养基与激素配比,进行红檵木高效再生体系研究。结果表明,红檵木外植体最佳消毒方案为两次升汞消毒法:0.1%Hg Cl2两次消毒,各3 min;最佳愈伤组织诱导与增殖的培养基配方分别为:MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 1.7 mg/L、MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.06 mg/L;首次使用Ag NO3,获得最佳不定芽诱导培养基配方:MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L+Ag NO3 1 mg/L;不定芽增殖最佳培养基配方为:MS+6-BA1.0 mg/L+IBA 0.05 mg/L+V c 5.0 mg/L;最佳不定芽生根方案为:选择2.1~3.0 cm的不定芽,保留2~4叶片,接种至1/2 MS+IBA 4.5 mg/L培养基。从而建立了效果稳定的完整红檵木高效再生体系,为红檵木工厂化育苗及转基因体系建立奠定基础。     

白鹃梅叶片芽再生体系的构建

对白鹃梅叶片芽再生的适宜培养基和适宜条件进行研究的结果表明,2,4-D、NAA、IBA与6-BA组合均可诱导叶片愈伤,但以MS+1 mg/L 2,4-D +0.5mg/L6-BA为愈伤诱导培养基,MS+0.3 mg/L IBA+2mg/L 6-BA+0.1 mg/L TDZ为芽分化培养基,1/2MS+0.3 mg/L IBA为生根培养基最佳.     

大哥大红掌实用化生产的组织培养研究

以叶片、叶柄或叶茎为外植体,在培养基MS+6-BA 1～2mg/L+NAA 0.1mg/L+2,4-D 0.1～0.2mg/L上均可诱导愈伤组织的产生,其中以MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.1mg/L+2,4-D 0.1mg/L效果最好,诱导率可达87%以上;其最佳的分化培养基MS+6-BA 1.5mg/L+NAA 0.2mg/L上,分化率可以达到90%以上,大哥大红掌最佳的增殖培养MS+6-BA 2mg/L+NAA0.2mg/L,培养30d芽的增殖系数达到3.45,降低6-BA浓度或提高NAA浓度有利于培养壮苗;1/2MS+NAA 0.1mg/L+1g/L活性炭的培养基诱导植株生根效果最好,生根率86%,平均每株苗生根3条;生根试管苗移栽于泥炭土:珍珠岩=5∶1的基质,成活率约86%。     

杂交构树茎段组培快繁体系的建立

通过对杂交构树茎段的离体培养和繁殖,探讨了杂交构树茎段萌发、分化、不定芽生长分化及生根的最佳培养基。结果表明:以优良母株的具腋芽茎段为外植体,经0.1%HgCl2灭菌12 min,成活发芽率达44%;适宜杂交构树侧芽诱导的培养基为MS+6-BA1.0 mg.L-1+NAA0.1 mg.L-1,诱导分化率为94.4%;适宜试管苗增殖和生长的培养基为MS+6-BA1.0 mg.L-1+GA0.2 mg.L-1,不定芽平均分化系数为3.3,平均苗高2.83 cm;在壮苗生根过程中最适培养基为1/2 MS+NAA0.3 mg.L-1+IBA0.5 mg.L-1+6-BA0.01 mg.L-1和1/2 MS+NAA0.5 mg.L-1+IBA0.1 mg.L-1+6-BA0.01mg.L-1,生根率均高达100%。     

葡萄柚品种哈路比叶片离体再生体系的优化

为给葡萄柚的大规模育苗提供方法,以葡萄柚品种哈路比的叶片为外植体,在MS培养基中添加不同浓度配比的激素,探索其离体再生的优化体系。试验结果如下:培养基为MS+0.6 mg/L 6-BA+1.0 mg/L 2,4-D愈伤组织诱导率最高为78.57%,愈伤组织呈黄绿色,结构疏松,长势良好;MS+3.0 mg/L 6-BA+1.5 mg/L NAA是诱导愈伤组织分化不定芽的最佳培养基激素浓度配比,分化率最高为48%,不定芽分化快,长势良好;培养基MS+2.0 mg/L IBA有利于诱导生根,生根率达60.74%。初步建立了葡萄柚哈路比的离体再生体系。     

银腺杨优良无性系HYS-1叶片再生体系的建立

以银腺杨无性系HYS-1组培苗叶片为材料,MS为基本培养基,通过单因素试验及正交试验L16(45),探究不同浓度TDZ、6-BA以及不同生长素种类对银腺杨无性系HYS-1叶片再生体系建立的影响并筛选最佳培养基。结果表明:不定芽主茎高于1cm的芽占总芽数的比率随TDZ浓度的增加而降低。不定芽再生频率随6-BA浓度的增加而降低。在TDZ(0.05~0.10)mg/L+6-BA(0.50~1.50)mg/L的范围内,叶片通过愈伤组织间接诱导大量不定芽,无明显主茎;只有6-BA(0.50~1.50)mg/L时叶片直接诱导不定芽,且主茎明显。叶片基部是最佳不定芽诱导位置;TDZ0.05mg/L+6-BA0.30mg/L+NAA0.05mg/L处理15d后即出现不定芽,且主茎较高,是银腺杨无性系HYS-1叶片诱导不定芽再生的最佳培养基。再生不定芽在1/2MS+0.50mg/LIBA生根培养基上,5d开始生根,生根率95%以上。     

金钱树叶片组培快繁成苗技术研究

以金钱树叶片及叶茎为外植体进行离体培养研究,结果表明:用浓度为0.1%的升汞溶液对金钱树材料进行消毒,时间10～15min效果较佳;在以叶片和叶茎为外植体的愈伤组织诱导中,叶片较叶茎易产生愈伤组织;MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L的激素配比对诱导叶片愈伤组织的形成有利,诱导率高达74.1%;增殖培养基MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L最佳;不定芽在1/2MS+IBA1.0mg/L+NAA0.5mg/L的生根培养基上,生根最佳,生根率达86.2%,根多条、粗壮,植株长势良好、有活力;生根苗移栽在泥炭与椰糠2∶1的基质中,成活率较高。     

猴腿蹄盖蕨组织培养技术

以猴腿蹄盖蕨叶柄为外植体研究猴腿蹄盖蕨的组织培养技术。在1/2MS培养基中设置不同浓度IBA、NAA与6-BA组合,研究IBA、NAA和6-BA对猴腿蹄盖蕨叶柄组织培养的影响。研究发现,1/2MS+0.2 mg/L IBA+0.1 mg/L 6-BA为诱导愈伤组织的最佳培养基,诱导率达84%;1/2MS+0.2 mg/L IBA+0.2 mg/L 6-BA为愈伤组织的最佳分化培养基,分化率为86%;1/2MS+0.3 mg/L IBA为最佳生根培养基,生根率为100%,且根系分布均匀,根数多且生长健壮。