马蹄的组织培养与快速繁殖

马蹄茎尖在MS+BA2.0 +NAA0.2(mg/L)培养基上培养60天后诱导产生丛生芽 ,此时将它们切分 ,转入MS+BA0.5～2.0+NAA0.05～0.2(mg/L)培养基中进行继代增殖培养。每30天继代1次 ,每代增殖倍数为5～6倍。经过7～8次继代培养后 ,当芽长至3～4cm时 ,再切成单芽培养在1/2MS+NAA0.5(mg/L)培养基中进行生根培养效果好。     

芦笋茎尖组织培养技术的研究

1987～1990年对芦笋茎尖组织培养技术进行了系统研究。结果表明:MS+NAA0.1mg/L+BA0.5～1.5mg/L为适宜芽尖成苗培养基;MS+NAA0.1mg/L+KT(或BA)1.0mg/L为适宜继代增殖培养基。激素种类和浓度是影响生根的关键因素,茎尖长度对生根也有一定影响。改良MS+IBA0.5mg/L或改良MS+IBA0.5mg/L+KT0.05～0.1mg/L,为适宜生根培养基。IBA的生根效果优于NAA。根质是影响试管苗移栽成活的首要因素。过渡培养可大大提高芦笋试管苗的移栽成活率。移栽基质以土5份、蛭石3份为最佳。     

沙漠乔桑的组织培养和快速繁殖技术

选取待萌发的沙漠乔桑冬芽、萌发的侧芽为外植体,常规消毒后接种于培养基(MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L)上,约4周诱导出芽长1~2 cm;以MS+BA0.5 mg/L+NAA0.05 mg/L为最佳增殖培养基,在MS+NAA0.2 mg/L培养基上生根成苗,移栽到草炭∶珍珠岩∶蛭石=3∶1∶2的混合基质中,4周后移入大田。     

柴蕉茎尖培养无菌株系建立与芽苗增殖

以柴蕉吸芽茎尖为外植体,进行无菌株系建立与芽苗增殖研究。试验结果表明,先将柴蕉吸芽接种于液体诱导培养基1/2 MS+4 mg.L-1BA+0.5 mg.L-1NAA+30 g.L-1蔗糖,7 d后转到1/2MS+4 mg.L-1BA+0.5 mg.L-1NAA+30 g.L-1蔗糖+1 mg.L-1AC中,可以有效减少外植体的褐变;在MS+4 mg.L-1BA+0.3 mg.L-1NAA+30 g.L-1蔗糖+6 g.L-1琼脂+80 g.L-1腺嘌呤培养基上采用薄切片进行继代增殖,出芽率高且芽苗粗壮。     

百合组织培养技术研究

以百合西伯利亚和索邦的茎尖、鳞片为试材,研究了培养基类型、激素浓度、活性炭对百合苗生长的影响。结果显示:茎尖分化的适宜培养基为MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L和MS+BA1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,诱导鳞片产生不定芽的适宜培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L,西伯利亚的分化率高于索邦;百合继代增殖的适宜培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L;添加活性炭可提高生根率。     

张良姜无菌组织培养快繁体系建立

张良姜的组织培养外植体选取根茎上的营养芽,将其洗净、消毒、冲洗后接入初代培养基:MS+6BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,当诱导出苗后,将苗切下接入分化培养基:MS+6BA 4.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,形成丛生芽后,即可继代快繁,剪切2～3棵的丛生苗接入生根培养基:1/2MS+NAA0.1 mg/L,2个月后生长出根,成为完整姜苗。张良姜特点是色泽金黄、辛辣芳香、久煮不烂、药食两用,是全国首个获得农产品地理标志登记保护的生姜产品。     

花叶富贵榕组培快繁技术研究

研究了花叶富贵榕的组培快繁技术。结果表明:最佳外植体为一年生的茎尖或茎段;继代增殖最佳培养基为MS+BA 2.00 mg/L+NAA 0.05 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+NAA 0.5 mg/L;2000～2500 lx的光照强度有利于芽苗的生长;泥炭土基质有利于试管苗的移栽成活。     

食籽栝楼离体快繁的初步研究

以雌性栝楼块根萌发苗的茎段腋芽为外植体进行无菌试管苗的诱导、继代增殖快繁、生根以及试管苗移栽试验。结果表明:MS+BA0.2mg/L+IAA0.6mg/L最适合诱导栝楼茎段腋芽形成无菌试管苗;MS+BA0.1mg/L+IAA0.6mg/L是继代增殖快繁最适培养基;在1/2MS+NAA0.2mg/L是生根最适培养基。试管苗移栽在蛭石和珍珠岩(1∶3)的混合基质苗床上成活率可达85%以上。     

白屈菜快速繁殖技术研究

为保护濒危植物白屈菜的野生资源,以白屈菜具有生长点的茎段作为材料,进行了生长点的伸长生长、生长点的分化、试管苗的生根、试管苗的生根继代和移植的研究,建立起白屈菜的快速繁殖技术。结果表明:在无光的条件下,1/2MS+BA0.1mg/L+NAA0.1mg/L+GA0.4mg/L是白屈菜嫩茎生长点伸长生长的理想培养基;MS+BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L是白屈菜生长芽分化培养的理想培养基;1/3MS+NAA0.1mg/L+IAA0.5mg/L是白屈菜不定芽生根培养和生根继代培养的理想培养基;移植到山坡上试管苗各种生物性状不变,生长旺盛。通过生长芽分化培养和生根继代培养2种方法可达到快速繁殖的目的。     

嫣红蔓离体繁殖技术研究

嫣红蔓带芽嫩茎及茎尖的最适初代培养基是1/2 MS+BA 1.0 mg/L + NAA 0.05 mg/L,完全的MS配方易导致玻璃化;在继代培养时,交替采用增殖培养基1/2 MS+BA 0.3 mg/L +NAA 0～0.01 mg/L和增高培养基1/2 MS+BA 0.1～0.2 mg/L,这样便能保证既有较高的增殖率,繁殖的芽苗又比较长;嫣红蔓芽苗的最佳生根培养基是1/2 MS+IBA 0.01 mg/L.     

金钱树的组织培养

以金钱树[Zamioculcaszamiifolia(Loddiges)Engler]的幼嫩小叶为外植体,采用幼叶→愈伤组织→丛生芽→完整植株的途径进行繁殖。结果表明:叶片在MS BA2mg/L 2,4-D1.0mg/L PVP0.5mg/L 活性炭0.5mg/L 蔗糖30g/L培养基上暗培养30d,可诱导形成愈伤组织;愈伤组织在MS BA4mg/L KT0.5mg/L 蔗糖30g/L培养基上光照培养25d,可诱导形成丛生芽(丛生芽在继代培养过程中每20～25d可增殖3～5倍);丛生芽接种于MS BA3mg/L NAA0.2mg/L 蔗糖30g/L培养基上壮苗培养4周后,再转入1/2MS BA2mg/L NAA0.5mg/L 蔗糖30g/L培养基上培养30d,可诱导形成完整的根系。     

茅膏菜组织培养研究初报

[目的]探讨培养基组合对茅膏菜愈伤组织形成、分化和生长的影响。[方法]以好望角茅膏菜为试验材料,在10种培养基上进行繁殖,研究不同的培养基组合对茅膏菜愈伤组织形成、分化和生长的影响。[结果]茅膏菜幼叶在MS培养基上能形成愈伤组织,但在花宝一号＋BA 0.1~1.0 mg/L＋NAA 0.1~0.5 mg/L＋琼脂6.5 g/L＋蔗糖10~30 g/L培养基上有利于愈伤组织形成,特别是花宝一号＋BA 1.0 mg/L＋NAA 0.1 mg/L＋琼脂6.5 g/L＋蔗糖20 g/L时更有利于愈伤组织形成 在MS＋活性炭＋BA 0.1~1.0 mg/L＋NAA0.1~0.5 mg/L＋琼脂6.5 g/L＋蔗糖10~30 g/L培养基有利于茅膏菜愈伤组织的分化,特别是MS＋活性炭＋BA 1.0 mg/L＋NAA 0.2mg/L＋琼脂6.5 g/L＋蔗糖30 g/L培养基既有利于愈伤组织分化出芽,又有利于幼苗分化出根。[结论]该研究为茅膏菜的快速繁殖奠定了基础。     

西瓜组织培养快速繁殖的初步研究

以西瓜无菌苗的顶芽为外植体进行了不定芽的诱导、继代培养增殖、伸长、生根以及试管苗移栽实验。结果表明:用苗龄7～8d的无菌苗上的顶芽诱导的不定芽数最多;用带完整子叶的顶芽诱导不定芽的效果最好;附加BA2.0mg/L的MS培养基为最佳不定芽诱导培养基;MS附加BA0.5mg/L、IAA1.0mg/L为最佳继代增殖培养基;伸长的芽在附加IAA0.2mg/L或IBA0.3mg/L的1/2MS培养基上易诱导生根;试管苗直接移栽至沙质土中,成活率达70%。     

白花马蹄莲离体快繁技术研究

[目的]建立白花马蹄莲的离体快繁体系。[方法]选取白花马蹄莲球茎和叶片作为试验材料,采用组培法进行繁殖试验。[结果]接种前球茎的消毒时间以8 min为宜,叶片的消毒时间以4～6 min为宜,最佳球茎诱导分化培养基为MS+2.0 mg/L BA+0.1 mg/LNAA,最佳叶片诱导分化培养基为MS+1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA;在相同的温度、湿度和光照条件下,应选择马蹄莲球茎作为培养材料;最佳增殖培养基为MS+1.0 mg/L BA;最佳生根培养基为MS+0.1 mg/L IBA;最佳移栽基质为珍珠岩∶蛭石∶草炭土∶沙子=2∶2∶4∶1;最佳移栽时期为生根培养后10～15 d。[结论]为白花马蹄莲的组织培养提供了参考依据。     

不同培养基及ZT诱导对洋桔梗玻璃化的影响

以洋桔梗叶片为材料,以培养基MS＋6-BA 0．5mg／L＋IBA 0．2mg／L为对照,将在对照培养基上培养的叶盘转接到含不同激素组合（6-BA 0．2—0．5mg,L、IBA 0．05～0．1mg／L、NAA 0．01～0．2mg／L、ZT 0．5～1．0mg／L）的培养基中培养30d;将不同分化时期的愈伤组织每隔3d转接到MS培养基中培养30d,观察洋桔梗不定芽分化情况。结果表明,将已诱导15d的叶盘转接到MS＋6-BA0．3mg／L、MS＋6-BA 0．4mg／L＋IBA 0．05mg／培养基中培养,利于正常不定芽的生长,分化总芽数和正常芽总数、平均每叶盘正常芽数明显高于对照,正常苗率与对照相差不明显。此外,将现芽点6d以前的不同分化程度的愈伤组织接到MS培养基中,则不利于正常不定芽的诱导分化;将现芽点第6d的愈伤组织转接到MS培养基中继续培养,其总分化芽数、正常芽总数、平均每叶盘正常分化芽数均高于对照而正常苗比率与对照相差不明显．显,说明现愈伤后不定芽的分化还继续需要外源激素的参与,以减少不定芽的玻璃化。     

花叶艳山姜茎尖离体快繁技术

以花叶艳山姜（Alpinia zerumbet cv．vaniegata）的茎尖作为外植体,研究了花叶艳山姜的离体快繁技术。结果表明：花叶艳山姜茎尖接种在MS＋BA3．0mg·L-1＋NAA0．2mg·L-1＋白糖30g·L-1的培养基上,30d后长出幼芽;丛生芽在MS＋6-BA2．0—2．5mg·L-1＋NAA0．2mg·L-1＋白糖30g·L-1的培养基上,增殖效果最佳,增殖倍数达4．0,芽生长正常,且色泽浓绿;芽苗在1／2MS＋NAA1．0～1．5mg·L-1＋白糖30g·L-1的培养基上,生根效果较好,根系粗壮,生根率为93．0％;组培苗移栽在V河沙：V珍珠岩：V表土：1：1：1的混合基质中,成活率可达70．1％。     

根癌农杆菌介导CYP1A1转化菠萝的研究

将菠萝(Ananas comosus)愈伤组织经含有植物表达重组质粒(pUHA1-CYP1A1)的根癌农杆菌(LBA4404菌株)侵染后,在MS+3.0mg/LBA+2.0mg/LNAA+100μmol/LAS+8g/Lagar上共培养3d,转入选择培养基(MS+3.0mg/LBA+2.0mg/LNAA+20mg/LKm+400mg/LCarb+8g/Lagar)上培养约10d后开始分化出不定芽;28d后将绿色的抗Km不定芽转入MS+2.0mg/LNAA+30mg/LKm+300mg/LCarb+8g/Lagar上再进行连续2轮选择,随后将绿芽转入MS+1.0mg/LIBA+30mg/LKm+8g/Lagar上生根,共获得95株Km抗性植株,转化率0.12%～2.69%.对其中部分的抗Km植株进行PCR检测,PCR阳性植株率达64.29%.经Southern杂交进一步证实,CYP1A1已整合到菠萝基因中.以琼脂为培养基凝固剂、共培养基中添加AS、增加选择次数和逐渐增加新一轮选择培养基中的Km质量浓度等是根癌农杆菌介导菠萝愈伤组织获得转基因植株的重要条件.     

红千层的组织培养与快速繁殖

以红千层带腋芽茎段为外植体,进行快速繁殖技术研究,其启动率30d可达86 9%,繁殖系数40d可达30～50倍,生根率30d可达95 3%。启动培养基为MS+BA2 0mg/L+NAA0 01mg/L,继代增殖以MS+BA1 0mg/L+NAA0 1mg/L最佳,生根培养以1/2MS无激素效果最好。丛生苗在5℃时可保存160d。     

龙胆草组织培养及其无性系的研究

[目的]建立龙胆草组织苗繁育体系。[方法]以龙胆草的嫩茎为材料,进行愈伤组织的诱导与分化、不定芽的分化与生根、试管苗移栽与移植的研究。[结果]MS＋0.2mg/LBA＋1.0～1.5mg/L2,4-D是诱导嫩茎形成具有分化能力愈伤组织的理想培养基;MS＋1.2mg/LAgNO3＋0.6mg/LBA＋0.1mg/LNAA是愈伤组织和不定芽分化培养的理想培养基;1/2MS＋0.1mg/LIAA＋0.3mg/LNAA是龙胆草试管苗生根培养和生根继代培养的理想培养基;移植到山坡上的试管苗保持了龙胆草的各项植物学性状。[结论]在该试验条件下,培育的试管苗移栽成活率达96%,说明此方法完全可以用于大田生产。     

In Vitro Propagation of Ardisia mamillata Hance

Ardisia mamillata Hance is a rare plant with highly ornamental and medicinal value. The traditional propagation methods for A. mamillata by seeds or cutting provided low proliferation rate. This study is to optimize the propagation technique of A. mamillata by tissue culture and set up an industrial production system to provide plenty of A. mamillata seedlings for the human demand. The optimal initiation medium for A. mamillata is MS +2.0 mg/L BA +0.1 mg/L NAA +30 g/L sugar, providing76.4% initiation rate. The optimal shoot proliferation medium for A. mamillata is MS+1.0 mg/L BA+0.1 mg/L NAA+30 g/L sugar, providing 4.56 fold proliferation rate and3.10 cm shoot in height. The optimal shoot elongation medium for A. mamillata is MS+0.5 mg/L BA+0.1 mg/L NAA+30 g/L sugar, providing 2.77 fold proliferation rate and 4.27 cm shoot in height. The optimal rooting medium for A. mamillata is 1/2MS+0.1 mg/L IBA +15 g/L sugar, providing 99.7% rooting rate, 4.0 roots per individual,7.53 cm root in length and 3.94 cm shoot in height. This provides a reliable mass propagation method for A. mamillata.