柿和君迁子试管苗缓慢生长法保存及其遗传稳定性研究

 对柿(Diospyros kaki Thunb．)和君迁子(D．1otus L)试管苗缓慢生长法保存及其恢复生长植株的遗传稳定性进行了研究，结果表明：低温(6±1)℃和光照800 lx(12 h／d)的条件下，试管苗在添加有甘露醇20 g／L或PPⅢ 1．0 mg／L的MS(1／2N)+蔗糖20 g／L+琼脂7 g／L+PVP 500 mg／L培养基上或在含有CPPU 0．2 mg／L的1／2 MS(1／2N)+蔗糖15 g／L+琼脂7 g／L+PVP 500 mg／L培养基上保存18个月，平均存活率在90％以上；上述3种方法保存后恢复生长的植株，在核DNA含量和染色体数目上没有发生改变；RAPD分析时表明，只有在添加PP 的保存中，次郎3个单芽姊妹系扩增出的1827条谱带中，增加了3条新带，变异率为0．16％，君迁子3个单芽姊妹系扩增出的1736条谱带中，增加了1条新带，缺失了l4条带，变异率为0．86％。该结果为柿属植物种质资源缓慢生长法保存的有效性和可行性提供了理论依据。     

不同培养基对草莓种质离体保存的影响

为筛选草莓种质常温下离体保存的适宜培养基,本试验以宝交早生(F.ananassaDuch.)和UC5(F.vescaL.)为试材,通过改变培养基中的无机盐浓度、蔗糖浓度、琼脂浓度,设计了9种培养基,将试管苗进行了常温保存,保存期间调查了不同培养基草莓试管苗丛生芽增殖数,根、愈伤、丛芽的生长量,试管苗的长势,叶绿素的含量及存活率等。结果表明:保存过程中试管苗经历了芽增殖、伸长和根生长的过程,生长越快,养分消耗越多,越不利于保存。草莓试管苗保存培养基应选择适宜浓度的营养物质来限制试管苗的生长。本试验中培养基(1/4MS+0.5mg/LBA+15g/L蔗糖+12.5g/L琼脂)是常温下草莓试管苗保存的最适培养基,在此培养基中可保存草莓试管苗11～13个月。     

三种食用百合种质资源限制生长保存及遗传稳定性研究

以3种食用百合试管苗为试材,采用限制生长保存法,研究了不同浓度生长抑制剂对食用百合试管苗保存效果的影响,并对保存后的试管苗进行遗传稳定性检测,以期建立食用百合种质资源离体保存体系。结果表明:龙芽百合试管苗用10mg·L~(-1)防落素(PCPA)处理保存300d后,试管苗生长缓慢,存活率达96.00%;川百合试管苗用2.0mg·L~(-1)青鲜素(MH)处理保存150d后,试管苗的抑制生长效果明显,结鳞率和存活率高达100.00%;兰州百合试管苗用10mg·L~(-1)多效唑(PP333)处理保存300d后,试管苗抑制作用明显,结鳞率达100.00%,存活率达94.40%。比较限制生长保存后与未保存植株的可溶性蛋白和酯酶同工酶图谱,各处理和对照图谱带相似,初步证明了以上保存方法的可行性,较好的保持了遗传稳定性。     

渗透压对马铃薯种质试管保存的影响效应

用添加不同浓度及不同配比蔗糖与甘露醇的培养基对马铃薯试管苗进行离体保存研究.研究结果表明,MS+60g/L蔗糖+10(20)g/L甘露醇和MS+80g/L蔗糖10(20)g/L甘露醇均能使马铃薯试管苗连续保存9个月,其中80g/L蔗糖和20g/L甘露醉组合处理保存9个月时存活率最高,达到83.3%,且诱导试管薯形成.     

东方百合和麝香百合的快速繁殖技术研究

以东方百合和麝香百合为试材,以MS培养基为基础培养基,附加不同种类和浓度的植物生长调节物质(6-BA,NAA,IAA,IBA)诱导丛生芽及再生植株,从8个方面对百合的组培进行了研究。结果表明:最佳灭菌时间为8～10 min;最佳取材部位是百合鳞茎的基部鳞片;由于基因型以及内源激素不同,试验的5个品种中‘雪皇后’的诱导分化率最高100%,在东方百合中‘西伯利亚’的诱导分化率最高,达73.3%。MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.5 mg/L为最佳继代增殖培养基;1/2MS+IAA0.1 mg/L+IBA0.01 mg/L为最佳生根培养基;试管苗移栽的最适基质为珍珠岩∶草炭土∶河沙=1∶1∶1,成活率可达97.5%;最佳试管内结球培养基为:1/2MS+IAA0.1 mg/L+IBA0.01 mg/L+蔗糖10%+多效唑10 mg/L。     

食用百合试管苗缓慢生长保存的研究

为了建立食用百合种质资源缓慢生长保存体系,将扩繁培养后得到的试管苗接种到12种不同培养基中,10℃和25℃下分别保存6个月,观察不同处理试管苗生长情况。结果表明:低浓度甘露醇对百合试管苗生长的抑制效果差,而高浓度甘露醇严重影响其生长势,缓慢生长保存的最适浓度为20g·L-1;蔗糖对百合试管苗的生长有抑制作用,适宜浓度为60g·L-1;20g·L-1甘露醇+60g·L-1蔗糖处理的百合试管苗存活率均达100%,且有鳞茎形成,保存效果最好。10℃保存的试管苗生长缓慢,有利于鳞茎形成,保存至6个月时不需要继代培养;25℃保存试管苗的鳞茎形成率低,培养基损失量高,必须继代才能继续保存。     

君子兰试管苗叶片植株再生的影响因素研究

以君子兰试管苗叶片为试材,研究了不同培养基、叶片不同部位、增殖代数等因素对其植株再生的影响.结果表明:君子兰试管苗叶片基部再生能力最强,其最佳诱导分化培养基为MS+ZT 1.5 mg/L+KT 0.5 mg/L+NAA 0.5mg/L;组织培养增殖1～7代试管苗叶片的再生能力较强,随之培养再生能力减弱,10代后再生能力最弱;培养基1/2MS+IBA 1.0 mg/L为试管苗生根最适宜的培养基,生根率达98多以上.     

多效唑对芋种质离体保存影响的初步研究

以荔浦芋无菌试管苗为材料,研究了试管苗保存过程中不同浓度多效唑（PP粥）对试管苗保存效果的影响。研究结果表明,多效唑对芋种质资源的离体保存有显著影响,在光照时间14～16h／d,光照强度1500lx,室温（26＋2）℃的培养条件下,在MS＋6-BA2．5mg／L＋NAA0．02mg／L＋30g/L蔗糖的培养基中添加0．6mg／LPP粥,试管苗可保存240d,存活率为89．7％,且恢复生长后试管苗形态正常、长势良好,与对照株无明显差异。     

食用百合种质资源离体保存技术研究

为建立食用百合种质资源离体保存体系,将试管苗接种到6种不同培养基中,分别在不同温度、光照下保存6个月,观察不同浓度的脱落酸和甘露醇对试管苗生长的影响。结果表明:2℃和5℃,培养基中加入甘露醇和脱落酸均可有效抑制试管苗生长,保存6个月后均正常生长;10℃和25℃不同浓度的甘露醇和脱落酸对百合试管苗存活率、株高及鳞茎形成均有影响。甘露醇浓度低对生长抑制效果差,浓度高对生长势影响严重,浓度20 g/L时保存6个月存活率仍达94.6%,且利于鳞茎形成,对百合试管苗保存效果最好;脱落酸较甘露醇更能抑制试管苗生长,但随保存时间延长存活率减低,叶尖枯死,浓度越高越严重,不利于鳞茎的形成。     

欧李绿枝组织培养与快速繁殖研究

以钙果三号嫩茎为外植体、MS为基本培养基,初步建立了欧李试管苗的快速繁殖体系.结果表明,诱导嫩茎分化生长较适宜的培养基为MS BA1.0 mg/L IAA1.0 mg/L;MS培养基较B5、改良White培养基更有利于试管苗的嫩茎增殖,试管苗增殖的适宜的蔗糖浓度30g/L～40 g/L;培养基中BA和NAA浓度,以及pH值对欧李组培苗的增殖系数影响较大,3因素的影响次序为BA＞pH值＞NAA,最佳增殖培养基为BA0.2 mg/L,NAA0.05 mg/L,pH值6.2;最佳壮苗培养基MS NAA0.07 mg/L;最佳生根培养基为1/2MS NAA0.4 mg/L.     

薯蓣茎段组织培养的研究

以薯蓣的单芽茎段为外植体,采用不同种类、浓度的植物生长调节剂进行离体培养。研究结果表明,以MS为基本培养基(蔗糖30g/L、琼脂6g/L),附加0.2 mg/L BA 0.01 mg/L NAA作为芽诱导培养基效果最好,诱导率高达83.2%,芽苗长势良好,叶片较大,叶色浓绿;继代增殖培养以MS 0.5 mg/L BA 0.05 mg/L NAA为最佳培养基,培养25d后增殖系数达4.38;诱导生根的最佳培养基为1/2 MS 0.2 mg/L IBA,生根率为86.7%,组培苗根系粗壮,长势旺盛。     

Plantlet regeneration and stability from callus cultures of Freesia × hybrida Bailey cultivar ‘Royal’

True-to-type plantlets of Freesia × hybrida Bailey cultivar ‘Royal’ were generated from callus after 27 months of sub-culture in liquid medium. Callus was initiated from young flower pedicels cultured on semi-solid Linsmaier—Skoog (LS) medium supplemented with 5 mg/l of 2,4-D and 0.5 mg/l kinetin, and transferred to the same medium in liquid form without hormones and thereafter sub-cultured every 7–10 days. Liquid cultures with 2.4–4.3 g of callus per 25 ml medium produced largest increases in callus fresh weight. Callus generated the most shoots when cultured on LS medium supplemented with 5 mg/l of kinetin and incubated in the light, while fewer plantlets were produced when no growth regulator or GA₃ or PBA were used. Callus cultures incubated in continuous darkness did not form shoots.     

酸枣的组织培养与快繁

用酸枣种仁在MS0培养基上培养无菌苗，然后接种在增殖培养基上增殖，再转接在生根培养基上生根。结果表明，适宜酸枣无菌苗高效增殖的培养基为MS BA1mg/L IBA0.2mg/L 蔗糖3%，在1/2MS IBA1.0mg/L 蔗糖2%生根培养基上暗培养10天，再转光下培养，无菌苗生根率为74.4%。     

山桃茎尖培养研究

本文对原产我国的优良桃砧木—山桃[Prunus davidiana(Carr.)Franch]进行了茎尖培养的研究。山桃茎尖在G培养基上增殖与生长最好。适宜的激素浓度为(毫克/升)BA1.0、IBA0.5,若再加入GA0.1,可明显促进新梢的生长。附加BA、IBA各0.1的G和1/2G大量元素培养基适于继代培养。培养出的新梢在1/2MS培养基中附加0.1毫克/升NAA生根率高,在新梢基部削伤和暗培养可提高生根率。小植株已成功移栽入土。     

苹果体细胞悬浮培养及植株再生研究

以苹果试管苗叶片的再生不定芽嫩叶为试材,对苹果体细胞悬浮系的建立及植株再生的影响因素进行了研究.结果表明:在MS+NAA 0.5 mg/L+BA 2.0 mg/L培养基上可诱导获得高活力的愈伤组织.将该愈伤组织转入MS+2,4-D 2.0 mg/L+BA 1.0 mg/L液体培养基中培养,采用无菌筛网分离获得含单个细胞和少于8～10个细胞的小细胞团进行继代培养,建立体悬浮细胞培养系.将悬浮细胞转到MS+2,4-D 2.0 mg/L+BA 1.0 mg/L的固体增殖培养基上暗培养25 d后,可形成微型愈伤组织,将该愈伤组织转到MS+BA 5.0 mg/L+IAA 0.5 mg/L的植株再生培养基上暗培养30 d后转入光下,光照培养30 d后53％的愈伤组织可再生植株.该研究建立的苹果体细胞悬浮培养技术,不仅可用于细胞融合及遗传转化过程中杂种细胞和转化细胞的分离及植株再生研究,而且对于利用组织培养技术筛选变异株系也具有重要意义.     

地被月季‘Royal Bassino’高频再生体系的建立

 以地被月季‘RoyalBassino’为试材, 进行了组培快繁和外植体再生条件的研究。结果表明,以带有腋芽的茎段为外植体, MS中添加6-BA 1.5 mg/L和IBA 0.1 mg/L 为最适诱导培养基, 诱导出芽率100%; MS中添加6-BA 0.5 mg/L和IBA 0.05 mg/L可以获得最高增殖倍数(6.3) ; 而添加IBA 0.01 mg/L的1/2MS为最佳生根培养基, 生根率92%。试管苗经7 d驯化后, 移栽成活率在99%以上。分别以叶柄、叶盘和茎段为外植体进行再生培养, 以MS为基本培养基, 叶柄在添加噻苯隆(TDZ) 7μmol /L的诱导培养基中暗培养10 d后, 转接到添加6-BA 0.5 mg/L的再生培养基中光照培养约20 d, 可以获得57.1%的芽再生率。     

扎米莲( Zamioculcas zamiifolia) 叶片的植株再生

 建立了从扎米莲叶片直接再生植株的有效方法。结果表明, 扎米莲叶片外植体在仅加6-BA 或NAA 或2 ,4-D 的培养基中培养8 周后都不能产生幼芽; 但在含不同浓度6-BA (1.0～2.0 mg/L) 和NAA(0.02～0.2 mg/L) 组合的MS 培养基上培养3 周后开始产生幼芽, 其幼芽分化的最佳培养基为MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.02 mg/L。再生芽在添加IBA 0.5 mg/L 的MS 培养基中生根。     

The Influence of Some Genetic and Environmental Factors on the Concentration of L-Ascorbic Acid in the Tomato Fruit

Summary

An efficient, reproducible protocol has been developed for in vitro multiplication of Sida cordifolia L. High-frequency, multiple shoots (90%) were obtained indirectly from nodal explants. Callus was induced when nodal explants were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 0.5 mg l^–1 Kinetin (Kn). These nodal calli were then cultured in order to differentiate multiple shoots on MS medium supplemented with 0.5 mg l^–1 Kn plus 0.5 mg l^–1 naphthaleneacetic acid (NAA). Roots were induced from these multiple shoots following culture on MS medium supplemented with 0.8 mg l^–1 NAA for 4 weeks. Finally, these in vitro plantlets were hardened, acclimatised, and successfully transferred to the field.