多花黄精高效栽培技术

多花黄精是近年来发展较快的中药材,从多花黄精的生物学特性入手,介绍地块选择、整地、种子处理等播种技术,总结水肥管理、除草、摘除花蕾、遮阴和病虫害防治等大田管理技术以及采收技术,以期为多花黄精科学种植提供参考.     

贵阳地区八月瓜与多花黄精套种高效栽培技术

本文从贵阳地区气候环境出发,结合八月瓜和多花黄精的生长特性,从园地建设、种苗定植、定植后管理及适时采收等方面总结了八月瓜套种多花黄精的高效栽培技术,为多花黄精生产拓宽了渠道,助力贵阳市特色中药材产业现代农业发展,切实促农增收。     

多花黄精种苗繁育技术探讨

多花黄精属于多年生的草本植物,近年来人工栽培的数量逐渐提升,主要采用有性类型、无性类型与组培类型的繁殖技术。针对于此,分析了多花黄精繁殖技术的优势与缺点,并提出几点技术应用建议。     

多花黄精林下种植技术

多花黄精是传统的中药材,近年来,市场对其需求量不断增加,但野生黄精的产量严重制约了产业的发展,林下培育仿生黄精是最好的市场补充。文章阐述了多花黄精的形态特征及生物生长习性,研究了多花黄精的药用价值和经济价值,介绍了多花黄精林下种植技术,其中包括土壤选择、育种方式、栽培技术、田间管理及病虫害防治等,以期为多花黄精林下种植技术提供支持。     

多花黄精种子繁殖技术的研究

以组织培养为手段,研究了GA3处理和低温贮藏对多花黄精种子繁殖的影响。结果表明:GA3处理和低温贮藏对多花黄精种子发芽率影响显著。种子经不同浓度的GA3处理,以200 mg/L浓度处理显著优于其他浓度处理;种子经0～4℃低温贮藏2、3、4个月发芽率依次呈显著升高趋势,以低温贮藏4个月的发芽率最高,种子发芽率和出苗率分别达92.10%和90.67%;利用组培快繁技术,种子从采收到温室大棚移栽只需3个多月,移栽成活率可达90.00%以上。     

云南多花黄精适宜采收期初步研究

为确定云南道地药材多花黄精的最适采收期,测定云南金平县多花黄精基地不同生长年限和不同采收月份的多花黄精的多糖含量、鲜干物质重。结果表明,随着生长年限的增加,5年生多花黄精各节的多糖含量呈依次降低的趋势,其中1~3龄节多糖含量相对较高,分别为128、121、97 mg/g,4~5龄节降低为67、58 mg/g;在不同采收月份中,12月、翌年1月多糖含量较高,分别为131.11、133.85 mg/g,且12月根茎鲜重值最高,达到821.41 g,折干率为26.51%。云南产多花黄精最适采收期应该在12月底、翌年1月初,以根茎繁殖的多花黄精3年为其最佳采收年限。     

多花黄精植株再生及繁殖研究

以成熟度为70%的优质多花黄精荚果为外植体,建立其再生体系。结果表明:芽萌发诱导培养基MS+BA0.5mg·L^-1+琼脂7.0g·L^-1+蔗糖20g·L^-1+活性炭0.5g·L^-1,萌发率为61.33%;芽增殖诱导培养基MS+BA1.0mg·L^-1+KT1.0mg·L^-1+NAA0.3mg·L^-1+蔗糖20g·L^-1+琼脂7.0g·L^-1+活性炭0.5g·L^-1,诱导芽数为3.42个,芽增殖率为76.74%;生根培养基1/2MS+IBA0.5mg·L^-1+IAA1.0mg·L^-1+蔗糖20g·L^-1+琼脂7.0g·L^-1+活性炭0.5g·L^-1,生根率为81.71%,平均生根数为6.11个;瓶苗移栽适宜基质为V(泥炭土)∶V(腐殖质)∶V(珍珠岩)=6∶3∶1的混合基质,移栽成活率达85%以上。     

多花黄精种子化学成分及萌发的研究进展

多花黄精作为我国名贵的药食同源多年生草本植物,可补气养阴、消炎止痛和健脾润肺,常用于治疗头痛、冠心病、高脂血症等.近几年,随着食用植物油的迅速发展,多花黄精种子化学成分特别是脂肪酸成分的研究进一步深入,但多花黄精种子具有综合休眠特性,阻碍了其种质资源的充分开发与利用.本文对多花黄精种子的形态结构、化学成分及萌发研究进展...     

多花黄精组织培养快繁技术的研究

[目的]:建立多花黄精组织培养快速繁殖体系。[方法]:以多花黄精带芽根茎为外植体,消毒后将其置于富含不同激素配比的培养基中培养,筛选各阶段合适的培养基。[结果]:在附加有2,4-D的诱导培养基上出现不定芽,增殖培养以MS+6-BA4.0 mg/L+2,4-D0.2 mg/L为好,增殖倍数可达10倍。在增殖培养基中加入GA3有利于壮苗。6-BA、2,4-D、GA3组合更加有利于形成粗壮无根苗。培养基1/2 MS+IBA0.7 mg/L最适合用于诱导黄精不定芽生根,生根率可达95%。[结论]:2,4-D比NAA更有利于多花黄精的不定芽诱导。该繁殖体系可在短时间内提供大量黄精种苗。     

多花黄精种子结构与休眠及萌发的关系研究

本实验主要针对多花黄精种子的形态学结构、内含物等进行研究,使用机械法去除种皮及化学试剂去除种皮束缚,以探究多花黄精种子结构及其休眠类型与萌发之间的关系。结果表明,多花黄精种子粒径大小为(3.950±0.422)mm×(3.683±0.404)mm。鲜种子千粒重为(25.036±2.117)g,生活力为(83.33±5.51)%,鲜种子含水量为(45.29±2.76)%,种子吸水4 d后可达饱和;10%硫酸处理种子1 min为最佳处理方式,可有效打破休眠状态,并提高萌发率。     

多花黄精种子萌发过程的形态和解剖研究

为解除多花黄精种子休眠、促进种子萌发,利用Nikon-SMZ 800体式显微镜观察多花黄精种子不同萌发时期的外观形态,采用石蜡切片法将多花黄精种子特殊部位制成切片,在Olympus-BX 61光学显微镜下观察其解剖结构,探究多花黄精种子萌发过程中的形态变化及解剖特征。结果表明,1)多花黄精种子萌发过程可分为:刚采摘、未萌发、刚萌发、小球茎形成、初生根茎形成和出苗6个阶段;2)成熟的多花黄精种子,其胚未分化出明显的子叶、胚芽和胚根,随着种子的萌发而分化成成熟胚;3)多花黄精种子的萌发伴随着胚乳的降解;4)多花黄精种子同时存在生理休眠和形态休眠,具有形态生理休眠特性。     

不同地区多花黄精的ITS序列分析及近缘种聚类分析

为建立快速鉴定多花黄精的方法及确定其亲缘关系,本研究采用DNA条形码分析的方法,通过对28个多花黄精材料的核糖体DNA内转录间隔区(ITS)片段进行扩增获得ITS序列,进行多重比对,并构建多花黄精及近缘种的系统发育分析树。结果表明:本研究共获得两种多花黄精ITS的单倍型,仅发生一个位点的突变,说明多花黄精种内保守性高,遗传稳定,并可作为多花黄精DNA条形码物种鉴定的对照序列;另外,其与穇属(Eleusine)中穇子(Eleusine coracana)物种亲缘关系最近。本研究为快速鉴定多花黄精提供了新方法,并为多花黄精的后续研究提供了依据。     

多花黄精种子贮藏方式对育苗的影响研究

为了研究多花黄精种子贮藏方式,采用随机区组试验方法,选择两种贮藏方式,比较多花黄精出苗率和产苗量。结果表明:处理A在出苗前期具有一定优势,育苗中后期处理A与处理B无显著差异。生产上建议,多花黄精净干种子置常温室内贮藏,翌年3月份取出播种。     

不同采果期多花黄精的果实成熟度及种子调制研究

[目的]研究多花黄精果实最佳采收期和种子调制方法.[方法]9月1日-11月1日每15d采收1次多花黄精果实,分析果实的颜色比例、百果重、百果体积、果实的纵径、横径和果实硬度;不同采收期的种子不同调制处理,分析种子千粒重、发霉率、生活力、发芽率、发芽势.[结果]绿果和半墨绿果的果实成熟度低,墨绿果的果实成熟度高;10月1日未见绿果和半墨绿果,黑软果出现;11月1日干枯果出现.9月1日、9月15日、10月1日采收的绿果分别发酵20,19,16d和墨绿果分别发酵19,16,4d种子质量最好;10月15日和11月1日采收的果实直接搓洗的种子质量较好.[结论]在种子生产中应该采摘墨绿果、黑软果和干枯果.10月1日至10月15日是贵州六枝地区的多花黄精果实最佳采收日期,此时绿果和墨绿果分别发酵16d和阴干处理的种子质量最好.     

多花黄精不同种源种实形态性状遗传变异研究

旨在阐明多花黄精种实形态性状在种源水平上的遗传变异规律,为多花黄精优良种源选择提供理论依据。以栽植在同质栽培园的18个多花黄精种源为材料,比较了不同种源多花黄精浆果、种子的纵径、横径、侧径等形态性状,以及单果重和种子千粒重等性状的差异。多花黄精种实形态性状及其单果鲜重和种子千粒重在不同种源间均存在着极显著差异;多花黄精浆果形态性状两两之间存在极显著正相关关系,种子形态性状两两之间也存在显著或极显著正相关关系,但绝大多数浆果形态性状与种子形态性状之间的相关性不显著;多花黄精种实形态性状在种源水平上不存在明显的地理变异模式;多花黄精种子形态性状在种源水平上的广义遗传力达到强度遗传范围,能比较稳定地遗传。可以考虑利用种子千粒重这一指标作为多花黄精优良种源选择的间接指标。     

多花黄精开花动态及传粉方式研究

为了研究多花黄精花部特征、开花习性、柱头可授性与传粉方式,在多花黄精花期定株定点记录观察开花习性、观察传粉昆虫;测量花部特征、测定柱头可授性.结果表明,多花黄精4月16日现蕾,4月29日开花,5月4日花朵凋谢.传粉昆虫为马蜂、蜜蜂和蚂蚁等.多花黄精的花冠直径为6.43 mm,花冠营长度约为1.43 mm,花丝长度约为1.00mm,花柱长度约为0.97 mm.开花第1天,柱头即有可授性;花开后第2天柱头可授性较强;花后第3天、第4天柱头可授性逐渐降低,第5天不具有可授性.该试验结果为黄精规范化栽培及良种繁育提供了理论依据.     

高盐低pH值法优化多花黄精叶绿体DNA提取方法

本研究采用高盐低p H值法提取多花黄精叶绿体DNA (cpDNA),并通过L9(33)正交试验,以缓冲液中的Na Cl浓度、叶片用量及去核离心力为考察因素,优化多花黄精cpDNA提取工艺,并设计核基因组及叶绿体基因组特异性引物,验证cpDNA质量。结果表明,当NaCl浓度为1.50 mol/L,叶片用量为10 g,去核离心力为600×g时,以提取的cpDNA为模板,进行PCR扩增,能扩增出叶绿体基因片段且没有扩增出核基因片段,表明提取的cpDNA没有核基因组污染,质量好,产率高,能满足后续基因扩增等实验要求,该条件为本研究的最佳条件。该方法简便快速,对实验仪器要求不高,成本低,能够为黄精属植物cpDNA的提取提供参考。     

林下种植黄精栽培技术探究与发展

黄精是一种具有重要价值的植物,能够在医疗保健品、日常食用及经济增收等领域发挥显著的作用。在黄精种植过程中,林下种植黄精是目前兴起的一种重要的种植方式,不仅能够节省一定的林地空间,对于生态平衡也有一定的积极作用,同时也能够满足黄精的生长需要。但是,在林下种植黄精的过程中,关于黄精的栽培是重要的环节,如果黄精栽培环节出现问题,对于黄精的生产和预期经济收益都有不利的影响。     

黄精多倍体诱导初报

通过人工诱变,使多花黄精染色体加倍,提高生物产量与品质,为大面积人工种植提供优良品种.种子经过人工打破休眠后,在MS+6-BA 1.0mg/L+2,4-D 0.5mg/L离体培养形成愈伤组织,再转入MS+TDZ 1.5mg/L+2,4-D1.0mg/L培养15～20d,用脱脂棉球浸泡于添加2%二甲基亚砜的0.05%～0.15%秋水仙素溶液中,在无菌条件下覆盖在愈伤组织上,进行染色体加倍诱导处理,再转移到MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 2.0mg/L的分化培养基上,将分化出叶片的小苗转移到1/2MS+NAA1.0mg/L生根培养基上.结果表明:0.05%质量浓度的秋水仙素处理48h变异株诱导率最高达18.7%.0.1%和0.15%浓度处理24h的诱导率次之,为16.7%,0.1%浓度处理48h变异率虽然只有16.2%,但其变异株倍性稳定性较好,整倍率较高.