一品红茎段组织培养研究

以一品红(Euphorbia pulcherrima)中的深红一品红(AnnetteHegg)幼茎和腋芽为外植体,以MS为基本培养基并附加不同的生长激素,进行了愈伤组织诱导、愈伤组织分化出芽以及腋芽增殖的研究。结果表明茎段愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+6-BA 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L;愈伤组织分化出芽的最佳培养基为MS+6-BA 1.2 mg/L+NAA 0.2 mg/L;腋芽启动的最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L。     

滁菊组织培养脱病毒技术研究

采用改良热处理结合茎尖分生组织培养的方法,建立滁菊组培脱毒快繁技术体系.研究结果表明,滁菊茎段诱导的最佳培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA;茎尖增殖的最佳培养基为MS+1.0mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA;壮苗生根的最佳培养基为1/2MS+0.1mg/L NAA.接种脱毒结果为,脱毒率＞83%,茎尖成活率＞42%.     

6-BA和2，4-D对黄独带芽茎段生长发育的影响

【目的】探讨6-BA和2,4-D对黄独带芽茎段生长发育的影响,为黄独的产业化生产提供理论依据。【方法】采用植物组织培养的方法,将黄独带芽茎段（0.5~1.5 cm）接种至液体培养基进行单因子试验。【结果】黄独带芽茎段芽增殖的最佳培养基为MS;黄独带芽茎段芽增长的最佳培养基为MS+6-BA 1 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L;黄独带芽茎段芽增粗的最佳培养基为MS+6-BA 2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;黄独带芽茎段生根的最佳培养基为MS;黄独带芽茎段茎长增加的最佳培养基为MS+6-BA 2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;黄独带芽茎段茎粗增加的最佳培养基为MS。【结论】黄独带芽茎段的芽增殖和生根最好不要使用6-BA与2,4-D组合,但黄独带芽茎段如在其他培养基诱导出新芽后,则可利用6-BA与2,4-D组合来促进芽的增长、增粗以及茎长的增加。     

Effects of 6-BA and 2, 4-D on growth and development of Dioscorea bulbifera L.budded stems

[目的]探讨6-BA和2,4-D对黄独带芽茎段生长发育的影响,为黄独的产业化生产提供理论依据.[方法]采用植物组织培养的方法,将黄独带芽茎段(0.5-1.5 cm)接种至液体培养基进行单因子试验.[结果]黄独带芽茎段芽增殖的最佳培养基为MS;黄独带芽茎段芽增长的最佳培养基为MS+6-BA1 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L;黄独带芽茎段芽增粗的最佳培养基为MS+6-BA 2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;黄独带芽茎段生根的最佳培养基为MS;黄独带芽茎段茎长增加的最佳培养基为MS+6-BA 2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;黄独带芽茎段茎粗增加的最佳培养基为MS.[结论]黄独带芽茎段的芽增殖和生根最好不要使用6-BA与2,4-D组合,但黄独带芽茎段如在其他培养基诱导出新芽后,则可利用6-BA与2,4-D组合来促进芽的增长、增粗以及茎长的增加.     

一品红“柠檬雪”茎段组织培养快繁技术

以一品红品种“柠檬雪”为研究材料,系统地研究其茎段的诱导繁殖、生根壮苗培养以及驯化移栽等,探索一品红“柠檬雪”茎段快繁的最佳途径并构建其快繁体系.研究结果表明:以优良母株的具腋芽茎段为外植体,经0.1％HgCl2灭菌20 nin,成活发芽率达62.2％;适宜茎段诱导的培养基配方是MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA0.2 mg/L,芽的萌动率为68.3％;适宜试管苗增殖的培养基为MS+6- BA 0.5 mg/L+ NAA0.1 mg/L,不定芽平均分化系数为3.57.在壮苗生根过程中最适培养基为1/2MS+ NAA 0.5 mg/L,生根率为73.2％,平均生根数为2.8条;驯化移栽期间的最佳基质是泥炭:珍珠岩:蛭石=1:1:1,平均成活率达85％.     

辣椒组织培养再生体系的影响因素研究

以早熟辣椒、红线辣椒、茄门大辣椒(绿辣椒)3个品种为材料,研究了辣椒组织培养再生体系的影响因素。结果表明:红线辣椒为最佳基因型,辣椒离体再生最适外植体为茎段、子叶。诱导茎段愈伤生成的最佳培养基为MS+0.10 mg/L 6-BA+2.0 mg/L NAA;子叶愈伤生成的最佳培养基为MS+0.10 mg/L6-BA+4.0 mg/L NAA;高效不定芽分化培养基为MS+5.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IAA;高效不定根分化培养基为MS+0.5 mg/L IBA+0.1 mg/L NAA。     

基本培养基及激素和附加物对黄芪组织培养的影响

黄芪茎段组织培养研究的结果表明,黄芪茎段的最佳初代培养基为MS+6-BA 0.1 mg/L和MS+6-BA2.5 mg/L+NAA0.5 mg/L;MS+6-BA2.5mg/L+NAA 0.5 mg/L可作为继代培养基;高浓度的6-BA可促进黄芪短枝产生不定芽;附加物对短枝生长的影响随浓度和种类而变化,但促进生长的影响...     

无患子优选树茎段离体培养体系的建立

【目的】筛选无患子茎段离体快繁最佳培养基,建立无患子优良种苗快速繁育体系。【方法】以野外选优获得的无患子树带腋芽茎段为外植体,采用L9(33)正交试验对影响外植体灭菌的HgCl2浓度、HgCl2与酒精的作用时间,不定芽诱导萌发中的6-BA、NAA及蔗糖用量,继代增殖中6-BA与KT用量和芽苗生根中的MS培养基无机盐水平、6-BA和2,4-D用量进行优化。【结果】75%酒精浸泡1 min,再用0.2% HgCl2处理7 min是无患子茎段灭菌的最佳方法,其外植体成活率高达83.33%;MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+20.0 g/L蔗糖是无患子茎段腋芽萌发的适宜培养基,诱导率高达96.67%;MS+0.7 mg/L 6-BA+0.1 mg/L KT是无患子茎段腋芽增殖的适宜培养基,30 d可增殖4.13倍;1/3 MS+0.5 mg/L 6-BA+0.7 mg/L 2,4-D是诱导芽苗生根的适宜培养基,平均生根率为41.50%。【结论】建立的无患子离体培养体系为:外植体茎段用75%酒精浸泡1 min,再用0.2% HgCl2灭菌7 min,在MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+20.0 g/L蔗糖培养基中诱导腋芽萌发,在MS+0.7 mg/L 6-BA+0.1 mg/L KT培养基中进行增殖培养,在1/3MS+0.5 mg/L 6-BA+0.7 mg/L 2,4-D培养基中进行生根培养。     

川青牛胆离体繁殖技术优化研究

为优化青牛胆离体繁殖技术,建立四川青牛胆快速繁殖技术体系的方法,本试验以川青牛胆幼嫩茎段为外植体,通过组织培养技术,探究适用于幼嫩茎段快速繁殖的最佳培养基。结果表明：最佳快速繁殖培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,诱导率达90.0%;最佳增殖培养基为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA;最佳生根培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA,生根率为97.5%;驯化移栽成活率为100.0%。     

紫薇茎段离体培养体系的优化

以矮首领紫薇当年生半木质化带腋芽茎段、硬枝茎段以及叶片为外植体,从消毒时间、启动培养基、增殖培养基和生根培养基选择等方面进行离体培养体系的优化。结果表明,茎段为较好的外植体。最佳消毒时间:带腋芽茎段用0.1%升汞处理8 min,诱导率为66.67%;带水培芽茎段用0.1%升汞处理4 min,诱导率为65.55%;叶片用0.1%升汞处理4 min,诱导率为55.56%。带腋芽茎段最佳启动培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.10 mg/L,诱导率为83.33%。腋芽和水培芽的最佳增殖培养基均为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.30 mg/L。腋芽增殖系数为2.42,芽长为3.2 cm;水培芽增殖系数为3.21,芽长为2.1 cm。腋芽最佳生根基本培养基为1/2MS,最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg/L,生根率为96.67%;水培芽最佳生根培养基为1/2MS+IBA0.5 mg/L+活性炭(AC)0.1 g/L,生根率为81.25%。     

一品红的组织培养与快速繁殖

针对一品红常规繁殖速度较慢的问题,取一品红嫩茎作外植体,探讨了其离体快繁技术。通过分析不同的灭菌时间对一品红外植体灭菌效果的影响,不同的激素配比对芽的诱导及增殖的影响、不同的激素对生根的影响,筛选出了一品红外植体的最佳灭菌时间为5min;研究出了一品红的最适初培培养基为MS+6 BA1mg/L+2,4 D0 1mg/L,分化培养基为MS+6 BA1mg/L+IBA0 2mg/L,生根培养基为1/2MS+NAA0 2mg/L。并研究了试管苗的移栽技术。     

一品红组织培养条件优化

[目的]为培育出更优良的一品红,实现工厂化育苗。[方法]采用组织培养的方式,通过正交试验优化一品红培养基中植物生长调节物质（PGR）的浓度及配比。[结果]最佳外植体为绿色叶片,最佳培养基为MS培养基,最佳消毒时间7～9 min,初期诱导最佳碳源为3%蔗糖;诱导嫩叶产生愈伤组织的最佳培养基为MS＋1.00 mg/L6-BA＋0.10 mg/LNAA＋0.50 mg/L2,4-D;愈伤组织分化的最佳培养基为MS＋1.50 mg/L6-BA＋0.10 mg/LNAA＋1.50 mg/L2,4-D;丛生芽增殖的最佳培养基为MS＋1.00 mg/L6-BA＋0.10 mg/LNAA＋0.50 mg/L2,4-D;诱导生根最佳培养基为MS＋0.05 mg/LNAA。[结论]筛选出最佳的一品红培养基及其最佳PGR配比,为实现一品红工厂化育苗奠定了基础。     

红叶乌桕茎段离体培养的研究

以带芽茎段、茎尖做外植体,建立了红叶乌桕的组织培养和再生体系。结果表明:①外植体用升汞分两次共处理8 min,污染率低;②启动培养以MS+6-BA 1.0 mg/L+2,4-D 0.05 mg/L+NAA 0.1 mg/L为最佳配方;③接种后先进行暗培养1周,启动较快;④继代培养以MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L,其月增殖系数为6.17;⑤生根诱导以1/2MS+NAA 1.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L效果最好,其生根率为87.6%;⑥生根苗移栽到珍珠岩∶蛭石∶河沙=3∶2∶1的育苗基质中,成活率为83.2%。     

百合组培快繁技术研究

以食用百合鳞片作外植体 ,以MS为基本培养基 ,对其组培快繁技术进行了研究。结果表明 ,适宜的芽诱导培养基为MS + 1 .0mg/L 6-BA + 0 .1mg/LNAA + 1 .0mg/LKT ;适宜的快繁培养基为MS + 1 .0mg/L 6-BA + 0 .0 1mg/LNAA + 0 .5mg/LKT ;适宜的生根培养基为MS + 0 .1mg/LIBA ;芽诱导和快繁较适宜的条件为光照 1 6h/d、温度 ( 2 5± 1 )℃ ;在光照 1 2h/d、温度 ( 2 5± 1 )℃条件下较易生根     

植物生长调节物质对一品红腋芽分化增殖的影响

[目的]寻求植物生长调节物质对腋芽分化增殖的最佳配比。[方法]将旗帜和福星2个一品红品种的腋芽茎段接种于附加不同浓度和配比激素的培养基上,研究不同植物生长调节物质及配比对腋芽分化增殖的影响。[结果]培养基单独添加0.5～1.0mg/L6-BA时,一品红有较高的芽增殖率,且分化出的不定芽可正常生长发育成小苗。培养基单独添加0.1～0.5mg/LNAA对腋芽增殖率及苗高的影响差异并不明显,增殖率较低,但可促进不定芽发育健壮。旗帜以1.0mg/L6-BA与0.2mg/LNAA配比效果较好,有较高的芽增殖率,且芽生长健壮,培养40d后,苗高可达4cm。福星以0.5mg/L6-BA与0.1mg/LIBA配比效果最好,芽增殖率达4.8倍,且芽生长健壮,叶色绿。[结论]6-BA对一品红腋芽的分化和增殖起决定作用,可以诱导腋芽分化并增殖,与IBA、NAA配比效果更佳。NAA对不定芽的生长有明显的促进作用。     

野生泸定百合鳞片的组织培养技术

为野生泸定百合资源的保护及开发应用提供依据,以其鳞片为外植体,观察其不定芽的诱导、增殖以及生根培养情况。结果表明:野生泸定百合鳞片用0.1%升汞消毒15 min,效果较好;MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L为野生泸定百合鳞片最佳不定芽诱导培养基,平均每鳞片分化芽数达5.4个;MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.05mg/L为鳞片最佳增殖培养基,增殖系数达7.66;1/2MS+IBA 1.0mg/L为鳞片最佳生根培养基,生根率达95.2%,平均根数5.3条,平均根长3.9cm。     

石橄榄种子无菌播种和快速繁殖研究

[目的]建立石橄榄种子无菌播种和快速繁殖技术体系。[方法]以MS为基础培养基,添加不同浓度6-BA、NAA、有机添加物,筛选适宜的诱导、增殖及壮苗生根培养基组合。[结果]以MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+椰子汁50 mL/L为石橄榄种子最佳诱导培养基,14 d可见种子萌动,45 d可分化形成丛生幼苗;以MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+椰子汁50 mL/L为最佳增殖培养基,其增殖倍数可达2.750倍,假鳞茎形成率达24.5%;以1/2MS+NAA 0.1 mg/L+AC 1 g/L为最佳壮苗生根培养基,苗高可达3.82 cm,根数1.9条。[结论]该研究为石橄榄野生种质资源保护、快速繁育优质种苗奠定了基础。     

黑树莓茎尖组织培养研究

取春季黑树莓的嫩枝条,以茎尖为外植体,MS为基本培养基,添加植物激素6-BA、NAA、GA3筛选培养基,进行茎尖组织培养研究。试验结果表明,诱导茎尖萌发的最佳培养基为MS＋0.5 mg/L 6-BA＋0.05 mg/L NAA,萌发率高达90%;继代培养最佳培养基为MS＋1.0 mg/L 6-BA＋0.02 mg/L NAA＋6.0 mg/L GA3,繁殖系数达6.0～7.0;生根最佳培养基为MS＋0.5 mg/L6-BA＋0.1 mg/L NAA,生根率为96%。     

白兰花组织培养技术的初步研究

以白兰花半木质化的侧芽为外植体,用两种灭菌剂配合使用比单一使用效果要好,污染率从100%下降到20%以下;最佳芽诱导培养基为1/2MS+6-BA1.0mg/L+2,4-D0.1mg/L+KT0.5 mg/L+椰子水5%+蔗糖30g/L+琼脂5.8 g/L;最佳增殖培养基为MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L+KT0.1mg/L+GA30.1mg/L+蔗糖6%+琼脂粉5.8g/L.