鸡精原细胞分离纯化与体外培养初探

本研究以组合酶分步消化法并利用Percoll梯度分离、贴壁纯化的方法，从不同时期的鸡睾丸组织中分离精原细胞。结果发现：①Percoll分离后，出壳6d雏鸡获得的细胞总数、精原细胞总数、精原细胞纯度分别为282．1、174．6、61．9％，其中精原细胞纯度比孵化15d、19d鸡胚和出壳后13d雏鸡分别高10．2％、5．7％和2．5％；②贴壁纯化后精原细胞纯度达到82％，比未经贴壁纯化的精原细胞纯度高出15．6％；③在无饲养层培养条件下，比较Percoll梯度分离前、后鸡精原细胞体外培养的情况，Percoll梯度分离前精原细胞贴壁在时间上比分离后较快，且分离前精原细胞体外存活时间亦比分离后长。     

鸡胚睾丸支持细胞的传代培养与鉴定

以孵化18d的广西土鸡鸡胚为实验材料,采用两步酶消化法分离鸡胚睾丸支持细胞,置于37℃、5％C02的培养箱中培养,用低渗的磷酸缓冲液（PBS）处理进行纯化,并对原代和传代支持细胞进行了鉴定。结果显示,睾丸支持细胞生长良好,已传至第4代;经低渗处理,可去除绝大部分的生精细胞,获得的支持细胞纯度可达95％;鉴定结果显示,支持细胞为碱性磷酸酶（AKP）阴性;油红O染色显示,支持细胞胞质内舍有大量的脂肪滴,核内有双极小体;丫啶橙染色证明支持细胞的细胞质中富含RNA,细胞核内的DNA含量也较高;罗丹明123染色证明支持细胞含有丰富的线粒体。结论：经两步酶消化法以及低渗处理后能得到纯度较高的鸡胚睾丸支持细胞;37℃、5％CO2的培养条件适宜支持细胞的生长;AKP染色、油红O、丫啶橙和罗丹明123等方法简单易行,适用于鸡胚睾丸支持细胞的鉴定。     

蒙古马睾丸支持细胞的体外分离培养与鉴定

为研究一种简单快速分离蒙古马睾丸支持细胞并保证其活性的基本方法,本试验采集2岁蒙古马睾丸组织于低温环境下进行机械分离,将1~3 g睾丸组织剪碎,采用重力沉淀法去除游离的红细胞和间质细胞;使用0.1%胶原酶Ⅳ和0.25%胰蛋白酶+EDTA逐步进行组织消化,并用含有10%胎牛血清的培养基进行细胞培养;在接种后采用差异贴壁法分离纯化支持细胞,使用Tris-HCl低渗法去除杂质细胞,并采用碱性磷酸酶（AKP）染色、HE染色、实时荧光定量PCR方法进行鉴定。结果显示,支持细胞贴壁性能较强,培养24 h后大多数细胞开始贴壁,细胞形状呈椭圆形;培养48 h后胞质增多,折光性变强;培养3~4 d细胞胞质展开紧密连接,此时细胞呈三角形,有明显的核仁,培养6~7 d细胞生长状态进入稳定期。实时荧光定量PCR结果显示,GATA4和GDNF基因在培养细胞中极显著表达（P<0.01）,AKP染色支持细胞呈阴性表达,表明分离培养的细胞确为支持细胞。本试验使用机械分离法与两步酶消化法处理组织,可快速高效地获得睾丸支持细胞,成功构建了蒙古马睾丸支持细胞体外培养方法。     

犊牛睾丸支持细胞的分离与冷冻保存

以新生犊牛睾丸为实验对象,应用组合酶法进行支持细胞分离培养,并研究了冷冻保存后支持细胞的生长特性。结果表明:在细胞分离时,消化睾丸组织,分离曲细精管法所获得的细胞悬液中的有效细胞数高于组织剪碎法。支持细胞体外培养,4 h后开始贴壁,3~4 d铺满培养皿底壁,传代后细胞生长较快,2 d即可增殖一代。HE染色,胞质染色较淡,而细胞核染色较深,呈圆形或椭圆形位于细胞质中央或偏位,核仁明显。采用10%FBS+10%DMSO的DMEM液做冷冻液,对细胞进行冷冻保存时,支持细胞的复苏率在65%以上。解冻后的支持细胞体外培养,4h开始有细胞贴壁,24h后大部分细胞贴壁,3~4d铺满培养皿底壁。     

小鼠睾丸支持细胞的分离培养及其影响因素

为了简化小鼠睾丸支持细胞的分离方法,提高支持细胞的获取量,试验取初生6 d的昆明白小鼠睾丸,去除白膜,剪碎后用0.25%胰蛋白酶消化,制成细胞悬液并分装于25 cm2的培养瓶中,置于37℃、5%CO2的培养箱中孵育48 h,取出后冲洗2次,换液并继续培养。结果表明:支持细胞数占培养细胞总数的90%以上。     

牦牛与犏牛睾丸支持细胞分离培养及生物学特性比较分析

旨在建立牦牛与犏牛睾丸支持细胞分离培养及鉴定方案,比较两种牛睾丸支持细胞的生物学特性.本研究分别采集24月龄的3头健康公牦牛与3头F1代公犏牛睾丸组织作为2个样品组,其中每组3个生物学重复,分别通过混合酶消化、差速贴壁和饥饿处理分离得到两种牛的睾丸支持细胞,采用DMEM高糖及DMEM/F12培养基培养睾丸支持细胞,筛选...     

小鼠睾丸支持细胞分离培养及生物学特性鉴定

为了揭示睾丸支持细胞在精子发生及睾丸免疫豁免中的生物学作用,采用胰蛋白酶、胶原酶分步消化法和1/3浓度的Hank′s低渗液、50mmol/L Tris-HC(l pH7.1)液分别低渗处理及油红O脂质染色法对16～22d的幼鼠睾丸进行分离、纯化和生物学特性鉴定。结果表明:分离、纯化后的睾丸支持细胞损伤少、活率高、睾丸支持细胞占培养细胞总数的90%以上;根据形态学观察及油红O脂质染色法鉴定,睾丸支持细胞的生长状态良好,细胞突起很多,核仁清晰,胞质中可见大小不等的红色空泡状脂质小滴。     

新生牛睾丸未成熟支持细胞的分离培养与鉴定

为了探究中国西门塔尔牛新生牛睾丸未成熟支持细胞的体外培养特性,为细胞水平研究与繁殖性状相关候选基因奠定基础.以新生牛曲细精管为试验材料,利用组合酶消化法将其解离成单细胞悬液,采用差速贴壁法纯化未成熟支持细胞后进行体外培养与鉴定.结果 表明:福尔根染色结果可见所分离的细胞具有明显的双极小体;RT-PCR检测结果显示,所分...     

小鼠睾丸支持细胞体外分离培养的研究

为了研究一种能快速、高效地分离、纯化小鼠睾丸支持细胞的方法,试验采用颈部脱臼的方法处死3周龄的小白鼠,取其睾丸并去除附属组织(血管、白膜脂肪等)后剪碎,用Ⅳ型胶原酶和胰蛋白酶分步消化制备细胞悬液进行培养,台盼蓝染色以鉴定细胞的活率;再对细胞悬液进行低渗溶液处理并利用支持细胞贴壁而其他细胞不贴壁的特性对其进行分离、纯化;最后对支持细胞采用H.E.和油红O染色的方法进行鉴定,观察其形态、结构和生长增殖情况。结果表明:该方法能够有效地分离、纯化以及培养小白鼠睾丸支持细胞。     

鸡精原细胞分离与纯化初探

采用二酶三步消化法处理鸡睾丸组织,获得的细胞悬液以Percoll作为介质并结合细胞选择性贴壁培养纯化精原细胞。结果发现：1mg/mL胶原酶 0．25％胰蛋白酶 0．25％胰蛋白酶处理鸡睾丸组织,获得的细胞总数多达5．8×10~6个；Percoll离心后精原细胞主要位于19％～35％梯度层中,纯度平均达到66．4％；贴壁纯化后精原细胞纯度则达到82％,比未经贴壁纯化的精原细胞纯度高15．6％。     

长大杂母猪黄体细胞的分离和培养

黄体的主要功能是分泌孕酮,为动物妊娠所必需。尤其对于猪,黄体是整个妊娠期孕酮的惟一来源,猪的整个妊娠期都需要有黄体的支持。妊娠期间任何时候黄体功能被破坏,都会在24～36h内导致流产[1]。笔者在查阅文献时,罕见对猪黄体细胞的研究报道,故笔者参照相关文献方法[2～9],探索了长大杂母猪黄体细胞的分离和培养方法。1材料与方法1.1样品来源所用黄体均采自附近屠宰场4～6月龄健康长大杂母猪。1.2仪器CO2培养箱;超净工作台;电子天平;电热恒温水槽;台式离心机;倒置显微镜;压力灭菌消毒器。1.3试剂胶原酶,胎牛血清,M199培养干粉,台盼蓝,HEP…     

Isolation and culture of rabbit primordial germ cells

Primordial germ cells (PGCs) are embryonic precursors of the gametes of adult animals and are considered stem cells of the germline. Since their proliferation in vitro correlates well with the schedule of developmental changes in vivo, they might be interesting research tools for genomic imprinting, germ-cell tumors and fertility. Furthermore, once primordial germ cells are separated and placed on a feeder layer with cytokines, they become cultured pluripotent cell lines called embryonic germ (EG) cells. EG cells share several important characteristics with embryonic stem (ES) cells as they can also contribute to the germ line of chimeras. To investigate the characteristics of PGCs and establish rabbit EG (rEG) cells, we cultured rabbit PGCs (rPGCs) in vitro with various combinations of leukemia inhibitory factor (LIF), basic fibroblast growth factor (bFGF) and forskolin on inactivated mouse embryonic fibroblast (MEF) feeder layers. The present study found PGC proliferation in early cultures and induction of rEG-like colonies. These cells expressed pluripotent markers, such as alkaline phosphatase activity, OCT-4, Sox-2 and SSEA-1, in the undifferentiated state; however, the cells did not develop into a teratoma when injected into the kidney capsules of SCID mice, although the restricted differentiation potentials to neural cells were determined via embryoid body formation. From these characteristics and further characterization of the germ stem cell markers Vasa, SCP-1 and SCP-3, we suggested that these were hybrid cells with characteristics somewhere between PGC and EG cells.     

牛乳腺上皮细胞的分离培养

为了对牛乳腺上皮细胞(MECs)进行分离、培养和鉴定,并研究细胞分泌功能,试验通过胶原酶消化法分离得到了牛乳腺上皮细胞,采用传代法对细胞进行纯化,对细胞标志蛋白进行免疫荧光染色鉴定,通过体外诱导和RT-PCR分析鉴定细胞的分泌功能。结果表明:分离到的牛乳腺上皮细胞具有典型乳腺上皮细胞的形态特征,表达广谱角蛋白,经诱导后可分泌β-酪蛋白。     

荷斯坦奶牛乳腺上皮细胞的分离培养

目的：建立荷斯坦奶牛乳腺上皮细胞的分离培养方法。方法：采用组织块种植法培养奶牛乳腺上皮细胞,利用胰蛋白酶差时消化法分离、纯化上皮细胞。结果：成功培养出奶牛乳腺上皮细胞,显微镜下观察,纯化的乳腺上皮细胞呈典型上皮细胞形态,细胞之间排列紧密,呈鹅卵石铺路样,形态均一,多角形的单层聚集。通过荧光免疫细胞染色方法对细胞骨架蛋白-角蛋白18进行鉴定,呈现阳性反应。乳腺上皮细胞增殖旺盛,经25次以上传代后长势仍然良好。结论：采用组织块种植法结合胰酶差时消化法成功获得纯化的奶牛乳腺上皮细胞。     

猪脐静脉血管内皮细胞的分离及体外培养研究

为建立一种操作简单并且能获得大量猪血管内皮细胞的分离培养方法,本研究采集新生健康长白猪脐带,取其脐静脉血管,灌注0.1%的Ⅰ型胶原酶,于37℃水浴消化10 min后收集内皮细胞,培养于含20%胎牛血清的M199培养基中,长满单层后用胰酶消化传代培养。并对培养的细胞形态学、相关抗原和其他特征以及对病毒的易感性进行鉴定。结果表明,Ⅰ型胶原酶消化后可获得大量内皮细胞,细胞培养后的形态学观察显示细胞贴壁生长良好,呈典型的铺路石状排列;第Ⅷ因子相关抗原和细胞摄取乙酰化低密度脂蛋白均呈阳性,内皮细胞比率可高达100%。传3代后的生长曲线显示细胞传代后延迟期小于1 d,对数生长期约3 d,第5 d进入平台期,第7 d开始脱落死亡。病毒感染试验表明所获得的内皮细胞对猪瘟病毒高度易感,病毒生长与常用的PK-15没有区别。上述研究结果表明本研究建立的血管内皮细胞分离培养方法简便有效,为大量制备原代血管内皮细胞提供了可靠的方法。     

Isolation and monolayer culture of bovine oviduct epithelial cells

Oviduct epithelia obtained from 32 cows were cultured. The oviducts were classified into follicular and luteal phases and divided into ampulla and isthmus regions. The epithelial cells were dissociated by enzyme digestion and cultured in plastic dishes with Dulbecco's modified Eagle's medium/Ham's F12 (1:1) containing 10% calf serum. After enzyme treatment, the epithelial suspension showed free ciliated and non-ciliated cells, and cell mass. The non-ciliated cells contained secretory granules in the cytoplasm. The cell mass was composed of ciliated and secretory cells. The cell mass adhered to the dish within 12-24 hr, while the free ciliated cells attached on Day 2 of the culture. The cells grew into confluent monolayers on Day 4. The cell monolayers contained ciliated and non-ciliated cells. The monolayered non-ciliated cells showed a few secretory granules. When the cells were further cultured without subculturing, ciliary activity diminished on Day 5 and was rarely detected on Day 9. When the cells were subcultured on Day 3, ciliary movement was detected on the monolayers for only 2 days. Cell mass that did not adhere to the dish and remained floating in the medium formed ball-like structures on Day 2. Active ciliary beating was observed on the cells that were cultured in the medium supplemented with 10(-5) and 10(-9) M estradiol-17 beta, however, the ciliary activity diminished on Day 5. No difference in the cell growth was observed between the follicular and luteal phases or between the ampulla and isthmus regions.     

牦牛支气管上皮细胞的分离培养与鉴定

为了分离培养牦牛支气管黏膜上皮细胞并传代培养,利用支气管结扎灌注酶冷消化法和支气管组织贴壁法分离培养牦牛支气管黏膜上皮细胞并传代培养,第二代细胞制作细胞爬片通过H.E.染色,扫描电镜和免疫荧光分别对培养的上皮细胞的形态结构进行鉴定,结果两种方法都获得了牦牛支气管黏膜上皮细胞,细胞活性好,纯度高;H.E.染色可见细胞形态呈梭形、圆形、多角形等,细胞核深染,细胞质淡红色;扫描电子显微镜检测中,明显可见细胞的纤毛;免疫荧光鉴定细胞核清晰可见,细胞核呈亮绿色,表明分离培养的细胞为上皮细胞,可进一步为牦牛支气管黏膜上皮细胞粘附模型的建立提供材料和奠定技术基础。     

猪卵巢颗粒细胞分离培养及鉴定

为构建猪卵巢颗粒细胞的体外培养体系,研究毒素的生殖毒性奠定基础,采用机械分离法从1～5 mm的卵泡中提取猪卵巢颗粒细胞,苔盼蓝染色计算细胞存活率,Giemsa染色和结晶紫染色观察细胞形态,免疫细胞化学染色方法检测促卵泡刺激素受体(FSHR)表达来鉴定颗粒细胞,MTT方法测定细胞生长曲线.结果显示分离提取的猪卵巢颗粒细胞存活率为65%左右,细胞纯度＞97%,细胞结构完整,边缘分明,胞核呈卵圆形位于靠近胞质的中央.另外细胞生长曲线表明,细胞从24 h开始进入对数生长期,并于96 h达到最高密度,之后进入平台期.分离培养的颗粒细胞生长状态良好,且细胞纯度＞97%,是理想的适合进行毒素生殖毒理学的细胞培养体系.     

马羊膜上皮干细胞的分离培养和鉴定

通过Tryp LE消化马羊膜收集羊膜上皮细胞,经过传代培养后,用免疫荧光染色、RT-PCR及流式细胞技术(FACS)分析其干细胞特征。免疫荧光染色发现马羊膜上皮细胞表达SSEA-1、SSEA-3、SSEA-4、TRA-1-60和TRA-1-81,只有少量的半贴壁细胞表达Oct4;RTPCR进一步证实马羊膜上皮细胞表达Oct4、Nanog和Sox2,而不表达STAT-3;流式细胞技术分析显示马羊膜上皮细胞也表达CD44、CD90、CD105,但不表达CD45。马羊膜上皮细胞培养三代时,平均倍增时间为(1.25±0.17)d。研究结果表明,通过Tryp LE消化马羊膜上皮可以分离获得马羊膜上皮细胞。