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相似文献
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1.
[目的]筛选真姬菇子实体多糖的最佳提取条件,为真姬菇多糖的开发利用提供依据。[方法]用蒸馏水提取真姬菇子实体多糖,以浸提温度、浸提时间、浸提比和浸提次数为主要因素,采用L9(34)正交试验进行提取工艺的优化。用苯酚-硫酸法测定多糖含量后计算多糖得率。[结果]影响真姬菇子实体多糖提取的主要因素由大到小依次为浸提温度>浸提比>浸提次数>浸提时间。正交试验表明,当浸提温度为90℃,浸提时间为2.0h,浸提比为1∶30,1次浸提时,多糖得率最高,达到4.8%。[结论]通过正交试验及其验证试验确定的真姬菇子实体多搪的最佳提取条件为:浸提时间2.5h,浸提温度90℃,浸提比1∶30,浸提次数2次,在此条件下,真姬菇子实体多糖得率可达5.1%。  相似文献   

2.
真姬菇多糖超声波辅助提取工艺及抗氧化活性研究   总被引:1,自引:0,他引:1  
为探讨真姬菇多糖的提取和抗氧化活性,通过单因素试验设计和正交设计对真姬菇多糖的超声波辅助提取工艺进行研究,采用自由基体外清除试验对真姬菇多糖的体外抗氧化活性进行探讨。结果表明,在超声功率为200 W、料液比1 g∶40 mL、提取温度60℃、提取时间60 min的条件下,真姬菇多糖提取得率可达5.68%;真姬菇粗多糖对DPPH·自由基和ABTS·+自由基均表现出较好的体外清除效果,当浓度为1.0 mg/mL时,其自由基清除能力与浓度为80μmol/L的维生素C相当。  相似文献   

3.
刺五加多糖提取纯化工艺的优化   总被引:1,自引:0,他引:1  
[目的]优化刺五加多糖的提取纯化工艺。[方法]以药用植物刺五加为材料,采用单因素试验和正交试验法对多糖提取、纯化的工艺进行优化。[结果]结果表明,热水浸提的最佳温度为90℃,浸提时间为150min,水料比为18:1,提取次数2次;醇沉温度为-20℃,时间36h,乙醇与浸提液比例为4:1,pH值为7时多糖产率最高。采用树脂动态吸附法筛选不同树脂去除多糖色素和蛋白的效果,结果显示,D941树脂最好。经树脂处理的多糖采用DEAE-Sepharose阴离子交换柱和Sepharose-G200层析柱进一步纯化,得到了纯度较高的As-1和As-2 2个多糖组分。[结论]该研究结果为进一步确定刺五加多糖的生化特性、生理功能奠定基础。  相似文献   

4.
 采用摇瓶培养法对2种真姬菇的发酵工艺进行研究,结果表明:真姬菇Ⅰ、Ⅱ发酵生产菌丝体及胞外多糖的碳源是葡萄糖,氮源是酵母膏;液体发酵培养基是葡萄糖3%、酵母膏 0.4%、vitB1 10mg/100ml、KH2PO4 0.1%、MgSO4 0.1%,pH值为6.0;液体发酵的优化条件是初始pH 6.0~7.0,振荡速度110~130r/min,培养温度25~28℃,装液量150ml/250ml。2种真姬菇菌丝体及胞外多糖产量较高,真姬菇Ⅰ菌丝体干重、胞外多糖产量分别是 3.92、8.83 mg /ml;真姬菇ⅠⅠ菌丝体干重、胞外多糖产量分别是3.25、7.69 mg /ml,即真姬菇Ⅰ摇瓶发酵菌丝体干重、胞外多糖产量高于真姬菇Ⅱ。  相似文献   

5.
刘青娥 《安徽农业科学》2010,38(10):4975-4976,4980
[目的]研究淡紫拟青霉多糖的提取工艺,为进一步开发提供参考依据。[方法]首先通过液体发酵获得淡紫拟青霉菌丝,然后以水为提取剂,在不同的提取条件下提取多糖,并测定其含量。[结果]淡紫拟青霉多糖的最佳提取工艺为:浸提温度70℃、浸提料液比1:30、浸提3次,2h/次。[结论]该提取工艺操作简便、浸提时间短、提取效率高。  相似文献   

6.
鸡腿菇子实体多糖提取工艺的优化   总被引:2,自引:0,他引:2  
[目的]优化鸡腿菇子实体多糖的提取工艺。[方法]以水为浸提液,通过单因素试验研究了浸提温度(60、70、80、90℃)、浸提时间(2、3、4、5h)、料液比(1:10、1:20、1:30、1:4Jo)对鸡腿菇子实体多糖得率的影响,并采用正交试验对提取工艺进行优化。[结果]苹因素试验表明,最佳浸提温度、浸提时间和料液比分别确定为4h、90℃、1:30。正交试验表明,浸提温度对鸡腿菇多糖得率的影响最太,其次是浸提时间,液固比影响最小。通过对提取条件的优化,结合收益、成本等综合因素选出适合本地条件的优化工艺为:浸提温度90℃、浸提时间3h、料液比1:30。验证试验显示,在最佳工艺条件下提取的多糖得率达7.99%。[结论]该优化工艺的回收率高迭98%,说明工艺条件较稳定,适用于工业化生产。  相似文献   

7.
吕玲玲 《安徽农业科学》2009,37(24):11717-11717
[目的]优化浒苔水溶性多糖提取的工艺条件。[方法]以采自于连云港海域的浒苔为试材,用热水浸提法提取浒苔多糖,采用改良蒽酮-硫酸比色法,以葡萄糖为标准品测定浒苔多糖,以浸提温度、浸提时间、固液比和醇沉浓度为因素,通过L9(3^4)正交试验对热水浸提法提取浒苔多糖的工艺进行优化,确定最佳提取工艺参数。[结果]正交试验表明,影响浒苔多糖提取率的因素大小顺序为:浸提温度〉料液比〉醇沉浓度〉浸提时间。热水法提取浒苔多糖的最佳工艺组合为:浸提温度90℃、醇沉浓度70%、料液比1:75、浸提时间4h。[结论]该试验结果可为浒苔多糖的产业化生产提供一定参考。  相似文献   

8.
[目的]探究提取紫花苜蓿中多糖的最佳工艺条件。[方法]采用热水浸提法提取紫花苜蓿中多糖,并通过单因素试验和正交试验研究了浸提时间、浸提温度、浸提固液比、浸提次数对提取紫花苜蓿中多糖得率的影响。[结果]紫花苜蓿中多糖的最佳提取工艺条件为浸提时间1 h、浸提温度95℃、固液比1∶30、浸提3次。在该最佳提取条件下,多糖的得率可达6.1%。[结论]为紫花苜蓿多糖的研究和生产提供了理论依据。  相似文献   

9.
苦瓜多糖提取工艺的研究   总被引:18,自引:0,他引:18  
研究了苦瓜多糖的提取工艺。选取料水比、浸提温度、浸提时间和乙醇沉淀浓度等4项考察因素,采用正交实验对苦瓜中多糖进行了提取条件优化的实验。实验结果表明:料水比1:20,浸提温度100℃,浸提时间1h,乙醇沉淀浓度85%为最佳提取条件;苦瓜多糖粗品的提取率为鲜苦瓜的3.02%,其中多糖含量为28.6%。  相似文献   

10.
[目的]为龙井茶多糖的工业化生产提供理论依据。[方法]以龙井茶为原料,采用水提醇沉法提取其中的多糖,通过单因素试验考察浸提温度、浸提时间、料液比及醇沉浓度对多糖得率的影响,通过正交试验确定茶多糖的最佳提取工艺。[结果]单因素试验结果表明,浸提温度为85℃时多糖得率最大(3.842%);浸提时间为3 h时多糖得率最大(3.227%);料液比为1∶40时多糖得率最大(3.437%);醇沉浓度为90%时多糖得率最大(3.413%)。正交试验结果表明,各因素对多糖得率的影响依次为:浸提温度〉料液比〉醇沉浓度〉浸提时间;龙井茶多糖的最佳提取工艺为:浸提温度85℃,浸提时间2 h,料液比1∶40,醇沉浓度90%,此条件下茶多糖得率可达6.333%。[结论]该研究优化了龙井茶多糖的提取工艺。  相似文献   

11.
对长白山野生斑玉蕈生物学特性的研究结果表明:斑玉蕈菌丝生长利用多糖和有机氮的能力较强,菌丝生长的最适温度为25℃,最适pH值为5,最适培养料含水量为65%。在人工条件下,虽然斑玉蕈容易形成子实体原基,但子实体的发育及孢子的大量弹射所需的环境条件范围较窄、对基物的选择范围较小,这些因素可能是其野生种群稀少的内在原因。而适宜其生存的原始森林面积锐减可能是导致其种群分布面积狭小的外在原因。因此,要加强对野生斑玉蕈资源的生态调查和保护斑玉蕈的的生存环境,从而提高其种群数量。  相似文献   

12.
解春艳  秦静  韩爽  段秀霞 《安徽农业科学》2014,(35):12643-12645
[目的]比较4种子实体多糖对羟自由基、超氧阴离子自由基的清除作用及其总还原力等体外抗氧化活性.[方法]采用热水浸提法分别从香菇子实体、杏鲍菇子实体、蟹味菇子实体和茶树菇子实体中提取多糖,经纯化、干燥后,获得4种食用菌子实体多糖粉.对子实体多糖进行体外抗氧化活性研究,主要测定其总还原力、清除羟自由基及超氧阴离子自由基的能力.[结果]试验表明,4种常用食用菌子实体多糖的体外抗氧化活性均随着多糖浓度的增大而增强;其中,总还原力大小依次为香菇>杏鲍菇>茶树菇>蟹味菇;对羟自由基清除能力的大小依次为:茶树菇>香菇>杏鲍菇>蟹味菇;对超氧阴离子自由基清除能力的大小依次为:茶树菇>杏鲍菇>香菇>蟹味菇.[结论]研究可为对食用菌资源的开发利用提供理论依据.  相似文献   

13.
真姬菇与白玉菇子实体部分成分比较   总被引:1,自引:0,他引:1  
对工厂周年生产的珍稀食用菌真姬菇和白玉菇子实体的营养成分和生物活性成分进行研究,并对两者进行了比较分析。结果显示:真姬菇和白玉菇子实体的粗蛋白、粗纤维、水、灰分、总水解氨基酸、矿质元素和维生素等营养成分含量相近;而活性成分中除总皂苷外,其他成分包括粗多糖、总黄酮、胆碱、SOD比活性和SOD活性等在白玉菇中的含量均比真姬菇高。  相似文献   

14.
韩苗苗  孙一楠  张志阳  高阳  徐多多 《安徽农业科学》2013,41(13):5931-5932,5939
[目的]测定并比较口蘑、杏鲍菇、白玉菇、蟹味菇中多糖的含量。[方法]采用水提醇沉法提取4种食用真菌多糖,通过苯酚-硫酸比色法,以葡萄糖为对照品,测定这4种食用真菌的多糖含量。[结果]葡萄糖标准曲线方程为:y=7.723 5x+0.026 3,相关系数r=0.997 8,线性关系良好,口蘑、杏鲍菇、白玉菇、蟹味菇中多糖含量分别为15.63%、52.38%、33.57%、31.79%。[结论]该法操作简单、准确,具有较好的稳定性。这4种食用真菌都含有丰富的多糖成分,其中杏鲍菇的多糖含量最高,口蘑的多糖含量最低,白玉菇与蟹味菇的多糖含量相当。  相似文献   

15.
[目的]研究海鲜菇中总糖含量提取的影响因素,为海鲜菇中总糖的利用提供依据。[方法]分析了海鲜菇中总糖热水浸提的最佳提取目数、适合提取原料,在此基础上研究了提取温度、提取时间、料液比对海鲜菇中总糖提取效果的影响。[结果]海鲜菇最佳提取目数为100目,残菇为总糖的最佳提取原料。当提取温度为80℃、提取时间为20 min、提取料液比为1∶20(g∶m L)时,残菇中总糖提取率最高为13.63%。[结论]海鲜菇的残菇中总糖含量最高,适合作为进一步糖类物质研究的基础原料。  相似文献   

16.
【目的】寻找对斑玉蕈菌丝生长有促进作用的无机盐、维生素及植物生长调节剂,为斑玉蕈液体菌种的进一步开发与利用提供参考。【方法】以斑玉蕈菌株HM-2为材料,向培养基中加入不同种类及质量浓度的无机盐、维生素和植物生长调节剂,于(23±1) ℃、空气相对湿度70%Hypsizigus marmoreus (Peck) Bigelow;inorganic salts;vitamins;plant hormones 75% 的条件下培养12 d后测定菌落直径,研究上述物质对斑玉蕈菌丝生长的影响。【结果】与不添加任何无机盐的培养基相比,0.5~2.0 g/L的 MgSO4、NaCl和KCl对斑玉蕈菌丝生长均有一定的促进作用,且均以1.5 g/L时促进作用最大,菌落直径分别达到81.04,78.93和80.29 mm;而0.5~2.0 g/L 的CaCl2、KH2PO4和0.01Hypsizigus marmoreus (Peck) Bigelow;inorganic salts;vitamins;plant hormones 0.04 g/L的ZnSO4对斑玉蕈菌丝的生长具有不同程度的抑制作用。与不添加任何维生素的培养基相比,2.0Hypsizigus marmoreus(Peck) Bigelow;inorganic salts;vitamins;plant hormones 10.0 mg/L的烟酸、叶酸、VB1和VB2对斑玉蕈菌丝生长均有一定的促进作用,以2.0 mg/L叶酸的促进作用最大,菌落直径达到67.76 mm;而2.0~10.0 mg/L的VB6对斑玉蕈菌丝生长无明显的促进和抑制作用。与不添加任何植物生长调节剂的培养基相比,2.0~10.0 mg/L的IBA、GA3和NAA对斑玉蕈菌丝生长均有极显著的促进作用,以2.0 mg/L IBA的促进作用最大,菌落直径达到69.33 mm;而2.0~10.0 mg/L的KT与6-BA对斑玉蕈菌丝生长的促进作用相对较弱。【结论】在培养基中添加适量的MgSO4、NaCl、KCl、烟酸、叶酸、VB1、VB2、IBA、GA3和NAA,可促进斑玉蕈菌丝的生长。  相似文献   

17.
[目的]探索了玉蕈原生质体的制备与再生的适宜条件。[方法]采用斜面、平板培养基和液体培养基,研究了玉蕈菌丝体酶解时间(1~5 h)、酶解温度(25℃)和菌龄(4~7 d)以及渗稳剂种类(甘露醇、蔗糖、KCl、MgSO4)对玉蕈原生质体制备与再生的影响,优化了玉蕈原生质体制备与再生的条件。[结果]玉蕈原生质体制备与再生的适宜条件是:渗稳剂为0.6 mol/L MgSO4.7H2O,玉蕈菌丝体酶解时间2h,酶解温度25℃,菌龄5 d。在此条件下,玉蕈原生质体的产量最高,达16.7×106个/ml。[结论]该研究为利用原生质体技术进行玉蕈育种奠定了基础。  相似文献   

18.
为了优化金樱子(Rosa laevigata Michx.)多糖的提取工艺,采用微波辅助提取方法,以去离子水为溶剂提取金樱子中多糖成分,并以多糖成分提取率为考察指标,通过单因素试验和响应面试验来探讨和优化金樱子多糖的提取工艺,得到金樱子多糖的最佳提取工艺条件为微波时间3.5 min,微波功率438W,料液比为1∶27(g∶m L),浸提1次。在此提取工艺条件下,金樱子多糖实际提取率可达52.0%。  相似文献   

19.
为充分开发利用我国丰富的南瓜叶资源,以南瓜干燥成叶为材料,以超声波辅助水提取法提取南瓜叶多糖,研究超声波功率、时间、温度、料液比对南瓜叶多糖得率的影响,以正交试验设计优化提取工艺,以DPPH自由基法、羟基自由基法和FRAP法测定南瓜叶多糖的体外抗氧化活性。结果表明,影响南瓜叶多糖得率各因素的主次顺序是超声波时间>功率>温度>料液比,最优提取工艺参数为时间25 min、温度65℃、料液比1︰30、功率160 W,此工艺条件下南瓜叶多糖得率为12.54 %。南瓜叶多糖对DPPH自由基IC50为3.20 mg·mL-1,对羟基自由基IC50为2.63 mg·mL-1,FRAP值为75.18 μmol TE·g-1。  相似文献   

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