小鼠2-细胞胚胎细管法和OPS法玻璃化冷冻保存技术的研究

本试验在室温 (2 0℃和 2 5℃ )条件下 ,利用不同浓度的玻璃化溶液 (EFS和EDFS) ,对小鼠 2 细胞胚胎进行细管法和OPS法玻璃化冷冻保存。在 2 0℃室温条件下 ,用EFS4 0平衡 1min细管一步法冷冻 ,解冻后囊胚发育率仅为35 .0 % ,和新鲜 2 细胞体外培养的对照组 (6 5 .0 % )的差异极显著 (P <0 .0 1)。当 2 细胞胚胎在 10 %EG +10 %D溶液中预处理 5min ,再移入EDFS中平衡 30s二步法冷冻保存 ,解冻后囊胚发育率达 4 7.8%～ 4 8.8% ;当室温升至2 5℃时 ,二步法冷冻保存后 2 细胞的囊胚发育率达到 5 2 .2 % ,与对照组无显著差异 (P >0 .0 5 )。改用OPS二步法EFS30冷冻组保存后的 2 细胞胚胎的囊胚发育率高达 6 2 .2 % ,为试验中的最佳组。用最佳细管法和OPS法冷冻组解冻后培养至囊胚移植给受体母鼠均获得产仔     

小鼠4-细胞胚胎OPS法冷冻保存技术

在25℃室温和37℃恒温台条件下，利用玻璃化冷冻溶液EFS30、EFS40、EDFS30或EDFS40，对小鼠4-细胞胚胎进行玻璃化冷冻保存．以解冻后培养72h的囊胚发育率为其体外发育能力的考核指标，同时对解冻后培养1～3h的胚胎进行移植以判定其体内发育潜力。开放式拉长塑料细管（OPS）二步法冷冻保存，即胚胎首先移入预处理液（10％EG或10％EG＋10％DMSO）中平衡30s，再移入玻璃化溶液中洗涤后吸入OPS管中，分别经35、30或25s后直接投入液氮中冷冻保存。一步法冷冻保存则无需预处理液处理。结果表明，小鼠胚胎4-细胞一步法和二步法冷冻后囊胚最高发育率分别为87．7％和88.6％，与对照组（93.0％）差异不显著（P〉0．05）。利用最佳冷冻组获得的143枚胚胎移植于12只假妊娠50～60h的受体母鼠，结果有4只妊娠产仔17只，妊娠产仔率为42．5％（17／40），与对照组59．4％（19／32）差并不显著（P〉0.05）。     

EFS20/40和GP25玻璃化法冷冻保存小鼠体外受精2细胞期胚的效果

为了筛选适合用于冷冻保存小鼠体外受精2细胞期胚胎的方法,本研究采用EFS20/40法和GP25法对体外受精小鼠2细胞胚进行冷冻保存,并经解冻后进行体外培养,观察其胚胎发育至扩张囊胚的能力。其结果,虽然两种方法冷冻解冻后的正常胚胎回收率相近,但采用EFS20/40法冷冻解冻的胚胎在体外发育至扩张囊胚比率(84.9%)显著高于GP25法的54.8%(P0.05)。表明EFS20/40法适合用于小鼠体外受精2细胞期胚胎的冷冻保存。     

生物频谱对牛胚胎体外生产效率的影响

本试验利用可调式周林生物频谱发生器对牛卵母细胞体外成熟、体外受精和体外培养过程实施辐射 ,以提高牛胚胎体外生产效率。频谱发生器与培养材料的距离为 5cm ,辐射强度根据辐射温度加以调节。实验结果表明 ,辐射温度控制在 39℃时 ,入孵卵母细胞的卵裂率 ( 63% )与对照组 ( 61 % )无显著差异(P >0 0 5) ,而囊胚发育率 ( 39% )显著高于对照组 ( 1 9% ) (P <0 0 5) ;当辐射温度达到 4 0℃时 ,实验组的卵裂率仅为 1 4 % ,囊胚率为 0。体外受精生产的囊胚用EFS4 0液进行玻璃化冷冻保存 ,解冻后发现 ,整个生产过程经生物频谱辐射胚胎的体外发育率 ( 86% )显著高于对照组 ( 65% )。     

家兔孵化囊胚玻璃化冷冻保存技术的研究

采用两种方法对家兔孵化囊胚作玻璃化冷冻保存在25℃室温下，将孵化囊胚直接移入EFS40溶液中短时间平衡后，直接投入液氮中冷冻保存(简称一步法)；或将胚胎在10％或20％EG溶液中经预处理后，再移入EFS40溶液冷冻保存(简称二步法)。结果表明，一步法冷冻后的胚胎发育率为68％，与对照组(鲜胚)的差异极显著(P<0.01)；二步法冷冻后的胚胎发育率高达93％，与对照组的差异不显著(P>0.     

澳洲波尔山羊胚胎3种冷冻方法对其胚胎移植效果的影响

在25℃室温下,采用细管法(一步法、二步法)和OPS法,以不同浓度的EFS、EDFS为玻璃化冷冻液,对澳洲波尔山羊致密桑椹胚和囊胚进行玻璃化冷冻保存。同时利用1.5mol/LEG为抗冻保护剂对胚胎进行常规法冷冻保存。分别将上述3种方法冷冻解冻后的胚胎移植于同期发情后6~7d的云南黑山羊受体。结果表明,细管法胚胎玻璃化冷冻保存效果均以EFS40组为佳,解冻后胚胎移植产羔率分别为40.54%(15/37;一步法)和51.35%(19/37;二步法)。与新鲜胚胎移植产羔率(52.50%,21/40)和常规法冷冻保存的胚胎移植产羔率(45.16%,14/31)相比无显著性差异(P>0.05)。另外,用EDFS30玻璃化溶液,OPS法冷冻解冻后的胚胎移植产羔率高达51.43%(18/35),为整个玻璃化冷冻试验的最佳值。玻璃化冷冻方法简便、迅速,无论是细管法还是OPS法均获得了比较理想的胚胎移植效果。     

不同发育阶段圭山山羊胚胎常规冷冻保存研究

采用常规冷冻法冷冻保存圭山山羊桑椹胚、囊胚、扩张囊胚期胚胎,解冻后体外发育率分别为41.94%、67.50%、84.09%,桑椹胚与囊胚、扩张囊胚间差异显著(P<0.05),囊胚和扩张囊胚间虽无显著性差异(P>0.05),但扩张囊胚体外发育率高于囊胚.在胚胎的冷冻-解冻过程中,桑椹胚、囊胚、扩张囊胚的透明带受损伤率分别为6.45%、20.00%、31.82%,透明带受损的桑椹胚、囊胚、扩张囊胚体外发育率分别为0%、50.00%、78.57%.初步说明发育程度越高的胚胎,在冷冻-解冻过程中其透明带越易受到损伤,但随发育程度的加深,胚胎生长发育时对透明带的依赖程度也变得越来越弱,表明圭山山羊早期扩张囊胚最适宜进行冷冻保存.     

奶牛体外受精胚胎的不同培养方法对比试验

以屠宰场奶牛卵巢为试验材料,研究体外、体内培养法对体外受精胚胎发育的影响。(1)体外受精胚胎在体外培养体系是否加输卵管上皮细胞单层(颗粒细胞单层)(2×106个/mL)的培养液中培养与临时受体绵羊体内培养对比试验。结果显示:在培养的第8天囊胚发育率无显著差异,体外培养体系囊胚形成主要集中在第8天(受精日为第0天)。体内培养体系囊胚的形成多数在第7天。加体细胞的体外培养体系与体内培养法囊胚生成率无显著差异,但却显著好于不加体细胞的简单体外培养法。(2)进行两种方法生产胚胎的程序冷冻、解冻敏感性试验。结果显示:体内培养法和普通体外法生产的胚胎解冻后存活率(90%、60%)和囊胚孵化率(85.7%、44.4%)存在极显著差异(P<0.01)。     

乙二醇及二甲基亚砜对小鼠卵母细胞冷冻后纺锤体及孤雌激活后发育能力的影响

试验采用EFS30、DFS30和EDFS30冷冻液对小鼠MⅡ期卵母细胞进行玻璃化冷冻,并对冷冻-解冻后卵母细胞存活率、纺锤体形态正常率、孤雌激活胚胎的发育能力进行研究。结果表明:利用EDFS30冷冻-解冻卵母细胞后的存活率(98.3%)显著高于EFS30组(88.2%)和DFS30组(89.5%)(P0.05);DFS30组纺锤体形态正常率(44.9%)显著低于其他各组;而孤雌激活后EFS30、DFS30、EDFS30和对照组之间卵裂率(59.1%、56.3%、59.3%和60.0%)、囊胚率(52.0%、53.7%、61.2%和62.1%)和囊胚细胞数(49、48、50、50)均无显著性差异(P0.05)。综上所述,3种冷冻液冷冻卵母细胞孤雌激活后均可获得较好的体外发育能力,其中EDFS30较适宜小鼠MⅡ期卵母细胞冷冻保存。     

应用1.8mol/L乙二醇+蔗糖冷冻保存奶牛胚胎

以 1 .8 mol/L乙二醇 0 .1 mol/L蔗糖 2 0 ?S-m PBS和 1 .8mol/L乙二醇 0 .0 5mol/L蔗糖 2 0 ?S-m PBS对奶牛胚胎进行了冷冻保存试验 ,并与以 1 .4 mol/L丙三醇 2 0 ?S-m PBS常规冷冻保存奶牛胚胎效果进行了比较。冷冻程序为 -7℃平衡 5min后植冰 ,平衡 1 0 min,然后以 0 .3℃ /min的速率降至 -3 3℃ ,直接浸入液氮中保存。胚胎解冻后的培养结果 ,3组之间的胚胎存活率 ,分别为 80 .0 %( 1 6/2 0 )、90 .5%( 1 9/2 1 )、90 .0 %( 1 8/2 0 ) ,差异不显著 ( P>0 .0 5) ;胚胎的囊胚孵化率 ,1 .8mol/L乙二醇 0 .0 5mol/L蔗糖组达 81 .0 %( 1 7/2 1 ) ,极显著高于 1 .8mol/L乙二醇 0 .1 mol/L蔗糖组的 3 0 .0 %( 6/2 0 )和 1 .4mol/L丙三醇组的 2 5.0 %( 5/2 0 ) ( P<0 .0 1 )。 1 .8mol/L乙二醇 0 .0 5mol/L蔗糖组冷冻的 A级胚胎和 B级胚胎之间的存活率差异不显著 ( P>0 .0 5) ,但是 A级胚胎的囊胚孵化率 ( 1 0 0 %,1 1 /1 1 )显著高于 B级胚胎( 60 %,6/1 0 ) ( P<0 .0 5)。另外 ,胚胎解冻后透明带断裂对其发育率无影响 ;冷冻前胚胎在 1 .8mol/L乙二醇 0 .0 5mol/L蔗糖液中平衡 1 0 min和平衡 2 0 min,冷冻解冻后培养发育率差异不显著 ( P>0 .0 5)。试验结果表明 ,应用 1 .8mol/L乙二醇 0 .0     

受精液和受精时间对牦牛卵泡卵母细胞体外受精的影响

利用屠宰牦牛卵巢，抽取其表面2～5mm的卵泡内卵母细胞，经体外成熟后分别用BO液和改良Tyrode’S液进行体外受精研究。结果表明，BO液受精6h和改良Tyrode’s液分别受精6h和18h，牦牛体外受精卵的卵裂率差异不显著（分别为52．48％、47．67％和50．00%,P〉0．05）。它们的4细胞发育率分别为75．47％、78．05％和64．10％，8细胞发育率分别为56．60％、56．10％和48．72％，使用改良Tyrode’s液受精18h的发育率最低，与其他2组相比，差异极显著（P〈0．01）；而受精时间同为6h时，2种受精液之间发育率的差异不显著（P〉0．05）。     

金黄地鼠体外受精的初步研究

实验用ＴＹＨ、Ｔ６两种培养液做为精子获能培养液和受精培养液进行了金黄地鼠的体外受精。用经获能培养的精子分别与具卵丘和去卵丘的卵子进行受精培养。结果在ＴＹＨ中分别得到了２７．５％和３３．３％的受精率。在Ｔ６中得到了４７．２％和２６．３％的受精率；用未经获能培养的精子分别与具卵丘和不具卵丘卵子进行受精培养，结果在ＴＹＨ中得到了４１．８％和７．１％的受精，在Ｔ６中得到了４８．５％和５７．７％的受精率。实验结果说明：（１）适用于小鼠体外受精的培养液Ｔ６和ＴＹＨ并不适合于金黄地鼠，其主要原因是不能使精子有效获能；（２）卵丘细胞的存在有使受精率提高的趋势；（３）来自不同公鼠的精子的受精能力差异很大，进行体外受精时必须严格挑选公鼠     

Meiosis in bovine oocytes matured in vitro and in vivo

Meiosis in bovine oocytes has; been studied after maturation in vitro or in vivo. Oocytes for in vitro maturation were collected from the ovaries of slaughtered cattle without regard to the phase of the estrous cycle while in vivo maturation was studied in oocytes from gonadotrophin-stimulated heifers at times varying between 6 and 36 h after the beginning of behavioural estrus. Oocytes from slaughtered cattle were classified according to their cumulus complex and ooplasm and were cultured for 6, 12, 18, 24, 36 or 48 h in modified Krebs-Ringer bicarbonate buffer before fixation) for cytogenetic analysis. Oocytes from stimulated heifers were aspirated from follicles or flushed from the oviducts, classified according to cumulus and ooplasm, and fixed within 6 h of collection. Nuclear maturation was more rapid in vitro than in vivo. The largest proportion of oocytes reached maturity (Mil) after 12 to 18 h in culture or 30 to 36 h after the onset of behavioural estrus. Oocytes devoid of cumulus cells or showing signs of vacuolation or degeneration had virtually no capacity for nuclear maturation.     

家兔卵母细胞体外受精研究

以家兔为试验动物,人工采集公兔精液,经体外获能后,与从母兔输卵管获取的成熟卵母细胞进行体外受精和培养。结果表明:①卵龄14～15h卵母细胞体外受精后卵裂率和8～16细胞百分率均显著(P<0.05)高于卵龄16～17h卵母细胞;②L-谷氨酰胺对卵母细胞体外受精及受精卵体外发育具有促进作用,但随着添加量的增加其作用减弱;③培养液DMEM+10%FBS组卵裂率、桑椹胚及囊胚百分率均显著(P<0.05)高于TCM-199+10%FBS组及RM-199组。     

山羊体外受精技术的研究进展

本文主要阐述了山羊体外受精技术,特别是山羊卵母细胞的采集和体外成熟,体外受精以及胚胎培养过程中的一些研究进展,及其山羊体外受精技术的非常广阔的前景。     

影响猪卵母细胞体外受精效率因素的研究

通过比较参与受精的卵母细胞颗粒细胞存在与否、精子上浮时间、精卵共孵育时间、不同受精液等4个方面的因素,研究这些因素对猪卵母细胞体外受精后胚胎发育能力的影响,以求找到最佳的猪卵母细胞体外受精体系。将选择带有不同颗粒细胞的卵丘卵母细胞复合体分为3组：含全部颗粒细胞、2~3层颗粒细胞和裸卵;调整精子在受精液里的上浮时间为0、30、60、120min研究其受精能力;比较3、6、20h精卵共孵育时间对体外受精的影响;结果表明：在本试验体系下,在mTBM受精液中,将精子上浮处理60min,与含2~3层颗粒细胞的卵丘-卵母细胞复合体共孵育6h的IVF体系最为有效,其卵裂率为（77.6±2.3）%,囊胚率为（25.7±2.6）%。     

Failure to Remove Bovine Diarrhea Virus (BVDV) from Bull Semen by Swim up and other Separatory Sperm Techniques Associated with in vitro Fertilization

Semen samples, collected from bulls pesistently infected with bovine viral diarrhea virus (BVDV) and containing BVDV (titer 10⁵ - 10⁶TCID₅₀/ml), were subjected to sperm separation procedures (washing, swim up, Percoll gradient, glass wool filtration, glass beads filtration) that are commonly used prior to in vitro fertilization (IVF) to determine if these procedures would yield spermatozoa free from BVDV. The final sperm pellets from frozen and fresh ejaculates were tested for the presence of BVDV by the immunoperoxidase technique; all tests were positive for BVDV in the range of 10³ - 10⁴TCID₅₀/ml). The study shows that when semen containing BVDV at the level of 10⁵ - 10⁶TCID₅₀/ml) is used for IVF, the virus is not completely removed by any of the simple physical methods commonly used to prepare sperm for IVF. Inhalt: Feldversuch das bovine Diarrhoe Virus (BVDV) aus Bullensperma durch Swim up oder andere Trennverfahren in Verbindung mit der In vitro Fertilisation zu entfernen Spermaproben, die von Bullen gewonnen wurden, welche dauerhaft mit dem Virus der bovinen Virus-Diarrhoe (BVDV) infiziert waren und einen Titer zwischen 10⁵ - 10⁶TCID₅₀/ml enthielten, wurden verschiedenen Trennverfahren unterzogen (Waschen, swim up, Percoll gradient, Glaswollenfiltration, Glaskugelfiltration). Diese Verfahren werden üblicherweise für die Vorbereitung zur In vitro Befruchtung verwendet, und es sollte geprüft werden, ob diese Verfahren auch das Sperma von dem BVD-Virus befreien können. Das endgültige Spermapellet von gefrorenen/aufgetauten und frischen Ejakulaten wurde in Gegenwart des BVD-Virus und mit Hilfe der immunoperoxidase Technik getestet. Alle Testergebnisse waren positiv für BVD-Virus in einem Bereich von 10³ - 10⁴ TCID₅₀/ml. Die Studie zeigt, daß Sperma, wenn es 10⁵-10⁶TCID₅₀/ml des Virus enhält, nicht vollständig mit den für die IVF üblichen, einfachen physikalischen Methoden von dem Virus befeit werden kann.     

牛胚胎体外生产与早期胚胎发育的探讨

试验对牛胚胎体外生产技术中的体外受精液、精卵共育时间、血清和培乔液等影响早期胚胎体外发育的因素进行了研究。以BO（Brackett ＆ Oliphant）和BM（BO：成熟培养液=3：2）作为受精液，受精卵的囊胚发育率分别为26．0％和15．0％；精卵共育时间以9-12h为宜；受精卵在含血清FBS或OCS培养液中的专胚发育率分别为26．4％或29．9％，明显高于在无血清培养基中的囊胚发育率（10．3％）；TCMl99、mBECMaa、mSOFaa3种胚胎培养液均能支持受精卵的体外发育，在其中培养受精卵囊胚发育率分别为18．O％、30．7％和29．2％。试验结果表明：精卵于BM受精液中共育9～12h后，将假定受精卵置于添加5％OCS的mBECMaa或mSOFaa培养液中培养，能显著提高体外生产胚胎的囊胚发育率。     

Inducing ovulation with human chorionic gonadotrophin improves the pregnancy rate in lactating dairy cows receiving an in vitro-produced embryo

While the global use of in vitro-produced embryos in dairy cattle is on the rise, several technical aspects of embryo transfer procedures have not yet been optimized. This study compares the effects of inducing ovulation using human chorionic gonadotropin (hCG) versus gonadotropin-releasing hormone (GnRH) at the end of a 5-day progesterone(P4)-based protocol for oestrous synchronization on the pregnancy rate of lactating dairy cow recipients of in vitro-produced embryos. Fresh embryos were transferred on Day-seven post-oestrus to ovulating cows receiving GnRH or hCG (groups GnRH and hCG, n = 60 each). Pregnancy was diagnosed by ultrasound on Day 28 post-oestrus. Forty-nine cows became pregnant: 16 in GnRH (26.7%) and 33 in hCG (55%). Taking GnRH-treated cows as reference, the odds ratio for pregnancy of hCG-treated cows was 3.3 (p = .002). In conclusion, hCG treatment given at the end of a 5-day P4-based protocol for oestrous synchronization improved the pregnancy rate in lactating dairy cows receiving an in vitro-produced embryo.