信阳毛尖茶机制的关键技术

信阳毛尖茶是我国传统名茶,近十几年来逐渐改用机械生产。本研究对信阳毛尖茶机制过程中鲜叶摊放、杀青、揉捻、解块分筛、理条整形、烘干等工序应掌握的关键技术进行了总结,以供信阳毛尖茶机械化加工参考。     

毛尖茶常见品质缺点及其成因

本文详细论述了毛尖茶常见品质缺点的类型、表现特征及其产生原因,对准确鉴别毛尖茶品质,科学地指导茶叶生产具有重要意义。     

信阳毛尖常见缺点及其成因

<正> 信阳毛尖茶(以下简称毛尖)的生产工艺精湛,品质独特,具有色泽翠绿、白毫显露,条索细紧圆直光的秀丽外形,和汤清叶绿,香浓味鲜的高雅内质。但是,毛尖品质的形成较复杂,影响因素甚多,如茶树栽培与管理、鲜叶采摘、制茶技术和炒茶工具等,其中任何一个生产环节的技术不当,都会造成程度不同的品质缺限。为了有效地指     

宁武县芦芽山毛尖茶生长发育适宜气候资源分析及发展建议

本文根据宁武县芦芽山毛尖茶生产的实际情况,利用宁武县2008—2017年近10年的温度、日照时数以及降水量气候观测资料,分析了宁武县芦芽山发展毛尖茶的适宜气候资源,并提出了宁武县芦芽山毛尖茶生产发展建议,以期为不断提升宁武县芦芽山毛尖茶的产量与品质提供参考。     

用“桂绿1号”茶树品种研制桂林毛尖茶的试验研究

[目的]发挥"桂绿1号"的品种优势,用自主品牌良种开发自主品牌特色茶产品。[方法]试验通过应用"桂绿1号"鲜叶进行研制桂林毛尖茶,分析该品种加工绿茶的特点,优化其加工工艺,研发出品质优良、质量稳定且符合桂林毛尖茶相关质量要求的茶叶产品。[结果]"桂绿1号"鲜叶制作桂林毛尖茶的加工技术为:茶青→萎凋(5.5~7.0 h)→杀青(嫩杀)→揉捻→毛火(90~95℃5 min)→足火(90~105℃8~15 min),按照这一加工工序制作出的桂林毛尖茶条索紧细,色泽翠绿,香气清高持久,滋味醇和鲜爽,汤色碧绿清澈,品质优良。[结论]研究可为实现品种和产品双赢提供技术支撑,同时,对提升广西桂林毛尖茶产品的市场竞争力,促进该区茶产业的特色茶产品发展和品牌建设具有重要且积极的意义。     

复揉技术对都匀毛尖茶品质的影响

本文中,笔者根据自身的研究成果,为了进一步探究贵州省都匀市毛尖茶的品质受复揉技术的影响情况,对都匀毛尖茶的复揉技术生产过程进行了影响试验。实验结果表明:复揉技术处理的毛尖茶较弯曲、毫较显、样条较紧结、色泽较绿润,在形状、匀整度、外星品质上虽然与不复揉的茶样差距不大,但是经过复揉技术处理的茶品内质会有较优的表现。     

复揉技术对都匀毛尖茶品质的影响

本文中,笔者根据自身的研究成果,为了进一步探究贵州省都匀市毛尖茶的品质受复揉技术的影响情况,对都匀毛尖茶的复揉技术生产过程进行了影响试验。实验结果表明:复揉技术处理的毛尖茶较弯曲、毫较显、样条较紧结、色泽较绿润,在形状、匀整度、外星品质上虽然与不复揉的茶样差距不大,但是经过复揉技术处理的茶品内质会有较优的表现。     

都匀毛尖茶布丁的加工工艺研究

通过开展都匀毛尖茶布丁加工工艺的试验,探究都匀毛尖茶用量、吉利丁粉用量、白砂糖用量和煮制温度对布丁感官品质的影响,并对都匀毛尖茶布丁的配方进行优化.结果表明:都匀毛尖茶布丁的最佳配方为牛奶200mL、都匀毛尖茶用量5g、吉利丁粉4g、白砂糖10g、煮制温度70℃、煮制时间10min,所得都匀毛尖茶布丁蛋白质含量、可溶性固形物含量分别为5.1g/100g和20.8g/100g,菌落总数为10CFU/g,大肠菌群为0CFU/g.产品各项指标符合国家标准,色泽纯正,口感细腻嫩滑,具有都匀毛尖茶特有香味.     

信阳毛尖茶机械加工工艺技术

信阳毛尖茶叶是我国著名的高级绿茶。随着人民物质、文化生活水平的不断提高,对其需求量也越来越大。近几年,信阳毛尖茶的产区和生产规模逐渐扩大,产量有了较大的提高,但传统的信阳毛尖茶制作工艺均为手工操作,存在着制茶劳动强度大,生产效率低,成本高;劳动力日趋...     

复揉技术对都匀毛尖茶品质的影响

为探究复揉技术对都匀毛尖茶品质的影响,以指导都匀毛尖茶的生产,进行了复揉技术对都匀毛尖荼品质的影响试验.结果表明:复揉处理茶样条索较紧结,较弯曲,色泽较绿润,毫较显,形状得分91,色泽得分96,匀整度得分93,外形品质平均得分93.3,与对照(不复揉)处理茶叶差异不大,但复揉处理茶叶的内质优于对照.     

山茱萸果实的化学成分

山茱萸的鲜果经化学分析测定,含有还原糖、有机酸、酚类、鞣质、多糖、甙类、皂甙、蛋白质、氨基酸、黄酮体,蒽醌、甾体三萜类、香豆素、萜类内酯化合物、维生素C和维生素A等多种有机化学物质,具有Ca、K、Mg、Na、Si、P、Ba、Al、B、Sr、Mn、Fe、Ti、Zn、Cu、Ni、V、Cr、Be、Zr、Pb、Mo和Ag等23种微量元素。分析表明,山茱萸鲜果皮肉和肉罐头中含有人体必需的8种氨基酸。山茱萸成熟鲜果在除去种子,加工成罐头食品时,游离氨基酸损失严重。     

菠萝不同生长部位中无机元素含量及分布

[目的]测定菠萝皮渣、果肉、顶芽中26种无机元素的含量及分布。[方法]以菠萝为试材采用硝酸、双氧水混合消解体系对菠萝皮渣、果肉、顶芽进行前处理,再用微波消解-电感耦合等离子体质谱(ICP-MS)法测定其中K、Na、Ca、Mg、Fe、Mn、Zn、P、Al、Ti、Sr、Pb、Cd、Cu、Cr、Hg、As、Ni、Sn、Sb、Ba、B、V、Co、Ga、Se 26种无机元素含量。[结果]菠萝各部位含有丰富的人体必需大量元素Ca、P、K、Na、Mg,微量元素Fe、Cu、Zn、Co、Mn、Ni、V、Sn、Sr、B、Se等,同时食品中常监测的有害元素Pb、Cd、Cr、As、Hg等含量均较低。[结论]菠萝及其加工副产物不断被开发成各种食品、药品等,监控其无机元素成分含量,可为保证产品质量安全和优化生产工艺提供基础数据。     

北京地区有毒植物调查

文章对北京地区有毒植物种类、别名、含毒部位、中毒症状做了调查和研究。据我们不完全统计,北京地区共有有毒植物61种,其中泽泻科、石蒜科、夹竹桃科、白花菜科、石竹科、旋花科、葫芦科、柏科、麻黄科、杜鹃花科、银杏科、藤黄科、胡桃科、水麦冬科、防己科、桑科、紫茉莉科、酢浆草科、罂粟科、商陆科、蔷薇科、芸香科、杨柳科、玄参科、马鞭草科各1种,漆树科、五加科、菊科、大戟科、百合科各2种,天南星科、萝藦科各3种,毛茛科5种,茄科7种,豆科8种。     

吉林省农林天敌昆虫区系及多样性的研究（Ⅰ）

文中论述了吉林省农林天敌昆虫9目、36科、即螳螂科、螽斯科、箭蜓科、蜓科、大蜻科、Song科、蠼螋科、球螋科、蝽科、长蝽科、花蝽科、猎蝽科、姬蝽科、盲蝽科、虎甲科、步甲科、牙甲科、阎甲科、葬甲科、隐翅虫科、谷盗科、露尾甲科、瓢虫科、芫青科、郭公虫科、红萤科、花萤科、褐蛉科、螳蛉科、翼蛉科、草蛉科、蝶角蛉科、蚁蛉科、盲蛇蛉科、蝎蛉科，共229种。     

ICP-OES测定乌苏柳花茶中无机元素含量

[目的]测定乌苏柳花茶中无机元素含量。[方法]采用电感耦合等离子体发射光谱仪(ICP-OES)测定新疆乌苏特产柳花茶中Al、B、Ba、Ca、Cu、Fe、K、Mg、Mn、Na、Ni、P、Si、Sr、Zn 15种无机元素含量。[结果]柳花茶中15种无机元素含量由高到低依次为K、Ca、P、Mg、Sr、Fe、Na、Zn、Al、Mn、B、Si、Cu、Ni、Ba,其中K、Ca、Mg、P含量较高,Na含量较低,具有潜在的维持人体正常血压、血脂的作用。[结论]该方法稳定性、精密度、准确性较高,可满足测定需要。     

携带四环素耐药基因的鸭源大肠杆菌质粒不相容群分析

目的:用PCR方法测定22株携带四环素耐药基因鸭大肠杆菌所含质粒的不相容群。方法:设计18对引物,分为5个多重PCR体系和3个单一PCR体系,用来检测识别FIA、FIB、FIC、HI1、HI2、I1、L/M、N、P、W、T、A/C、K、B/O、X、Y、F和FⅡ复制子。结果:22株鸭大肠杆菌中,分别有7、4、9、2、6、2、3、7株和19株属于IncI1、IncN、IncFIB、IncY、IncP、IncFIC、IncA/C、In-cK和IncFⅡ。试验菌株所含质粒大部分属于IncFⅡ,占86.4%,属于1、2、3、4、5个不相容群组合的分别为13.6%、31.8%、31.8%、18.2%和4.5%。     

吉林省农林天敌昆虫区系及多样性的研究(Ⅱ)

论述了吉林省农林天敌昆虫膜翅目的 2 4科 ,即小蜂科、蚁蜂科、巨胸小蜂科、广肩小蜂科、金小蜂科、姬小蜂科、跳小蜂科、平腹小蜂科、赤眼蜂科、柄腹金小蜂科、蚜小蜂科、长尾小蜂科、姬蜂科、茧蜂科、蚜茧蜂科、黑卵蜂科、青蜂科、土蜂科、蜾赢科、马蜂科、胡蜂科、螯蜂科、泥蜂科、蚁科 ,共 35 2种     

大豆细菌性斑点病菌生理小种的研究

采用室内幼菌接种鉴定的方法，确定了大豆品种十胜长叶、长农4号、丹豆4号、早丰3号、吉林28号和亚特1号为大豆细菌性斑点病菌生理小种的鉴别寄主，并由这6个鉴别寄主将我国大豆细菌性斑点病菌确定为14个生理小种，依次命名为C1、C2、C3、C4、C5、C6、C7、C8、C9、C10、C11、C12、C13和C14。     

In Process Citation

M. J. S. Belton, (*) J. W. Head III, A. P. Ingersoll, R. Greeley, A. S. McEwen, K. P. Klaasen, D. Senske, R. Pappalardo, G. Collins, A. R. Vasavada, R. Sullivan, D. Simonelli, P. Geissler, M. H. Carr, M. E. Davies, J. Veverka, P. J. Gierasch, D. Banfield, M. Bell, C. R. Chapman, C. Anger, R. Greenberg, G. Neukum, C. B. Pilcher, R. F. Beebe, J. A. Burns, F. Fanale, W. Ip, T. V. Johnson, D. Morrison, J. Moore, G. S. Orton, P. Thomas, R. A. West The first images of Jupiter, Io, Europa, and Ganymede from the Galileo spacecraft reveal new information about Jupiter's Great Red Spot (GRS) and the surfaces of the Galilean satellites. Features similar to clusters of thunderstorms were found in the GRS. Nearby wave structures suggest that the GRS may be a shallow atmospheric feature. Changes in surface color and plume distribution indicate differences in resurfacing processes near hot spots on Io. Patchy emissions were seen while Io was in eclipse by Jupiter. The outer margins of prominent linear markings (triple bands) on Europa are diffuse, suggesting that material has been vented from fractures. Numerous small circular craters indicate localized areas of relatively old surface. Pervasive brittle deformation of an ice layer appears to have formed grooves on Ganymede. Dark terrain unexpectedly shows distinctive albedo variations to the limit of resolution. M. J. S. Belton, National Optical Astronomy Observatories, 950 North Cherry Ave, Tucson, AZ 85719, USA. J. W. Head III, R. Pappalardo, G. Collins, Department of Geological Science, Brown University, Providence, RI 02912, USA. A. P. Ingersoll and A. R. Vasavada, Department of Geology and Planetary Sciences, California Institute of Technology, Pasadena, CA 91125, USA. R. Greeley and R. Sullivan, Department of Geology, Arizona State University, Tempe, AZ 85287-1414, USA. A. S. McEwen, P. Geissler, R. Greenberg, Lunar and Planetary Laboratory, University of Arizona, Tucson, AZ 87721, USA. K. P. Klaasen, D. Senske, T. V. Johnson, G. S. Orton, R. A. West, Jet Propulsion Laboratory, California Institute of Technology, Pasadena, CA 91109, USA. D. Simonelli, J. Veverka, P. J. Gierasch, D. Banfield, M. Bell, J. A. Burns, P. Thomas, Department of Astronomy, Cornell University, Ithaca, NY 14853, USA. M. H. Carr, U.S. Geological Survey, Menlo Park, CA 94025, USA. M. E. Davies, RAND, Santa Monica, CA 90406, USA. C. R. Chapman, Southwest Research Institute, Boulder, CO 80302, USA. C. Anger, ITTRES Ltd, Calgary, Alberta TIY 5Z6, Canada. G. Neukum, Institute for Planetary Exploration, Deutsche Forschunganstalt für Luft und Raumfahrt, Berlin, Germany. C. B. Pilcher, National Aeronautical and Space Administration, Washington, DC 20546, USA. R. F. Beebe, Department of Astronomy, New Mexico State University, Las Cruces, NM 88003, USA. F. Fanale, Institute for Geophysics, University of Hawaii, Honolulu, HI 96822, USA. W. Ip, Max Planck Institute für Aeronomie, Lindau, Germany. D. Morrison and J. Moore, NASA Ames Research Center, Moffett Field, CA 94035, USA. (*) To whom correspondence should be addressed. E-mail: belton@noao.edu.