白刺花胚性愈伤组织诱导及体细胞胚发生

【目的】探讨不同植物生长调节剂对白刺花胚性愈伤组织诱导的作用,以及培养基中氮源和无机盐浓度对白刺花体细胞胚发生和植株再生的影响,以期建立白刺花体细胞胚发生、发育及调控技术体系,为白刺花种苗快速繁殖体系建立及遗传转化研究提供参考。【方法】以白刺花叶片为外植体,研究生长调节剂2,4-D(1.0、2.0、3.0、4.0 mg ·L -1 )、NAA(0、0.5、0.8、1.0 mg ·L -1 )、6-BA(0.2、0.5、1.0、2.0 mg ·L -1 )和TDZ(0、0.2、0.5、1.0 mg ·L -1 )组合对胚性愈伤组织诱导,及NAA(0、0.2、0.5 mg ·L -1 )、6-BA(0、0.5、1.0 mg ·L -1 )和TDZ(0、0.2、0.5 mg ·L -1 )组合对体细胞胚发生的调控作用,筛选最优生长调节剂组合;并研究培养基中KNO 3和NH 4NO 3比例对体细胞胚发生的作用,及MS培养基中无机盐浓度(1/5MS 、1/4MS、1/3MS、1/2MS)对体细胞胚萌发的影响,筛选最佳的体细胞胚发育及成熟萌发条件。【结果】白刺花叶片外植体胚性愈伤组织诱导适宜培养基为MS + 2,4-D 3.0 mg ·L -1 + NAA 0.5 mg ·L -1 + 6-BA 0.2 mg ·L -1 + TDZ 1.0 mg ·L -1 +蔗糖40 g ·L -1 +琼脂7.0 g ·L -1 ,诱导率为42.0%。采用MS基本培养基时,最佳的体细胞胚发生培养基为MS + NAA 0.5 mg ·L -1 + 6-BA 1.0 mg ·L -1 + TDZ 0.5 mg ·L -1 +蔗糖40 g ·L -1 +谷氨酰胺100 mg ·L -1 +琼脂7.0 g ·L -1 ,体细胞胚发生率为78.46%,总胚数为对照的3.6倍;MS培养基中,KNO 3浓度提高1倍、NH 4NO 3降至1/2时,体细胞胚发生率可提高至91.33%,总胚数为采用MS基本培养基时的1.4倍;1/3MS培养基有利于体细胞胚的萌发,萌发率为82.75%,幼苗长势良好,单株平均鲜质量为76 mg,幼苗驯化移栽1个月后成活率达90%以上。【结论】白刺花叶片接种于添加2,4-D、NAA、6-BA和TDZ不同组合的诱导培养基上,可脱分化形成愈伤组织或胚性愈伤组织,2,4-D浓度对愈伤组织形态和质地有较大影响。TDZ有利于体细胞胚的形成,适宜浓度的生长素与细胞分裂素组合及硝态氮和铵态氮的比例对体细胞胚的形成和发育具有调控作用,降低MS无机盐浓度可提高体细胞胚萌发率,本试验体系的再生植株移栽成活率达90%以上。     

TDZ在天师栗愈伤组织诱导中的应用

在离体条件下,利用含有TDZ和2,4-D的培养基通过暗培养和光照培养进行了天师栗愈伤组织诱导条件的研究,结果表明:①在含有TDZ和2,4-D培养基上,取用天师栗的幼嫩叶片比叶柄诱导愈伤组织的褐变率低12.1%,②利用天师栗幼嫩叶片进行诱导愈伤组织的适宜培养基为MS 2,4-D 0.5~1.5 mg/L TDZ 0.05~1.0 mg/L。     

红松成熟合子胚愈伤组织诱导的研究

以红松(Pinus koraiensis Sieb.et Zucc.)成熟合子胚为基准试验材料,对红松愈伤组织诱导的影响因素进行了初步研究。结果表明,不同的培养基对有效愈伤组织的诱导效果不同,初始诱导应选用LM培养基使外植体完全脱分化,反复继代后可以产生有效愈伤组织,供试的其他培养基继代后则极少产生有效愈伤组织;不同的激素组合和浓度配比对有效愈伤组织的诱导率影响不同,2,4-D是愈伤组织启动的不可或缺的植物生长调节剂,其作用远远大于NAA。在LM+2mg.L-1 2,4-D+0.5mg.L-16-BA的诱导培养基中加入0.5mg.L-1 KT或0.5mg.L-1 TDZ,可明显提高有效愈伤组织的诱导率(可达75.7%)。     

枣树叶片愈伤组织培养与再生植株的研究

为探讨枣树组织培养育种及快繁技术,以木枣、骏枣和狗头枣组培苗叶片为外植体,通过诱导愈伤组织形成再分化出不定芽,从而建立高效的再生系统。试验结果表明,不同基因型或同一基因型的不同部位的材料其培养效果间有差异;试管枣苗茎尖倒数1～3片叶是合适的外植体材料;6-BA与2,4-D在枣树叶片愈伤组织诱导中有极显著的交互作用,二者的配比浓度水平影响愈伤组织的诱导增殖和质量;枣树叶片愈伤组织诱导和继代增殖培养适宜的培养基是3/4MS+6-BA0.2 mg.L-1+2,4-D 2.0 mg.L-1+琼脂0.55%+蔗糖3%。6-BAI、BA与TDZ在枣树愈伤组织分化培养中有显著的协同作用,不定芽诱导的适宜培养基是CYI+6-BA 1.0 mg.L-1+IBA 0.2 mg.L-1+TDZ 0.015 mg.L-1。     

刺槐未成熟合子胚的体细胞胚胎发生和植株再生

以刺槐不同胚龄的未成熟合子胚为外植体,采用混合正交试验设计,研究幼胚胚龄和不同外源激素种类及质量浓度对刺槐胚性愈伤组织的诱导和体细胞胚分化、萌发的影响.结果表明:开花后8周(55天左右)是胚性愈伤组织和体胚诱导的最佳外植体取材时期;MS+2,4-D 5.0 mg·L-1 +BA0.5 mg·L-1是诱导胚性愈伤组织的最佳培养基,出愈率最高为95.42％±0.02％;MS +NAA0.5 mg·L-1 +BA0.5 mg·L-1+谷氨酰胺250 mg·L-1+水解酪蛋白500 mg·L-1是体细胞胚诱导和分化的最佳培养基,直接体细胞胚发生率最高为92.40％±0.12％,通过愈伤组织诱导体细胞胚发生的频率最高为90.73％ ±0.49％.一旦形成球形胚,将培养物转接到不含任何生长调节剂的MS培养基上,体细胞胚经成熟萌发可进一步形成完整小植株.     

Establishment of cell suspension line of Populus tomentosa Carr

Leaves of fine Populus tomentosa genotype TC152 were used as explants to establish cell suspension lines. The effects of plant growth regulators on callus induction and establishment of cell suspension lines were studied. The callus induction rate was the highest on a MS solid medium supplemented with 1.0 mg·L-1 2,4-D. A cell suspension line could be obtained by inoculating calli which were not subcultured into a MS liquid medium supplemented with 1.5 mg·L-1 2,4-D. The best subculture medium was MS + 0.8 mg...     

不同激素配比对库拉索芦荟愈伤组织诱导的影响

以MS为基本培养基，添加不同浓度的2，4-D、NAA、KT或其组合，研究库拉索芦荟愈伤组织的诱导及生长情况。结果表明，两种生长素均可诱导出愈伤组织，但较高浓度的2，4-D易导致褐化，而高浓度的NAA诱导出的愈伤组织含水量较高，以两种生长素配合使用再辅以低浓度的KT效果较好，其中15mg/L的KT 4mg/L的2，4-D 0．1mg/L的KT的组合，愈伤组织诱导率达到90％，且愈伤组织生长较旺盛。     

刺五加体细胞胚状体发生及成苗的研究

以刺五加试管苗叶片为试材,将叶片接种于含有不同种类和浓度激素的培养基上进行培养,研究不同激素对刺五加胚性愈伤组织诱导、胚状体发生及生根的影响。结果表明：诱导叶片胚性愈伤组织发生的最适培养基为MS＋6-BA 1.5 mg.L-1＋2,4-D 1.0 mg.L-1,胚状体生长发育的最适培养基为MS＋6-BA1.0 mg.L-1＋IBA0.5 mg.L-1,生根的最适培养基为1/2MS＋NAA0.4 mg.L-1。     

Shoot proliferation and callus regeneration from nodular buds of Drepanostachyum luodianense

This research reports on an efficient shoot proliferation and callus regeneration system for bamboo.Young, semi-lignified branches with one lateral bud from Drepanostachyum luodianense(Yi et R. S. Wang) Keng f.were used as explants. Disinfection with 0.1% HgCl_2 for 8 min was the optimum treatment and the best medium for bud initiation was Murashige and Skoog(MS) medium containing 3.0 mg L~(-1)6-benzyladenine(BA). Multiple shoots were induced from nodal shoot segments on MS medium containing 5.0 mg L~(-1) BA, 0.5 mg L~(-1) kinetin(Kin), and 1.0 mg L~(-1) naphthaleneacetic acid(NAA). The highest frequency of callus formation(65.6%) was on MS medium containing 4.0 mg L~(-1)2,4-dichlorophenoxyacetic acid(2, 4-D), 0.5 mg L~(-1) NAA, and 0.1 mg L~(-1) thidiazuron(TDZ). The optimum medium for callus proliferation was MS medium with 4 mg L~(-1)2,4-D, 0.5 mg L~(-1) TDZ and 0.5 mg L~(-1) NAA, and the optimum hormone combination was 4 mg L~(-1) BA ? 0.5 mg L~(-1) NAA for callus redifferentiation(up to 85.6%). A 100% rooting was achieved on MS medium supplemented with 2.0 mg L~(-1) NAA and 0.5 mg L~(-1)3-indole butyric acid(IBA). Rooted plantlets were acclimatized in a greenhouse in humus soil ? perlite(1:1) substrate. These micropropagated callus induction and regeneration systems for bamboo will be useful for genetic engineering and multiplication.     

巨桉无性系EG5叶片高效再生体系的建立

以巨桉栽培无性系EG5无菌苗的叶片为外植体进行愈伤组织诱导与植株再生研究。结果表明:愈伤组织高效诱导和不定芽分化的最适培养基为改良MS+0.12 mg·L-1TDZ+0.25 mg·L-1NAA;硝酸铵对EG5叶片愈伤组织生长及植株分化的影响较大,最适宜质量浓度为0.412 5 g·L-1;最佳伸长培养基配方为改良MS+0.3 mg·L-16BA+0.05 mg·L-1IBA+0.3 mg·L-1IAA;暗培养10 d能促进不定芽分化,延缓愈伤组织老化和褐变速度。生根培养基为改良MS+0.4 mg·L-1NAA时生根率最高,为65.47%,移植成活率为90%以上。     

人参叶片愈伤组织诱导数学模型分析

取人参叶片作为外植体诱导愈伤组织,利用二元二次通用旋转组合设计数学模型筛选植物激素浓度组合,结果表明:2,4-D与KT对人参叶片外植体诱导愈伤组织方程为:Y=0.653 30+0.229 63X1+0.140 85X2-0.130 83X12-0.197 48X22+0.100 00X1X2;叶片诱导愈伤组织最佳培养基为MS附加7 mg·L-12,4-D和0.9 mg·L-1KT,诱导率最高可达80%以上。     

阔叶十大功劳叶柄愈伤组织诱导及试管苗培养的研究

以大连市引种的阔叶十大功劳嫩叶柄为外植体,采用组织培养方法研究其快繁技术,结果表明:愈伤组织诱导的初代和继代理想培养基是MS+KT 0.6 mg·L-1+2,4-D 2.5 mg·L-1;不定芽分化的理想培养基是1/4MS+ZT0.4 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1;不定芽生根的理想培养基是1/3MS+IAA0.5mg·L-1;试管苗生根继代培养形成的试管苗生长旺盛,生根率为94.6%,生根数为7.2条,每代的繁殖系数为2.8。试管苗移栽平均成活率为89.8%,生长旺盛,在大连地区可正常越冬,翌年即可开花。     

不同激素配比对油茶花药愈伤组织形成的影响

为了加快油茶品种改良,提高油茶花药愈伤组织的诱导效率,在低温预处理（4℃）的基础上,以MS为基本培养基,研究了不同浓度的2,4-D、NAA及2,4-D、6-BA配比对普通油茶花药愈伤组织诱导效率的影响。结果表明：2,4-D、NAA诱导普通油茶愈伤组织的较优组合为2,4-D0．6mg／L,NAA0．05或0．5mg／L,愈伤组织诱导率分别达到35．56％和24．65％,在油茶花药愈伤组织诱导过程中。2,4-D有利于愈伤组织的形成,是最重要的因素;2,4-D、6-BA的混合使用更有利于愈伤组织的发生,并且两种激素适当的配比是提高愈伤组织诱导率的重要因素,0．5mg／L的2,4-D与0．2mg／L6-BA组合是实验得出的较优水平,愈伤组织诱导率达到42．74％。     

In vitro flowering of green and albino Dendrocalamus latiflorus

To propagate Dendrocalamus latiflorus, we used in vivo inflorescences to produce calli on Murashige and Skoog basal (MS) medium supplemented with 3 mg/l 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), 2 mg/l kinetin, 250 mg/l polyvinyl pyrrolidone (PVP), and 1% coconut milk. Multiple shoots were generated on MS medium supplemented with 0.1 mg/l thidiazuron (TDZ). The green plantlets were successfully transferred to soil. Multiple albino shoots also regenerated and were able to proliferate on medium containing cytokinins, especially TDZ. Albino multiple shoots rooted in medium containing α-naphthaleneacetic acid (NAA), and callus formation was observed in the presence of 2,4-D and picloram. Green and albino regenerates flowered after 8 months of subculture. The flowering ratio increased to 44% after three treatments in medium containing 1 mg/l TDZ. Morphological observations revealed that the in vitro green and albino flower organs were normal. However, pollen derived from the in vitro flowers of both the green and albino plants were sterile.     

巨龙竹种子、小穗外植体愈伤组织的诱导培养

通过对巨龙竹种子和小穗两种外植体愈伤组织初导培养基和增生培养基的筛选及防褐化处理试验,结果表明,巨龙竹种子和小穗初导培养基最优组合为3/4 MS 3 mg/L 2,4-D 0.3 mg/L KT 25 g/L,MS 3 mg/L2,4-D 0.3 mg/L KT 25 g/L;其种子和小穗的增生培养基最优组合分别为MS (3~5 mg/L)2,4-D 0.3mg/L KT、MS 3 mg/L 2,4-D 0.3 mg/L KT;在特定培养条件下,对褐变有一定程度的控制。     

香蕉薄切片愈伤组织再生体系的建立研究

以巴西香蕉品种的薄切片为外植体高频地诱导出愈伤组织,并诱导出了不定芽,获得了再生植株。在实验过程中,利用正交实验中筛选出愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+2,4-D 4.0 mg.L-1+KT 1.0 mg.L-1+NAA 1.0 mg.L-1+活性炭200 mg.L-1,诱导率可达100%,愈伤组织增殖的最佳培养基是MS+2,4-D 2.0 mg.L-1+6-BA 0.5 mg.L-1+NAA 0.5 mg.L-1+活性炭100 mg.L-1,继代3-4次的愈伤组织在6-BA浓度为5.0 mg.L-1的分化培养基上能分化出不定芽,继代10次之后愈伤组织在继代培养基上开始出现褐化现象,愈伤组织增殖明显受到抑制,褐化的愈伤组织逐渐死亡。     

广藿香愈伤组织的诱导和增殖

以广藿香的幼叶、茎段为外植体,接种于附加不同浓度的2,4-D、NAA、6-BA、KT、TDZ及其组合的MS固体培养基上进行愈伤组织的诱导,结果表明:单独使用5种激素在一定范围内均能诱导出愈伤组织;最佳组合培养基为MS+6-BA 1.0 mg.L-1+2,4-D 0.1 mg.L-1。进一步研究发现,茎段和叶片诱导的愈伤组织的生长曲线都呈“S”型,且生长周期均为18 d。     

牡丹愈伤组织诱导和继代培养体系的建立

以牡丹为材料,研究了不同外植体、激素对愈伤组织诱导和继代增殖的影响,结果表明:①牡丹子叶、胚轴是诱导愈伤组织的最佳外植体;②牡丹子叶愈伤组织诱导的最佳培养基为:MS+Ca2+;③牡丹愈伤组织增殖的最佳培养基为:MS+2,4-D 0.5 mg.L-1+NAA 1.5 mg.L-1+Vc 500 mg.L-1;④在培养基中添加500 mg.L-1Vc或去除Cu2+,具有较好的抗褐化效果。     

Micropropagation of <Emphasis Type="Italic">Eucalyptus grandis</Emphasis> × <Emphasis Type="Italic">E. urophylla</Emphasis> AEC 224 clone

Genetic transformation systems require protocols that allow regenerating transgenic plants from transformed tissues. This study aimed to establish a protocol for indirect organogenesis in leaf explants of a Eucalyptus grandis  ×  E. urophylla AEC 224 clone. During callogenesis stage, several concentrations of NAA and then NAA or 2,4-D combined with TDZ were tested in JADS culture medium for 30 days, followed by subculture of the explants in the regeneration medium, containing 5.0 µM BA and 0.5 µM NAA for another 30 days. In these media, the explant oxidation rate was high (95 %). Thus, in order to reduce oxidation, different culture media were compared: WPM, MS, JADS and modified QL, followed by explant transfer onto regeneration medium. The highest percentage of regeneration and the lowest oxidation rate were achieved on WPM medium. Then, NAA and 2,4-D were tested in combination with TDZ and also TDZ and BA combined with NAA in WPM medium. The most efficient culture media in terms of shoot regeneration were WPM supplemented with 0.25 µM TDZ and 0.1 µM NAA during 30 days for callus induction and then with 5.0 µM BA and 0.5 µM NAA for another 30 days. This protocol yielded a regeneration rate of 43 %, with a low oxidation of tissues. A rooting experiment was conducted using half strength MS medium and comparing three concentrations of IBA (2.46, 4.90 and 7.35 µM). The highest rooting percentage (35 %) was obtained on medium containing 2.46 µM IBA. Once the shoots were rooted, acclimatization in a greenhouse was not challenging and plant survival reached 100 %.     

丽格海棠外植体组织培养的研究

以丽格海棠的叶片、叶柄和茎段作为外植体进行组织培养,研究适宜丽格海棠组织培养的最佳外植体、不同部位外植体不定芽分生的最佳培养基、继代增殖的培养基和组培苗的生根培养基。结果表明:不同部位外植体不定芽的再生率:叶片>茎段>叶柄,叶片的最佳培养基为:MS+1mg/LTDZ+0.1mg/L2,4-D或MS+1mg/L6-BA+0.1mg/LTDZ,叶柄的最佳培养基为:MS+1mg/L6-BA+0.1mg/LTDZ,茎段的最佳培养基:MS+1mg/LTDZ+0.1mg/L2,4-D或MS+1mg/L6-BA+0.1mg/LTDZ;不定芽继代增殖的最佳培养基为MS+2mg/L6-BA+0~0.1mg/LNAA;组培苗生根的最佳培养基比为MS+0.1~0.3mg/LIBA。