乌蔹梅的组织培养及快速繁殖研究

采用生长旺盛的乌蔹梅茎段为培养材料,进行芽的生长与分化,试管苗生根、继代、留茬继代、移栽、扦插和移植的研究。结果证明：1/2MS＋IAA0.2mg/L＋NAA0.1mg/L是芽生长培养的理想培养基;MS＋BA0.4mg/L＋NAA0.1mg/L是乌蔹莓生长芽分化增殖的理想培养基;1/2MS＋IAA0.3mg/L是乌蔹莓试管苗生根培养的理想培养基;生根试管苗可以连续进行3次留茬继代培养,平均每代的繁殖系数为3.1;在温室的苗床上试管苗移栽和扦插成活率在90%左右;移栽和扦插成活的试管苗移植到花坛上的成活率近100%;移植的试管苗当年可以正常开花结实,且生长旺盛,根系发达。     

国产乌蔹莓属植物药学研究

在检索相关文献的基础上,分析了乌蔹莓的生态特点和生活习性等,并研究了其在药用方面的价值。     

PCR方法快速鉴别绞股蓝与乌蔹莓

建立绞股蓝与乌蔹莓2种中药相互鉴别的特异性PCR方法,利用SYBR Green I染料法建立对绞股蓝与乌蔹莓的快速鉴别方法。采集不同产地的绞股蓝与乌蔹莓各9份,通过对其叶绿体DNA中trnL-F片段进行扩增、测序,进行多重序列比对后,根据其变异位点设计相互鉴别的特异性引物,建立特异PCR鉴别方法,并通过加入SYBR Green I染料法建立对2种中药进行快速检测方法,本研究建立了对绞股蓝与乌蔹莓2种中药进行分子鉴别方法,并建立了荧光快速检测方法。     

水芹的组织培养及快速繁殖研究

[目的]更好保护野生植物资源水芹,并为其人工栽培提供依据。[方法]以水芹嫩茎为外植体,研究水芹愈伤组织的诱导和分化及试管苗生根、移栽、扦插的条件。[结果]MS+BA0.5 mg/L+NAA1 mg/L是诱导水芹嫩茎形成具有分化能力愈伤组织的最佳培养基。MS+AgNO30.4 mg/L+BA0.2 mg/L是诱导水芹愈伤组织和不定芽分化的最佳培养基。1/3 MS+IAA0.6 mg/L是水芹不定芽生根培养和生根继代培养的最佳培养基。以炉灰渣为试管苗的移栽扦插基质,移栽成活率为99%,扦插成活率为94%。移栽和扦插的水芹试管苗具有生长快和长势旺的特点,90 d收获的鲜食茎叶比野生水芹增产15%,根系为野生植株的2倍。[结论]在生产上,应采用试管苗生根继代培养的方法进行水芹的快速繁殖。     

绞股蓝与乌蔹莓植物鉴别

对绞股蓝与乌蔹莓进行了植物性状特征的比较，同时指出了它们在生境，形态等方面容易混淆的原因。     

白菜品种——黄金甲的组织培养与快速繁殖

本研究以白菜新品种——黄金甲嫩叶柄为材料,进行了愈伤组织的诱导、分化、试管苗生根、移栽、田间栽培所需要条件的研究,并建立起黄金甲的无性系。结果证明：MS＋BA0.4mg·L^-1＋NAA0.8mg·L^-1是诱导愈伤组织的理想培养基;MS＋La（NO3）23mg·L^-1＋BA1.0mg·L^-1＋NAA0.1mg·L^-1是诱导愈伤组织分化和不定芽分化的理想培养基;1/3MS＋IAA0.6mg·L^-1为不定芽生根培养的理想培养基;以炉灰渣为试管苗的移栽基质,移栽成活率为96%。移栽的试管苗具有长势旺盛、整齐、根系增加1倍左右的特点。     

绞股蓝与乌蔹莓的光合作用和叶绿素荧光特性比较

在模拟野外栽培条件下,对绞股蓝与乌蔹莓光合作用和叶绿素荧光等指标及其叶绿素和类胡萝卜素含量等指标进行比较,以期对这两种药用植物的人工栽培提供一些光合生境方面的指导.结果表明,绞股蓝较乌蔹莓具有低光补偿点,低光饱和点,对吸收的光能的利用能力低.乌蔹莓对温度的适应范围较绞股蓝大,而叶绿素含量上绞股蓝明显高于乌蔹莓,但是在叶绿素a与叶绿素b的比值上显著低于乌蔹莓.两者之间类胡萝卜素含量差异不显著. 显然,绞股蓝比乌蔹莓更偏喜阴生境,人工栽培绞股蓝宜选择毛竹林、疏林或棚网遮荫等生境.     

非洲菊组织培养快速繁殖

采用形成愈伤组织诱导出苗的方法进行了非洲菊组织培养快速繁殖试验,试验结果,花蕾作小植体直径在0．6－1．5cm均能诱导出苗;最适不定芽诱导培养基为MS＋10mg/L 6-BA 0.5mg/L IAA 3%蔗糖＋0．6％琼脂;最适增殖培养基为MS＋2mg/L 6-BA 0.2mg/L NAA 3%蔗糖＋0．6％琼脂,增殖倍数达5－6倍,最适生根培养基为MS＋0．05mg/L IBA 3%蔗糖＋0．6％琼脂,培养15d,生根率达100％;移栽最适基质配方为泥炭：珍珠岩＝1：2,移栽最适温度为12－28℃,移栽成活率达90％以上。     

绿萝的组织培养及快速繁殖的研究

以绿萝叶片、带节的茎段为外植体进行组织培养,成功获得再生植株,并建立了快速无性繁殖体系.结果显示:最适愈伤组织诱导外植体为叶片,最适愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA2.0+NAA0.5+2.4-D 0.5 mg/L.最适增殖培养基为MS+6-BA 2.0+NAA 0.5 mg/L;采用生根培养和水培2种途径对绿萝进行移栽,最适生根培养基1/2MS+NAA 0.1 mg/L.     

绿萝的组织培养及快速繁殖的研究

以绿萝叶片、带节的茎段为外植体进行组织培养，成功获得再生植株，并建立了快速无性繁殖体系。结果显示：最适愈伤组织诱导外植体为叶片，最适愈伤组织诱导培养基为MS＋6-BA2．O＋NAAO．5＋2，4-D0．5mg／L。最适增殖培养基为Ms＋6-BA2．0＋NAA0．5mg／L；采用生根培养和水培2种途径对绿萝进行移栽，最适...     

蔓生百部组织培养快繁技术

对蔓生百部的茎段上侧芽进行组织培养,结果表明：初代培养在MS＋6BA 2mg/L＋kT 1mg/L＋NAA 0.2mg/L培养基上,约10d茎段上侧芽开始萌发;继代繁殖在MS＋6BA 2mg/L＋NAA 0.2mg/L培养基上,约30d几乎全部诱导形成多芽体,多芽体的芽数平均为3个左右;生根壮苗一般采用1/2MS＋IBA 0.2mg/L培养基.     

柃木的组织培养与快速繁殖技术

为建立柃木的茎尖组培快繁体系,研究了0.2%HgCl₂不同灭菌时间、不同6-BA浓度对柃木芽诱导和增殖的影响;以及不同的IBA浓度、糖浓度和生根法,对柃木根诱导和生根的影响。结果表明：外植体用0.2%HgCl₂表面灭菌25 min,并以WPM为基本培养基,芽诱导、增殖时的6-BA浓度为0.5 mg/L,NAA浓度为0.05 mg/L,GA浓度为0.2 mg/L,蔗糖为20 g/L;根诱导时IBA浓度为0.5 mg/L和糖浓度为30 g/L以及两步生根法等,是柃木组培和快速繁殖的适宜条件。应用此方法的柃木嫩枝的芽诱导萌发率可达100%、芽增殖系数为2.56～4.58/次、生根率为98%、组培苗成活率为95%以上,并已应用于生产。     

淮山药的茎尖培养与快速繁殖

以淮山药零余子催芽，剥取茎尖繁殖。筛选出各培养阶段适宜的培养基分别为：①茎尖诱导培养基(MS 0．5mg/L6—BA 0．5mg/L NAA 3％蔗糖)；②丛生芽的分化及继代培养基(MS 1mg/L6—BA 2mg/L KT 3％蔗糖)；③生根培养基(MS 0．5mg/L NAA 0．5mg/L 0．5％活性炭 3％蔗糖)。     

非洲紫罗兰的组织培养和快速繁殖

非洲紫罗兰（Saintpaulia ionantha）,苦苣苔科非洲堇属多年生草本花卉,原产于非洲东部热带地区,植株全身被覆绒毛,耐干旱,在适当的栽培条件下,除夏天花数较少外,全年都可开花,花期长达2个月。常规繁殖方法有叶插法、分株法和种子繁殖法，繁殖系数低。为此，我们进行了非洲紫罗兰的组织培养研究，以达到快速繁殖的目的。     

巴旦杏组织培养快速繁殖技术研究

采用水培芽作为组织培养的外植体材料,并获得具根、茎、叶完整的巴旦杏试管苗,其中增殖培养接种在MS+6-BA1.0 mg+NAA 0.01 mg/L的培养基上,增殖倍数3倍左右.不定芽的生根培养接种在MS+IBA 0.3～0.5 mg/L培养基上,或用100 mg/kg的生长素IBA、IAA侵泡不定芽基部,接种在不加激素的培养基上,两种生根培养法,生根率均达95;以上.     

金线莲组培快繁技术

用金线莲的茎段作外植体,比较不同的培养基,细胞分裂素,生长素,植物添加剂等因素对丛生芽生成的影响。实验证明Ｂ５及ＭＳ较好,ＢＡ的作用优于ＫＴ和ＺＴ,最适质量浓度为４．０ｍｇ．Ｌ＾－１,ｎａａ０．３ｍｇ．Ｌ＾－１和ＧＡ３０．３ｍｇ．Ｌ＾－１对丛生芽的生成和伸长有较好的效果。     

草莓组织培养与快速繁殖技术

介绍了草莓脱毒与快繁的技术措施,筛选出了草莓组织培养的最佳培养基及培养条件,并介绍了脱毒草莓苗圃繁殖要点,为草莓无毒苗快繁体系的建立提供了依据。     

木薯组织培养快速繁殖的研究

以木薯茎尖、腋芽作为外植体,在添加不同浓度6-BA、NAA的M S基本培养基上进行快速离体繁殖。结果表明:在M S 6-BA 2.0m g/L NAA 0.05m g/L培养基中进行茎尖、腋芽的诱导生长和继代培养,诱导和增殖效果较好,无菌苗诱导率为86.2%,丛生芽诱导率为82.6%,植株健壮;此外,在木薯的生根培养中,可以少加或不加激素,木薯都可以诱导出根。     

生姜组织培养的快繁技术

生姜(Zingiber officinale Rosc.)为姜科姜属多年生草本植物,含蛋白质、粗脂肪、碳水化合物及各种维生素和矿物质,其经济价值较高,在食品工业和医药上具有很好的应用前景[1].     

香荚蒾组织培养快繁技术研究

用香荚蒾带芽茎段作外植体,对香荚蒾组织培养快繁技术进行研究,以提高香荚蒾繁殖速度和成活率。结果表明,香荚蒾最适初代培养基为1/2 MS+6-BA 2 mg/L+IBA 0.05 mg/L+活性炭1 g/L,最适增殖培养基为1/2 MS+6-BA2 mg/L+IBA 0.1 mg/L+活性炭1 g/L,最适生根培养基为1/2 MS+IBA 0.5 mg/L+活性炭1 g/L。