辣椒叶片离体培养与植株再生

以辣椒无菌苗叶片为外植体，就激素对其不定芽分化及植株再生的影响进行了研究。结果表明，ＢＡ对叶片不定芽的诱导效果最好，ＺＴ次之，ＫＴ不能有效地诱导叶片形成不定芽；ＩＡＡ与ＢＡ相配合使叶片不定芽分化频率明显提高；ＩＢＡ或ＮＡＡ与ＢＡ的激素组合使叶片不定芽分化频率有所下降；２，４－Ｄ对叶片不定芽分化有明显的抑制作用。在分化培养基中添加１．０ｍｇ／Ｌ ＧＡ３有利于不定芽的伸长。不定芽伸长后在不含激素的ＭＳ     

红掌叶片离体培养与植株再生研究

通过对红掌叶片离体培养与植株再生过程的系统研究结果表明：最佳的外植体为1cm^2左右的带主脉幼嫩叶切片；最佳的诱导培养基为1/2MX 2，4-D1mg/L BA4mg/L，大量元素和BA对愈伤组织诱导的影响不大，2，4-D是愈伤组织诱导的主要因子；最佳的分化培养基为MS BA8mg/L，中间繁殖体增殖和成苗培养基分别为MS BA3mg/L和1/2MS NAA0.2mg/L BA2mg/L，不必另行壮苗生根便能形成根叶俱全的小苗，移栽成活率达96％以上。     

红掌叶片离体培养与植株再生研究

通过对红掌叶片离体培养与植株再生过程的系统研究结果表明:最佳的外植体为1 cm2左右的带主脉幼嫩叶切片;最佳的诱导培养基为1/2MS+2,4-D 1 mg/L+BA 4 mg/L,大量元素和BA对愈伤组织诱导的影响不大,2,4-D是愈伤组织诱导的主要因子;最佳的分化培养基为MS+BA 8 mg/L,中间繁殖体增殖和成苗培养基分别为MS+BA 3 mg/L和1/2MS+NAA 0.2 mg/L+BA 2 mg/L,不必另行壮苗生根便能形成根叶俱全的小苗,移栽成活率达96%以上.     

菊花脑离体培养再生植株研究

[目的]研究菊花脑离体培养再生植株技术。[方法]以菊花脑叶片、叶柄、茎段为外植体,以MS为基本培养基,研究了不同激素组合对其不定芽诱导率的影响。[结果]叶片外植体诱导率最高,叶柄次之,茎段最低。菊花脑叶片生芽的最佳培养基是MS＋1.0mg/L6-BA＋0.5mg/LNAA;叶柄生芽的最佳培养基为MS＋0.5mg/L6-BA＋0.5mg/LNAA;茎段生芽的最佳培养基是MS＋1.0mg/L6-BA＋0.5mg/LNAA。[结论]建立了菊花脑叶片、叶柄、茎段直接诱导不定芽的组织培养技术。     

辣椒叶片离体培养与植株再生

以辣椒无菌苗叶片为外植体，就激素对其不定芽分化及植株再生的影响进行了研究。结果表明，ＢＡ对叶片不定芽的诱导效果最好，ＺＴ次之，ＫＴ不能有效地诱导叶片形成不定芽；ＩＡＡ与ＢＡ相配合使叶片不定芽分化频率明显提高；ＩＢＡ或ＮＡＡ与ＢＡ的激素组合使叶片不定芽分化频率有所不降；２，４－Ｄ对叶片不定芽分化有明显的抑制作用。在分化培养基中添加１．０ｍｇ／ＬＧＡ３有利于不定芽的伸长。不定芽伸长后在不含激素的ＭＳ或ＭＳ＋ＭＡ培养基上诱导生根，形成完整植株。     

胡椒木叶片离体培养与植株再生

探讨了胡椒木(Zanthoxylum piperitum)叶片的离体培养.选取胡椒木幼嫩叶片作为外植体,接种在不同激素组合的培养基上进行诱导培养,结果表明,最适的诱导培养基为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.7 mg/L,分化率为91.7%,最适的增殖继代培养基为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.7 mg/L,所产生的不定芽在1/2MS+ NAA0.4 mg/L的培养基上可全部生根,长成完整植株.首次证明以胡椒木的叶片为外植体可以进行快速离体培养.     

菜心离体培养植株再生的研究

菜心 (ＢｒａｓｓｉｃａｐａｒａｃｈｉｎｅｎｓｉｓＢａｉｌ.)离体培养时 ,由于基因型的差异 (ＡＡ基因型 )较其他芸薹属作物更为困难 ,植株再生频率仅为 10 %～ 30 % [1] .离体培养的主要问题是愈伤组织分化频率低 ,在分化成苗时先产生根而抑制了芽的分化[1,2 ] ,芽伸长困难 ,实验结果重复性差 ,不能满足遗传转化的需要 .本实验研究了不同外植体、培养基附加成份等因素对菜心离体培养植株再生和分化频率的影响 ,以ＡｇＮＯ3 和ＧＡ3 相配合 ,获得了高频率、芽壮且多的再生植株 ,对保存种质、扩大繁殖和遗传转化有一定的意义 .1　材料与方…     

花烛离体培养与植株再生的优化研究

用花烛华伦天努的幼嫩叶片诱导产生愈伤组织,以1／2MS＋6-BA1．0mg／L＋2,4-D0．5mg／L的幼叶出愈伤率最高,达到92％;愈伤组织芽的分化,以1／2MS＋6-BA1．5mg／L＋IAA0．3mg／L的组合培养基最适宜于愈伤组织芽的分化,诱导率达到94％以上;在相同激素水平条件下,1／2MS对不定芽转化为正常苗有利,NAA0．1～1．0mg／L促进生根,所获试管苗移栽成活率达93％,商品出苗率达90％。     

辣椒子叶离体培养及植株再生

对5个辣椒品种进行了子叶离体培养试验，筛选出两种较适粗的培养基为：MS IAA0.2mg/L 6-BA2mg/L 30g蔗糖和MS ZT5mg/L 16g蔗糖。子叶于25℃下光照培养，21d后可陆续分化出芽，芽伸长形成茎芽约2-3cm高时移入生根培养基MS NAA0.5mg/L中，可发育为植株。     

盐芥叶片组织培养再生植株的研究

以盐芥叶片的切段为外植体,在MS培养基上再生出完整的小植株。在培养基中添加BA 3.0 mg/L或NAA 0.05 mg/L,BA 3.0mg/L较适合于愈伤组织和不定芽的诱导。研究建立起盐芥离体培养植株再生体系。     

骏枣叶片组织培养及植株再生技术研究

通过对骏枣叶片诱导愈伤组织、愈伤组织诱导不定芽、不定根的分化及再生植株移植的最佳条件的探讨,建立了稳定的骏枣叶片离体培养及再生植株体系.     

黑莓叶片组织培养及植株再生的初步研究

以美国黑树莓叶片作为外植体,以MS为基本培养基,添加不同浓度的6-BA、NAA或IAA进行愈伤组织诱导及植株再生试验.结果表明:树莓叶片外植体在培养基MS+6-BA 2.0～ 4.0 mg/L+NAA(IAA)0.01～0.5 mg/L都能不同程度地形成愈伤组织 ,但以MS+6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L和MS+6-BA 4.0 mg/L+IAA 0.5 mg/L愈伤组织的诱导率最高,诱导率可达100%;所试验的各种不定芽分化培养基,都能不同程度地诱导愈伤组织分化出不定芽,在添加6-BA 2.0 mg/L和NAA 0.01 mg/L的MS培养基上,愈伤组织分化不定芽的比例最高,达49.7%的;所产生的不定芽在1/2 MS+NAA 0.1 mg/L的培养基上的生根率可达89.3%.     

棉花组织培养植株再生的基因型分析

棉花组织培养体细胞胚胎发生和植株再生是由多基因控制的数量遗传性状，该性状可通过系统选育或杂交育的方式传递给后代。美国的珂字棉，原苏联的１０８夫，澳大利亚的Ｓｉｏｋｒａｌ １－３和国内的冀合３２１、鲁棉系列较易获得体细胞再生植株；原苏联，澳大利亚、中国棉花组织培养较易成功的品种大多是由美国珂字棉通过系统选育或杂交育种而获得的。在棉花组织培养中，有目的地进行筛选也有可能获得高频率胚胎发生和植林再生的株     

细叶百合组织培养植株再生

以细叶百合的鳞片和花丝为外植体,通过两种不同的发生方式,成功获得再生植株,并建立了细叶百合两种外植体的再生体系。结果表明:鳞片可以通过器官直接发生途径再生,其最适诱导培养基为MS+NAA0.5mg·L-1+6-BA1.5mg·L-1;花丝通过愈伤组织间接器官发生途径再生,诱导愈伤组织的最适培养基为MS+2,4-D2mg·L-1+KT2mg·L-1,诱导愈伤组织产生不定芽的最适培养基为MS+NAA0.5mg·L-1+6-BA2.0mg·L-1;最适继代增殖培养基均为MS+NAA0.2mg·L-1+6-BA1.0mg·L-1;最适生根培养基为1/2MS+IBA0.5mg·L-1。     

玉米原生质体培养再生植株

将玉米自交系“330”成熟胚诱导的愈伤组织,在附加2mg/L2,4—D的MSB培养基上继代、筛选,产生了三种类型的愈伤组织。用结构疏松,生长迅速的Ⅱ型胚性愈伤组织分离原生质体,在KPR或N_6ap培养基中以1×10~5/ml密度进行液体浅层培养,植板率为5.6%—7.4%。采用分步分化法得到了正常的绿苗,并经过壮根,炼苗后移栽成活。     

黄瓜子叶组织培养再生植株

将６个黄瓜品种的子叶和下胚轴培养于添加ＢＡ１．０～２．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ（或ＮＡＡ）０．０１～０．０２ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基中，子叶能够直接分化出芽，出芽率随品种的不同而有差异，下胚轴只长愈伤组织，没有见到芽的分化。将子叶分化的芽切割下来，转入含ＩＢＡ０．１或０．２ｍｇ／Ｌ的１／２ＭＳ培养基中，可长出良好的根系，经移栽，即可成活。     

胡萝卜幼苗根、茎、叶组织培养再生植株

[目的]研究胡萝卜幼苗的组织培养再生技术。[方法]以培养约2个月的胡萝卜幼苗为材料,分别取幼苗的根、茎、叶为外植体,研究不同培养基、不同外植体对愈伤组织诱导的影响,以及培养基对愈伤组织分化的影响。[结果]根、茎、叶为外植体均能产生愈伤组织,但以茎为外植体诱导的愈伤组织质量最佳,其愈伤组织的诱导率和分化率均为最高。[结论]建立了胡萝卜试管培养幼苗的愈伤组织诱导和再生植株体系,为今后的试验打下了基础。     

白花丹参的组织培养和植株再生

[目的]通过植物组织培养技术快速大量繁殖白花丹参优良品系,深度开发利用这一药用植物资源。[方法]以白花丹参的幼嫩叶片和叶柄作为外植体,接种至器官发生分化培养基上诱导丛生芽,然后作壮苗培养,继而生根培养,建立一套快速再生体系。[结果]在Ms＋6-BA2．0mg／L＋NAA1．0mg／L和MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．5mg／L培养基上均能诱导分化大量丛生芽,然后转接至Ms＋KT1．5mg／L＋NAA0．2mg／L继代培养基上做继代、壮苗培养,消除玻璃化现象。选取健壮芽苗转接至1／2MS4-IBA0．2mg／I~培养基上生根培养．待试管苗上长出数条2cm长的健壮根系时即可炼苗移栽,成活率在90％以上。[结论]建立了一套完整的白花丹参组培再生体系。