马铃薯脱毒试管苗无土栽培的基质筛选

在防虫网室内 ,就 4种不同基质对马铃薯脱毒试管苗移栽生产微型薯产量、质量的影响进行筛选试验。结果表明 :菇渣 +猪粪 +火烧土 +钙镁磷肥按 2∶1∶1∶0 0 0 1配制 ,经高温堆沤灭菌后作营养基质生产出的微型薯产量最高 ,每m2 达到 4 0 99 2 g的较高水平 ,同时大大降低了生产成本 ,可以作为我省工厂化大规模生产微型薯的优良基质。     

培育健壮马铃薯试管苗试验

我们在马铃薯茎尖脱毒和试管苗繁殖过程中发现，马铃薯试管苗生长细弱、茎叶嫩黄与带有高浓度的马铃薯纺锤块茎类病毒（PSTV）及几种主要马铃薯病毒有关。用双向聚丙烯酰胺凝胶电泳法和酶联夹心法检测筛选出无病毒的试管苗作为试材，排除类病毒和病毒侵染的干扰，以提高培养基中营养元素含量作为培养健壮试管苗的措施，试验结果表明，2倍MS液体培养处理的试管苗生长茁壮、浓绿，加速了干物质累积、使继代培养周期从3～4周缩短为2～3周。     

不同封口材料对马铃薯试管薯诱导的影响

本试验采用单层无孔膜、双层带孔膜、塑料盖三种不同封口材料,调查不同处理形成的试管薯个数以及大小。结果表明,‘Favorita’和‘Atlantic’都是采用单层无孔膜时结薯个数最多,而‘克新1号’则是采用双层带孔膜时结薯个数最多。3个品种在采用塑料盖封口时的结薯个数最少,但大薯率最高。     

马铃薯试管苗生产技术探索

为了探索简单、易行、高效的生产技术,本研究以马铃薯‘早大白’品种为试材,研究了激素浓度、接种密度、培养基加入量对试管苗高度及节间长度的影响。结果表明:利于试管苗高度及节间长度的最佳MS培养基为:B9浓度为5～15 mg/L、每瓶接种18株、培养基用量25 mL/瓶。     

培育健壮马铃薯试管苗试验

我们在马铃薯茎尖脱毒和试管苗繁殖过程中发现，马铃薯试管苗生长细弱、茎叶嫩黄与带有高浓度的马铃薯纺锤块茎类病毒（ＰＳＴＶ）及几种主要马铃薯病毒有关。用双向聚丙烯酰胺凝胶电泳法和酶联夹心法检测筛选出无病毒的试管苗作为试材，排除类病毒和病毒侵染的干扰，以提高培养基中营养元素含量作为培养健壮试管苗的措施，试验结果表明，２倍ＭＳ液体培养处理的试管苗生长茁壮、浓绿，加速了干物质累积，使继代培养周期从３～４周缩短为２～３周。     

马铃薯试管苗工厂化生产及成本核算

1　前　言试管苗的工厂化扩繁生产随着规模的不断扩大 ,逐渐建立了一套高效低成本的试管苗工厂化生产技术本系。在长期的探索中 ,对该体系的生产成本进行了细致、准确的核算 ,目的是不断降低成本 ,提高公司的经济效益和社会效益。2　试管苗的工厂化生产我们采用传统的人工光照组织培养进行马铃薯试管苗的工厂化生产。在此生产技术基础上 ,探索出一些适合当前工厂化生产的管理技术措施。2 1　培养基成分的改进(1)通过试验 ,去掉MS基本培养基中的肌醇及其高激素成分 ,对试管苗的生长影响不明显 ;(2 )用廉价、方便的自来水代替昂贵的纯净水或…     

脱毒马铃薯试管苗大田生产效果好

1　前　言利用网室进行脱毒试管苗微型薯的生产 ,是目前很多科研单位所采取的措施 ,但由于温网室条件下所生产出的微型薯成本较高 ,如政府不补贴 ,山区农户一般难以接受 ,这样就限制了脱毒技术的普及和加速推广。为了加速脱毒种薯成果的转化 ,降低成本 ,缩短脱毒良繁的中间环节 ,找出一条即有利该项技术的推广 ,成本又低 ,薯农易接受的推广之路 ,我所于 1999～ 2 0 0 0年进行了大胆尝试 ,利用育苗盘中移栽成活的试管苗和扦插苗直接送往海拔 2 80 0ｍ以上的虫源少、土壤肥沃、气候冷凉的太安基点进行大田微型薯快速繁殖 ,获得了可喜的成果。…     

马铃薯试管苗对盐胁迫的生理反应

利用不同浓度的NaCl对马铃薯大西洋试管苗进行了20d胁迫。结果发现:随着盐浓度的增加,根和茎叶中Na+含量大幅度增加,K+含量基本稳定,Na+/K+呈极显著的上升趋势;叶片中叶绿素含量下降,但丙二醛含量增加,质膜透性增大,脯氨酸大量积累,且在一定盐度下脯氨酸含量与丙二醛含量和质膜透性间呈极显著的正相关,表明盐胁迫下脯氨酸积累的多少可反映马铃薯试管苗的受伤害程度。研究表明,Na+积累、膜透性增大和叶绿素含量下降是影响马铃薯试管苗生长的主要原因。     

利用山梨醇长期保存马铃薯试管苗

试验以缓慢试管苗生长为策略,建立合理使用山梨醇保存试管苗慢性生长体系,通过适宜的培养温度和合理的山梨醇浓度使用,使试管苗培养周期由原来的2~3个月延长至1年,为大规模保存马铃薯试管苗提供技术基础。试验结果表明：添加40 g/L山梨醇的培养基结合10℃培养室温度,能够使多数马铃薯试管苗保存延长至1年,从而能有效节省成本,减少由于频繁转接所引起的污染及品种混杂的发生。     

马铃薯脱毒试管苗二次结薯的产量试验

为解决生产中存在的马铃薯脱毒试管苗生产成本高、生产微型薯繁殖系数低、造成微型薯价格居高不下的难题,本研究选用两个马铃薯品种(抗疫白和润者),在防虫温室收获完微型薯后,把植株再移栽到网棚,株行距20 cm×60 cm,继续使其结薯,进行二次收获。结果其产量远高于第一次收获生产微型薯的产量,因此大大提高了种薯生产效率。     

蔗糖和外源激素对马铃薯脱毒试管苗的影响

本试验以马铃薯品种大西洋脱毒试管苗为材料,采用正交试验设计,研究了蔗糖和外源激素(6-BA、B9、NAA)对脱毒试管苗生长状况的影响。研究结果表明,对于试管苗的不同指标,其最优组合不尽相同。有利于株高的组合:3%蔗糖+0.01mg·L-16-BA+20mg·L-1B9+0.1mg·L-1NAA;有利于茎粗的组合:12%蔗糖+1mg·L-16-BA+20mg·L-1B9+0.02mg·L-1NAA;有利于茎节数的组合:3%蔗糖+0.1mg·L-16-BA+35mg·L-1B9+0.1mg·L-1NAA;有利于叶片数的组合:3%蔗糖+0.1mg·L-16-BA+20mg·L-1B9+0.02mg·L-1NAA。     

工厂化生产马铃薯脱毒苗的成本控制分析

马铃薯脱毒试管苗生产是马铃薯脱毒微型薯产业化的重要环节,但组培苗生产成本较高,严重制约了脱毒种薯产业化的发展。本文以工厂化生产组培苗直接成本与间接成本为线索,从经营管理与技术更新上提出一些既能保证试管苗质量,又能降低生产成本的有效管理措施,对非机械化生产组培室有一定的参考价值。     

不同抑菌剂对马铃薯试管苗生长的影响

为降低马铃薯组培苗的污染率,试验对不同浓度的医用抗生素、防腐剂、化学农药的抑菌效果以及对马铃薯组培苗生长及生根的影响进行了研究。试验数据表明：70%甲基硫菌灵可湿性粉剂和50%多菌灵可湿性粉剂对马铃薯组培苗生产中最常见的青霉菌、细菌和酵母菌3种菌都具有较好抑制作用,并且对马铃薯试管苗的生长以及生根产生的负影响最小。     

低钾胁迫下马铃薯试管苗生长及生理指标的变化

马铃薯试管苗在全价、60%钾素、30%钾素的MS培养基上培养,第20、40 d时测定生理指标。结果表明,60%的低钾培养环境对马铃薯试管苗新叶发生能力具有促进作用,且地上部分和地下部分的鲜重增加,植株生长健壮。30%的低钾培养环境依然能够促进新叶的发生,但抑制根系的伸长,胁迫至40 d时,生物量显著降低,试管苗的细胞膜透性相对值、可溶性糖含量较对照明显增加,而叶绿素、可溶性蛋白明显降低,差异达到显著或极显著水平。而60%低钾处理下,这些指标的变化与对照基本相同,无差异显著性,表明含60%钾元素的MS培养基适宜马铃薯试管苗的生长。     

马铃薯脱毒试管苗壮苗培养体系的优化

试验采用正交实验设计法,研究了不同浓度的α-萘乙酸(NAA)、比久(B)9)、6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)和大量元素组合对马铃薯品种费乌瑞它脱毒试管苗壮苗培养的影响,以期为费乌瑞它脱毒试管苗壮苗培养优化培养体系的建立提供理论参考。结果表明:在4个因素中对茎粗、根数、根长和单株干重影响大小依次为:大量元素>B9>NAA>6-BA;而对苗高、有效茎节数、活叶数和单株鲜重影响最大的为大量元素,影响最小的为NAA。新复极差法显著性测定结果显示,除4个处理外,其余处理与对照间有效茎节数、活叶数、茎粗、根长、根数、单株鲜重和干重差异均达到极显著水平。MS(100 mL/L大量元素)+0.03 mg/L NAA+10 mg/L B9+2%白糖+0.6%琼脂培养基除根长外各性状的值均最大,表明它是适合‘费乌瑞它’脱毒试管苗壮苗培养的最佳培养基。     

马铃薯种质离体保存技术

以马铃薯‘晋薯16号’为试验材料,以节间作为外植体,进行了种质资源缓慢生长保存研究。结果表明,以MS+IAA 0.5 mg/L+KT 0.1 mg/L为基本培养基,通过调节蔗糖浓度进行马铃薯种质离体保存,在常温条件下最佳蔗糖浓度为90 g/L;以MS+蔗糖30 g/L+IAA 0.5 mg/L+KT 0.1 mg/L为基本培养基,通过调节多效唑(PP33)3浓度进行马铃薯种质离体保存,在常温条件下最佳PP333浓度为1.0 mg/L,在低温4℃条件下最佳PP333浓度为0.5 mg/L。离体保存后的试管苗转入继代培养基中进行恢复培养,其生长情况与正常继代苗无显著差异。     

马铃薯种质离体保存技术

以马铃薯‘晋薯16号’为试验材料,以节间作为外植体,进行了种质资源缓慢生长保存研究。结果表明,以MS＋IAA 0.5 mg/L＋KT 0.1 mg/L为基本培养基,通过调节蔗糖浓度进行马铃薯种质离体保存,在常温条件下最佳蔗糖浓度为90 g/L;以MS＋蔗糖30 g/L＋IAA 0.5 mg/L＋KT 0.1 mg/L为基本培养基,通过调节多效唑（PP33）3浓度进行马铃薯种质离体保存,在常温条件下最佳PP333浓度为1.0 mg/L,在低温4℃条件下最佳PP333浓度为0.5 mg/L。离体保存后的试管苗转入继代培养基中进行恢复培养,其生长情况与正常继代苗无显著差异。