兰州百合试管小鳞茎膨大及碳水化合物变化规律研究

为了探明兰州百合小鳞茎的生长及膨大规律,以添加不同浓度蔗糖处理为依据,明确小鳞茎生根膨大培养基以1/2MS+0.2 mg/L NAA +70 g/L蔗糖为最适。在此浓度基础上对兰州百合试管小鳞芽进行1次和2次膨大培养,分别在培养30、50、70、90 d时测定小鳞茎鲜重、干重、糖及淀粉含量。结果表明,随着培养天数的增加,兰州百合1次和2次膨大小鳞茎单粒鲜重和干重均呈增加趋势,且2次膨大较1次膨大效果显著。1次膨大小鳞茎可溶性糖、果糖和淀粉含量均随培养天数的增加呈先增加后降低的趋势,且变化趋势基本一致;蔗糖含量随着培养天数的增加呈上升趋势,与培养30 d相比,培养50～90 d时蔗糖含量明显增加,且达极显著差异。随培养天数的增加,2次膨大小鳞茎可溶性糖和蔗糖含量变化趋势较平缓,各培养时期差异不明显;果糖含量呈降低趋势,与培养30 d相比,培养50～90 d时果糖含量显著降低;淀粉含量呈增加趋势,在培养90 d时达最大值。     

东方百合试管鳞茎膨大的研究

以东方百合‘S iberia’试管苗为材料,研究了激素种类及其质量浓度、蔗糖浓度、大量元素浓度、低温处理对试管鳞茎形成和膨大的影响。结果表明,低质量浓度NAA有利于提高结鳞茎率;90 g/L蔗糖处理结鳞茎效果最好,所结鳞茎的平均直径为1.59 cm,平均鲜重为2.09 g,但与70 g/L蔗糖处理差异不显著;增加大量元素浓度可以促进鳞茎的形成和膨大,当浓度为2M S时,鳞茎直径最大达2.06 cm,平均直径1.65 cm,平均鲜重2.68g,较处理前的单芽增加了12.8倍;5℃低温处理可使试管苗100%结鳞茎,处理30 d对结鳞茎的效果最好,鳞茎的直径、鲜重平均分别为1.50 cm,2.06 g。     

百合试管结鳞茎的研究

在试管内诱导百合形成大量小鳞茎,并探讨了影响百合试管结鳞茎的一些因素,结果表明：蔗糖是主要因子,当其浓度过低（３％）,时没有小鳞茎形成;浓度较高时,均能形成小鳞茎,鳞茎较粗,１０％蔗糖效果最好,多效唑对百合根,叶有明显抑制作用,对鳞茎的形成起促进作用,以１０ｍｇ．Ｌ＾－１时结鳞茎率最高,效果最佳,芽和叶片基部结鳞茎的效果差异较大,叶片基部结鳞茎率高,但所形成的小鳞茎比芽来源的小鳞茎略小。     

贮藏温度对兰州百合生长及鳞茎碳水化合物代谢的影响

以兰州百合为材料,研究了百合种球经不同贮藏温度处理后,植株生长及鳞茎碳水化合物代谢的变化。结果表明:随着贮藏温度的降低,百合各个生育阶段均提前,总生育期缩短,同时百合株高和茎粗的生长加快,叶面积和鳞茎鲜重增加;母鳞茎和新鳞茎淀粉、总可溶性糖含量增加。蔗糖是百合鳞茎内糖分积累和转运的主要形态,其含量变化与总糖变化趋势基本一致。淀粉酶活性变化与淀粉含量变化趋势相反。结合鳞茎鲜重的变化可知,在本试验范围内,2℃贮藏百合种球101d有利于鳞茎发育。     

百合试管鳞茎诱导及膨大技术的研究

以东方百合"Sorbonne"试管苗为材料,研究了蔗糖浓度、大量元素、培养基状态、多效唑和水杨酸浓度对百合试管鳞茎诱导及膨大的影响。结果表明,蔗糖浓度为60 g.L-1时新增鳞茎数最多,鳞茎形成率达75%,蔗糖浓度120g.L-1处理最有利于鳞茎膨大;高浓度的大量元素有利于鳞茎的膨大,而不利于鳞茎的诱导,3MS时形成的鳞茎最大,但鳞茎形成率则下降到14.6%;液体培养基对鳞茎鲜重影响显著;多效唑浓度10mg.L-1处理能促进鳞茎的诱导和膨大;水杨酸处理则能显著提高试管鳞茎的数量。     

百合鳞片试管结鳞茎的研究

百合为世界著名的切花,但常规的鳞茎分株方法繁殖率低,并容易造成种鳞茎退化.利用组织培养的方法进行快速繁殖,具有去病毒、迅速更新品种等优点,在百合组培苗应用上已有许多成功的报道[1、2].但组培苗在出瓶移栽过程中存活率低,容易重新感染病毒.通过试管内结鳞茎,可以克肥上述缺点[3].然而,试管结鳞茎的报道不多,且培养时间较长、鳞茎直径较小.因此,借鉴其他花卉试管成球经验[4],研究能缩短培养时间和使鳞茎增粗的方法.     

活性炭和多效唑对垂花百合试管鳞茎膨大的影响

[目的]探索活性炭（AC）及多效唑（PP333）的适宜浓度,以提高垂花百合试管苗移栽成活率。[方法]以垂花百合试管苗为外植体,研究不同浓度AC（0.3、0.5、1.0、2.0g/L）及PP333（5、10、20、40mg/L）处理对垂花百合试管鳞茎膨大的影响。[结果]一定浓度范围的AC及PP333对试管鳞茎的膨大有显著作用,随着AC及PP333浓度的升高,试管鳞茎直径及鲜重均呈现先增加后减少趋势,说明AC及PP333的浓度既不宜过高也不宜过低。[结论]AC浓度为0.5mg/L时,试管鳞茎增大效果最显著,鳞茎直径达10.01mm,鳞茎鲜重达403.9mg;PP333浓度为10mg/L时,试管鳞茎增大效果最显著,鳞茎增大2.47倍,鳞茎鲜重达到最大值333.3mg。     

影响百合试管鳞茎增殖因素的研究

以麝香百合 ROCCO品种的试管鳞茎为试材 ,研究低温、植物激素、糖以及培养期间的光照强度等因素对试管鳞茎增殖的影响。结果表明 ,预先使培养材料接受 2 0 d8℃的低温过程 ,采用 MS+0 .5mg·L- 1BA+0 .1 mg·L- 1 NAA的培养基 ,并添加 2 %的糖 ,对试管鳞茎增殖有明显的促进作用。并发现 ,在培养期间于 50 0～ 2 3 0 0 lx的光照强度范围内 ,试管鳞茎的增殖与光照强弱无明显的相关性。     

百合试管小鳞茎高效再生体系的研究

以百合试管鳞茎诱导丛生芽,适宜诱导的培养基为MS+ 2.0 mg/L 6-BA+ 0.1 mg/L NAA+ 30 g/L蔗糖+5500 mg/L琼脂,光照强度1 500 ～2 000 lx.芽长至1～2 cm时,转入鳞茎分化培养基,适宜的鳞茎分化培养基为MS+1.0 mg/L NAA+ 90 g/L蔗糖+300 mg/L活性炭+5500mg/L琼脂,黑暗条件.提高培养基中的糖浓度可以提高百合再生小鳞茎的重量;在培养基中添加活性炭可提高再生小鳞茎形态的正常率.     

CEPA、ABA和Me-JA对百合试管鳞茎形成的影响

研究了不同浓度的乙烯 (CEPA)、脱落酸 (ABA)和茉莉酸甲酯 (Me-JA)对诱导百合试管鳞茎形成和膨大的作用。试验结果表明:CEPA、ABA诱导鳞茎形成的最有效浓度分别为 1. 0×10-3mg/L和 0. 05μmol/L,促进鳞茎膨大的最有效浓度分别为 1. 0×10-4mg/L和 0. 5μmol/L;使用Me-JA(5μmol/L)可以获得较高的鳞茎形成率和质量。     

水杨酸对亚洲百合鳞茎碳水化合物的影响

以亚洲百合“精粹”和“普瑞头”为试材,研究水杨酸浸球处理对百合鳞茎碳水化合物含量的影响。结果表明：5mmol·L^-1水杨酸处理,可以促进百合鳞茎内淀粉、可溶性糖及可溶性蛋白质含量的积累。鳞茎内碳水化合物的积累为鳞茎发育提供物质基础。     

亚洲百合试管鳞茎诱导

为进一步优化百合离体培养条件,以亚洲百合鳞片为外植体,研究不同鳞片部位、不同激素配比对亚洲百合试管鳞茎诱导的影响。结果表明:鳞茎内层下部分化率最高,鳞茎中层下部鳞片污染率低,是亚洲百合适宜选取的外植体材料。6-BA 0.5mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1)鳞片分化率最高为75.00%,鳞片分化数最高的激素配比为6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1),分化数为3.05。在6-BA和NAA配合使用的情况下,6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1)增殖效果最好,增殖数为13.4个。百合试管鳞茎膨大的理想激素浓度配比为MS+6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1)+PP_(333)4.0mg·L~(-1)。     

兰州百合与川百合试管苗结鳞茎研究

以兰州百合与川百合组培苗为材料进行了试管内结鳞茎的诱导研究，结果表明：兰州百合试管内诱导形成鳞茎的最适培养基为1／2MS＋0．5mg／LIBA，平均每株结鳞茎数可达3．1个，鳞茎平均直茎为1．0cm，鳞茎形成部位在试管苗的底部。川百合试管内诱导形成鳞茎的最适培养基为1／2MS＋1．0mg／LIAA，平均每株结鳞茎数为1个，鳞茎平均直茎为0．7cm，鳞茎形成部位在试管苗的顶端。     

百合试管鳞茎诱导技术研究

通过对百合试管鳞茎诱导的系统研究,建立高效稳定的百合鳞茎诱导体系。以百合鳞片为外植体,分析不同因素对百合鳞茎诱导的难易及快慢程度。结果表明,MS,1/2MS,B5和N6作为基本培养基均能诱导形成小鳞茎,但MS较其他3种更适合诱导鳞茎的形成,且数量多。试验还表明,以不同部位鳞片作外植体,其内层鳞片诱导率最高;NAA浓度为0.5 mg·L-1且6-BA 浓度为1.0 mg·L-1时鳞茎诱导率最高,达78%;同时,百合鳞茎诱导率还受培养时间、不同糖源种类和浓度的影响,培养时间越长诱导率越高,添加30 g·L-1蔗糖诱导效果佳。     

盆栽百合鳞茎发育与碳水化合物变化的关系

为深入探讨盆栽百合的鳞茎发育机制,对盆栽百合粉冠军(After eight)和橙色精灵(Tinydina)的鳞茎发育规律及鳞茎不同部位中淀粉、可溶性糖和蔗糖含量进行了研究。结果表明:现蕾后鳞茎中可溶性糖和蔗糖含量迅速下降;盛花后鳞茎干质量和鲜质量同时增加;叶半枯到叶全枯时新鳞茎中淀粉含量迅速上升,两品种增长幅度分别为41.9%和15.6%。因此,盛花期是粉冠军和橙色精灵百合鳞茎膨大的转折点,此时新鳞茎成为主要的"库";盆栽百合鳞茎发育存在后熟期。     

百合试管鳞茎温光互作春化及基质分层移栽技术研究

以东方百合为试验材料,研究不同日照处理对百合试管鳞茎后熟的影响、不同基质对百合试管鳞茎栽培的影响及百合试管鳞茎温光互作与基质分层对移栽效果的影响。结果表明,日照处理较黑暗处理促抽薹效果好,以长日照处理14~17 h/d效果最佳;营养层基质以泥炭土与珍珠岩按3∶1的比例混合最佳,基生根平均根长和种球围径均最大,分别为10.6、7.8 cm;保水层基质以椰丝最佳,茎生根发生率可提高46%以上;低温与长日照互作春化并进行分层基质栽培,索蚌和西伯利亚百合的抽薹率均高于85%、种球围径均提高71%以上。     

影响百合试管鳞茎诱导及膨大的几种因素

调查光照强度、培养基中蔗糖浓度及BA与NAA浓度配比对“Casa Blanca”、“Mona”、“Hinomoto”百合鳞茎形成和生长的影响，结果表明：1600 Lux光照强度有利于“Casa Blanca”百合鳞茎的诱导，而光照强度不影响“Mona”百合鳞茎的形成，“Hinomoto”在1600～4800Lux光照条件下鳞茎数显著多于黑暗条件；3种百合在蔗糖浓度为90g／L的MS培养基中鳞茎的形成和增重效果好；培养基中只含0．3mg／LNAA和BA／NAA配比为1．0／0．3mg／L时，利于“Casa Blanca”鳞茎的形成和膨大，而“Mona”和“Hinomoto”百合分别在不加植物生长调节剂和含有0．3mg／L的NAA培养基中鳞茎诱导和膨大效果显著．     

不同因子对兰州百合组培小鳞茎诱导及膨大的影响研究

为了缩短兰州百合生长周期,提高百合品质,以兰州百合组培小鳞茎为材料,研究了大量元素、NAA、6-BA、培养基状态、蔗糖、2,4-D等单一因素对百合试管鳞茎形成和膨大的影响。结果表明,高浓度的大量元素有利于鳞茎的膨大,而不利于鳞茎的诱导;大量元素浓度为2MS时鳞茎平均直径最大,但新增鳞茎数下降到4.56个;NAA浓度为0.2 mg/L时新增鳞茎数最多且鳞茎平均直径最大;6-BA浓度为0.1 mg/L时最有利于鳞茎的形成和膨大,新增鳞茎数5.25个,鳞茎平均直径10.642 mm;固体培养基对鳞茎的形成效果明显,而半固体更有利于鳞茎的膨大;蔗糖浓度为90 g/L时新增鳞茎数最多,120 g/L时鳞茎平均直径最大;2,4-D浓度0.02 mg/L处理对鳞茎的形成和膨大效果更好。     

百合鳞茎的形成及成熟阶段体内干物质的变化

百合是一种综合利用价值较高的经济作物,既可食用,又能入药,还具有观赏性。文章较详细地阐述了百合鳞茎的形成及成熟阶段由环境和内因引起的干物质的变化,并说明了百合鳞茎成熟阶段的变化主要体现在糖和淀粉的变化上。为百合的种植提供了理论基础。     

浅淡影响百合鳞茎生长发育的环境因素

百合是深受世界人民喜爱的球根花卉,在花卉产业中占有重要的地位。百合鳞茎的生长发育直接影响百合的品质。文章阐述了百合鳞茎生长发育的特点,并对影响百合鳞茎生长发育的环境因素进行了总结,以期为百合的栽培生产提供理论参考。