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大花蕙兰的快速繁殖 总被引:3,自引:0,他引:3
采用大花蕙兰的试管苗和原球茎作材料.以MS培养基或1/2MS为基本培养基,比较不同浓度的BA对大花蕙兰试管苗和原球茎增殖的影响,以及不同浓度的NAA对大花蕙兰试管苗生根的影响.试验结果表明:大花蕙兰原球茎增殖与分化的最佳培养基为(1/2MS+NAA0.2mg/L+BA1.0 mg/L),原球茎增殖率达363.16%,芽分化率达到68.42%;其试管苗增殖的最佳培养基为(MS+NAA0.2mg/L+香蕉汁100g/L+BA0.5mg/L),芽增殖率达到91.67%;大花蕙兰试管苗生根的最佳培养基为(1/2MS+NAA0.5mg/L),平均每株生根数为2.60条. 相似文献
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中国兰花-墨兰微体快繁技术研究 总被引:8,自引:0,他引:8
利用墨兰新芽进行离体培养,研究了添加在培养基中不同激素组成、浓度、培养条件等因素对原球茎的形成、萌芽、生根、移栽的影响.结果表明:适于墨兰原球茎形成的培养基为MS BA1.2 mg/L NAA0.02 mg/L 蔗糖30 g/L 琼脂7 g/L 活性炭2 g/L;适于萌芽和生根的培养基为MS BA1.0 mg/L NAA0.5 mg/L 蔗糖30 g/L 琼脂7 g/L 活性炭2g/L. 相似文献
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连香树再生体系的建立 总被引:3,自引:0,他引:3
对连香树进行无菌苗萌发和植株再生进行了研究.结果表明:以5~6月为最适取材季节;最佳外植体为当年生枝条顶芽下第3~4腋芽;腋芽诱导的适宜培养基为MS+BA1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L;适宜无菌播种的培养基为1/2MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;适宜增殖培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L;适宜诱导愈伤的培养基为MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L;诱导分化的适宜培养基为MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;生根培养基为1/2MS+NAA 0.5 mg/L. 相似文献
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本试验以MS作为基本培养基,添加不同种类、不同浓度的生长调节剂,寻求适宜于北美花楸茎段各组织培养阶段的培养基。研究结果表明:在初代培养阶段,其适宜的诱导培养基为MS+BA1.5+NAA1.0;继代增殖阶段,以MS+BA1.0+NAA0.5为培养基效果较好;生根阶段,最适宜的培养基为1/2MS+NAA0.1+活性炭4g/l。 相似文献
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以花梗腋芽为外植体,筛选出宽叶红门兰组织培养育苗的适宜培养基配方。结果表明:宽叶红门兰最佳诱导培养基MS+BA 2.0 mg/L,增殖培养基MS+BA 1.5 mg/L+NAA 0.3mg/L,生根培养基1/2MS+BA 0.1 mg/L+NAA 1.0 mg/L。 相似文献
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欧李绿枝组织培养与快速繁殖研究 总被引:1,自引:0,他引:1
以钙果三号嫩茎为外植体、MS为基本培养基,初步建立了欧李试管苗的快速繁殖体系.结果表明,诱导嫩茎分化生长较适宜的培养基为MS BA1.0 mg/L IAA1.0 mg/L;MS培养基较B5、改良White培养基更有利于试管苗的嫩茎增殖,试管苗增殖的适宜的蔗糖浓度30g/L~40 g/L;培养基中BA和NAA浓度,以及pH值对欧李组培苗的增殖系数影响较大,3因素的影响次序为BA>pH值>NAA,最佳增殖培养基为BA0.2 mg/L,NAA0.05 mg/L,pH值6.2;最佳壮苗培养基MS NAA0.07 mg/L;最佳生根培养基为1/2MS NAA0.4 mg/L. 相似文献
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以文心兰试管组织为材料,对适合原球茎、芽苗增殖、壮苗生根的培养基及其生长过程中部分生理生化指标进行了初步研究。结果表明:原球茎最佳增殖培养基为MS+1.0mg/L6-BA+0.4mg/L NAA+1.0g/L活性炭,不定芽最佳增殖培养基为MS+2.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA+1.0g/L活性炭,壮苗最佳培养基为MS+0.5mg/L 6-BA+1.0mg/L 2,4-D+1.0g/L活性炭,最佳生根培养基为1/2MS+0.5mg/L NAA+1.0g/L水解酪蛋白。生理测定结果表明,同一种材料由于转接前的培养基不同或不同的继代次数其超氧化物歧化酶(SOD)活性、过氧化物酶(POD)活性存在差异,分化苗转接前NAA为0.1mg/L的SOD和POD活性高于NAA为0.5mg/L,继代次数增加后,其活性会增强,原球茎转接前6-BA为0.5mg/L的活性比2.0mg/L的活性高,同工酶谱也证明了这一点。表明原球茎增殖6-BA 2.0mg/L好于0.5mg/L,分化苗的增殖NAA 0.5mg/L好于0.1mg/L。 相似文献
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虎头兰的组织培养与快速繁殖的研究 总被引:1,自引:0,他引:1
以虎头兰茎尖、茎段和叶为外植体,结果表明:适宜的原球茎诱导培养基:KC十5rag/LBA+0.5(或1.0)mg/LNAA+0.5%~1%蔗糖i增殖培养基:KC+5mg/LBA+0.1(或0.5)mg/LNAA+0.2%蛋白胨;分化及育苗培养基:KC+0.1mg/LNAA+10%香蕉匀汗+0.1%活性炭。BA在原球茎的产生、增殖分化中起着主导作用。 相似文献
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用植物组织培养方法建立紫秆海芋快繁体系,结果表明:紫秆海芋外植体诱导成活最好的部位是芽,外植体诱导愈伤组织最佳培养配方是:MS+BA 1.5 mg/L+NAA 1.5 mg/L+碳粉3 g/L,诱导成活率高达100%,并且无污染;愈伤组织诱导成苗的最佳配方是:MS+TDZ 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L,诱导成苗率为100%;继代增殖的最佳配方是:MS+BA 1.5 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+琼脂5.8 g/L,增殖率410%,并且植株长势良好;生根培养的最佳配方是:MS+BA 0.2 mg/L+NAA 1.0 mg/L+IBA 1.0 mg/L,并且平均根数、平均根长、平均根粗3个数值较理想。 相似文献
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地生兰组培快繁技术研究 总被引:2,自引:0,他引:2
利用地生兰蒴果生产种子苗及切取优良母株的侧芽进行茎尖诱导繁殖,筛选出适合云南几种地生兰种子生长和茎尖培育及分生苗生长的培养基配方和组培快繁技术.适合种子发芽培养基为1/2 MS NAA 0.3 mg/L IBA 3.0 mg/L 活性炭(AC)2 g/L 1 g/L兰花培养液(泰国购入);茎尖培养基配方为1/2 MS NAA 0.4 mg/L 6-BA 3.0 mg/L 活性炭(AC)2 g/L 新鲜椰子汁(CM)250 mL/L 1%葡萄糖 微量维生素C,平均诱导原球茎个数3.9/个;丛生芽的诱导1/2 MS NAA 0.4 mg/L 6-BA 4.0 mg/L AC 2 g/L;丛生芽生根1/2 MS NAA 0.2 mg/L AC 2 g/L. 相似文献
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为建立大花蕙兰丛生芽快繁体系,以大花蕙兰无菌苗假鳞茎为材料,用MS为基本培养基,进行6-BA、NAA、蔗糖和琼脂等多个正交试验进行优化筛选。结果表明:在MS+6-BA 2.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖18 g/L+琼脂10 g/L+活性炭1.5 g/L的培养基上诱导出来的丛生芽效果最好,诱导率高达80.52%;在MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.4 mg/L+蔗糖25 g/L+琼脂10 g/L+活性炭1.5 g/L培养基上丛生芽增殖效果最好,增殖倍数为5.01;在MS+NAA 1.0 mg/L+蔗糖10 g/L+琼脂10 g/L+活性炭2 g/L+香蕉泥100 g/L的培养基上,培养温度为28℃时,试管苗的生根最佳。 相似文献
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以引进的意大利多元化砧木品种Penta的茎段为外植体,进行了快速繁殖研究.结果表明:合适的启动培养基为MS BA 1.0mg/L IBA 0.3 mg/L;合适的增殖培养基为Ms 6BA 1.0 rng/L IBA 0.3 mg/L LAA 0.3 mg/L NAA 0.2 mg/L;合适的生根培养基为1/2 MS(大) IBA 1.0 mg/L;移栽以3条根以上的试管苗在蛭石:土为5:3的基质中移栽成活率最高. 相似文献
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以一品红带芽茎段、叶片为外植体,研究了不同激素浓度配比的MS培养基对愈伤组织、芽的分化及增殖和试管苗生根的不同效应。结果表明:最佳愈伤组织诱导培养基为MS+BA0.2mg/L+NAA 0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂7.5g/L(pH 5.6),诱导率达到92.5%;芽的分化最佳培养基为MS+BA 2.0mg/L+NAA 0.2mg/L+蔗糖30g/L+琼脂7.5g/L,不定芽的诱导率达到83.3%;芽的增殖培养基为MS+BA 1.0mg/L+NAA 0.2mg/L+蔗糖30g/L+琼脂5g/L,增殖系数为10.8;而最佳生根培养基为1/2MS+BA 0.2mg/L+NAA 0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂7.5g/L,每芽生根数平均为3.5条。该研究结果为一品红组培苗的工厂化生产提供了可靠的技术指标。 相似文献
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花椰菜雄性不育系组培快繁及无糖培养技术 总被引:2,自引:0,他引:2
以花椰菜雄性不育亲本的花球为外植体,进行组培快繁及无糖生产技术的研究。结果表明:在MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L的培养基上诱导,25 d时不定芽的分化率达到96%,继代增殖在MS+BA 0.6 mg/L+NAA 0.1 mg/L的培养基效果最好,增殖率可达4.25倍。无糖组织培养的培养基为MS无机成分+NAA 0.1,光照4 000 lx,CO2浓度1 000 mL/L,11 d可大量生根。通过上述方法,1个花球,在4个月可生产上万株组培苗,是一种高效快速的方法。 相似文献