梧州市猪繁殖与呼吸综合征血清学调查及病原核酸检测分析

梧州市是泛珠三角与泛北部湾经济圈交汇点和西江经济带龙头城市,为粤港澳提供大量的肉类产品,生猪产业具有非常巨大的发展空间。近年来,随着一批原种猪场的建设投产,梧州市养猪业发展迅速。由于养猪规模的扩大,猪群疫病防控显得非常重要,但当地一直缺乏猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）系统性监测和流行病学调查资料。     

猪繁殖与呼吸综合征疫情与猪繁殖与呼吸综合征病毒基因型的相关性研究

本试验在暴发猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)的广东某猪场进行,猪群暴发PRRS后立即封群。为研究猪场PRRS疫情和PRRSV基因型之间的相关性,在母猪饲料中全群添加抑制PRRS的泰万菌素100 mg/kg~200 mg/kg,持续90 d。统计猪场PRRS暴发到平稳期间的临床数据,并用RT-PCR检测的方法检测分娩母猪血清、脐带血、弱残仔猪和保育死淘猪病料。结果显示,猪群PRRS暴发时,存在PRRSV经典毒、高致病性野毒和高致病性疫苗毒3种毒株亚型;猪群PRRS平稳时,猪群只检测到PRRSV疫苗毒株1种亚型。表明猪群感染PRRSV类型越单一,猪群PRRS越平稳。     

猪繁殖与呼吸综合征的ELISA抗体检测结果分析与应用

本研究应用ELISA方法共检测25个猪场26个猪群507份血清的PRRS抗体水平,应用统计学方法分析各猪群的检测数据,结合猪群临床表现和病原污染情况的流行病学调查结果,可将猪群分为无PRRSV污染,临床健康;PRRS病毒污染,临床稳定;PRRS病毒污染,临床发病且控制困难等3种流行模式,并提出了应用猪群PRRS ELISA检测值标准差、个体检测极值及盒须图(Box-and-Whisker Plot)进行分类的具体指标和PRRS分类控制的建议。     

吉林地区规模化猪场不同猪群繁殖与呼吸综合征的血清学调查

本试验应用ELISA法对吉林地区8个PRRS未免疫猪场和9个PRRS免疫猪场的后备母猪、生产母猪和5～10周龄的断奶仔猪三个猪群进行了PRRSV抗体检测。结果表明:吉林地区8个PRRS未免疫猪场均受到PRRSV感染,猪场抗体阳性率为100%,猪群抗体阳性率在50%～75%之间,平均阳性率为62.26%;吉林地区9个PRRS免疫猪场猪群PRRSV抗体阳性率在70%～100%之间,平均阳性率为87.78%。PRRS未免疫猪场与PRRS免疫猪场猪群抗体平均阳性率相比,差异极显著(P<0.01)。     

吉林地区规模化猪场猪繁殖与呼吸综合征的血清学检测

本试验应用ELISA法对吉林地区8个猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)未免疫猪场和9个PRRS免疫猪场的后备母猪、生产母猪和5~10周龄的断奶仔猪3个猪群进行了猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)抗体检测,结果表明:吉林地区8个PRRS未免疫猪场均受有PRRSV感染,猪场抗体阳性率为100%,猪群抗体阳性率在50%~75%之间,平均阳性率为62.26%;吉林地区9个PRRS免疫猪场猪群PRRSV抗体阳性率在70%~100.00%之间,平均阳性率为87.78%。PRRS未免疫猪场与PRRS免疫猪场猪群抗体平均阳性率相比,差异极显著(P<0.01)。     

规模化猪场PRRSV不同感染状态下防控实践探讨

本文针对猪群中猪繁殖与呼吸综合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)不同感染状态,通过不同防控措施(接种疫苗、药物保健和生产组织优化),探讨了猪繁殖与呼吸综合征(porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)的防控经验。试验结果：PRRSV阳性不稳定猪群,接种PRRS灭活疫苗连续2次,1个月可实现猪群抗原阴性,阴性维持时间大约100d;PRRSV阴性猪群采用PRRS弱毒活疫苗半数低剂量免疫,排毒时间约28 d,免疫猪群100%转阳,而未免疫猪转阳率为30%～40%。     

猪繁殖与呼吸综合征的血清学调查与病原核酸检测

为了解贵州省猪群中猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)的流行情况,并对临床发生的疑似PRRS疫情作出确定性诊断,本试验采用PRRS酶联免疫诊断试剂盒对非免疫猪群和免疫猪群的1 254头份血清样本进行抗体检测,采用RT-PCR方法对疑似病例样本进行鉴定。结果显示,非免疫健康猪群PRRS抗体阳性率为5.90%;发病猪群阳性率为29.16%;免疫猪群抗体阳性率为59.45%;利用针对PRRSV GP5基因的引物对疑似病例样本进行了PCR扩增,将所得序列与GenBank收录的7株PRRSV GP5基因的核苷酸及氨基酸序列比较分析,结果与欧洲株(LV)的同源性分别为50.0%和46.7%,与美洲株(VR2332)的同源性分别为88.7%和89.9%,而与国内其它毒株的同源性为93.9%~99.1%和91.5%~99.5%;系统进化分析显示贵州分离株均为美洲型。PRRSV Nsp2变异毒株特异性PCR诊断试剂盒鉴定结果显示,疑似病例样本均扩增出特异性条带,表明流行在贵州省猪群中的PRRSV毒株均为变异毒株。     

河北省部分猪场送检样品的猪蓝耳病抗体水平分析

为了解河北省规模猪场猪蓝耳病(PRRS)感染及免疫情况,选取2016—2017年河北省7个地区不同规模猪场送检的1 182份血样进行PRRS EILSA抗体检测,并对结果进行汇总分析。结果显示:7个地区不同规模猪场送检血样的阳性率均在80%以上,尤其是大型规模化猪场,抗体阳性率更高;地区间阳性率差异不大,均在75%~92%之间;散养和断奶仔猪群阳性率相对偏低。结果表明,河北省规模猪场的PRRS免疫效果较好;散养猪群和断奶仔猪群是发生PRRS的高风险猪群。结果提示,规范科学的PRRS免疫程序可以获得较好的免疫效果;应注重对散养和断奶仔猪群的免疫,根据抗体检测情况合理采取免疫措施。     

2007国际猪繁殖呼吸综合征(PRRS)座谈会——PRRS及其相关病的预防和控制措施专题论文集(摘要)

猪群流动在PRRSV区域传播上所起作用的网络分析 猪群的信息（位置和疾病状况）对有效地消灭地方性疾病是非常必要的。然而,猪群的状况是动态的,猪只经常在各猪场间流动,尤其是在多点式生产系统中猪只的流动更频繁。本研究的目的是采用群体网络分析方法（social network analysis）,描述和分析猪的流动模式,评估猪群流动对某一区域PRRS传播的潜在影响。本研究以参加美国Rice县和Steven县PRRS预防计划的猪场为调查对象,收集这些猪场的猪群流动信息。     

蓝耳病稳定和不稳定猪群免疫应答的比较评价

正PRRS流行的国家认为该疾病的成功控制表现为该病原体在猪场是稳定,比如:在哺育期猪群中没有PRRS临床症状且在断奶年龄猪中没有病毒血症的发生。这项工作的目的是比较PRRS稳定和不稳定猪群体液免疫和细胞介导免疫的特征和时间过程。猪繁殖与呼吸综合征(蓝耳病,PRRS)是一种宿主与病毒关系难以捉摸的疾病,其发生的影响因素有病毒致病性、猪品种易感性和表型、微生物感染压力以及环境条件。PRRS流行的国家认为该疾病的成     

专家咨询

1、PRRS阴性或阳性猪场,在引进种猪时应注意哪些？ 多年的PRRS流行规律表明,猪群暴发PRRS多数与猪场引进种猪有关,一种情况是阴性猪场引进PRRSV携带猪引发蓝耳病,更常见的是阳性猪场引进PRRSV阴性猪引发蓝耳病。因此,如何将种猪引入猪群在控制PRRS发生上是关键环节。     

第九章 PRRS的预防、控制和消灭原则

彻底了解PRRS病毒的持续存在性和传播方式是PRRS根除或控制方案成功的关键。在许多慢性感染猪场中,PRRS病毒不受控制地在繁育群中循环传播。使繁育群进入PRRS稳定状态是控制该感染的第一步。稳定的繁育群是指那些无明显证据能证明母猪与母猪之间或母猪与仔猪之间进行病毒传播的种猪群。不稳定繁育群通常是由于引进未充分适应猪场条件或已受到感染的后备母猪而导致的。据认为,繁育群在60～180 d内停止引进新种猪,能够为繁育猪群的PRRS稳定创造充分长的时间。在此期间,所有阴性猪都应该有机会成为感染者,随后形成一群可以忽略原有PRRS病毒流行性的免疫猪群。部分清群、全进全出制的生产流程以及接种PRRS疫苗都有助于在猪场内建立稳定的猪群。特定猪场或特定的养猪生产系统已经有专门的根除方案,并已经成功地清除了PRRS病毒。根除方案采用了多项技术,但所有技术都从建立稳定的繁育群开始。     

猪繁殖——呼吸综合症

猪繁殖—呼吸综合症 ( PRRS)是近年来流行较广的重要猪病之一。 1992年我国农业部制订公布的《进境动物一、二类传染病、寄生虫病名录》中 ,该病列为二类传染病。正式定名为“猪生殖—呼吸系统综合症 (蓝耳病 ) ,PRRS”。1　病原1.1　 PRRS病毒的起源　目前有三种假说 :1猪非致病性病毒的变异 ;2野生动物病毒侵害猪群 ;3地方猪群带有非致病性病毒侵害高产新品种猪群。1.2　病毒的形态和物理特性　 PRRS病毒是一种有囊膜的单链小 RNA病毒 ,属动脉炎病毒群 ,披膜病毒科。病毒粒子为球状颗粒 ,直径为 45～ 5 5 nm,核衣壳直径为 30～35 …     

猪呼吸道疾病综合症的控制(Ⅲ)

在大多数的养猪生产国家都有猪繁殖和呼吸综合症(Porcinereproductiveandrespiratorysyn-drome,PRRS)的报道。在生产现场,其临床症状变化的范围很广,该病在养猪行业中的重要性和经济影响越来越大。当此病第1次爆发时,繁殖和围产期的损失非常明显,然后成为以呼吸问题为主的地方流行性疾病。在其成为地方流行性疾病后,PRRS病毒将与猪肺炎支原体以及猪伪狂犬、流感病毒一道成为断奶后猪呼吸疾病综合症(PRDC)的重要病原因素。很多因素使得预防和控制PRRS变得困难,亚临床感染的出现,感染猪群中病毒的持续存在,易感种猪群的不断引进等均是…     

如何利用唾液对猪蓝耳病进行监测与驯化

<正>到目前为止,猪繁殖与呼吸综合征(又称猪蓝耳病,PRRS)仍是全球养猪业中的一种头号疾病,严重阻碍仔猪和生长育肥猪的生长性能,同时严重影响种猪群繁殖性能的稳定性,给养猪场造成巨大的经济损失。虽然大量研究已对猪蓝耳病(PRRS)的流行特定和发病机理有了一定的认识,但是对于全球的众多养猪场来说,要想成功的控制猪蓝耳病(PRRS)仍然面临着严峻的挑战。通常来说,猪蓝耳病(PRRS)的有效控制需要把完善的     

猪蓝耳病及其综合防控措施

猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）俗称猪蓝耳病,是由PRRS病毒（PRRSV）引起的传染病,分为欧洲型和北美型,是目前养猪业最重要的猪病之一。PRRS每年给美国养猪业造成的损失为6.64亿美元（约40亿人民币）,中国的养猪量数倍于美国,因此该病在中国造成的损失应该远大于美国。该病对母猪群的影响主要是降低分娩率,降低产仔数和窝均断奶仔猪数。我国的PRRS以北美型为主,感染后会引起母猪群的繁殖障碍,仔猪、生长育肥猪群的呼吸道问题。2006年我国暴发了由变异株PRRSV引起的高致病性PRRS,该病在全国范围内流行,重创了中国养猪业^[1]。2013年以后,类NADC-30毒株开始在国内逐渐扩散传播,各种重组毒株也不断出现,PRRS的防控变得更加复杂^[2-3]。PRRSV容易变异、毒株多样、感染时间长、防控难度较大。猪群感染PRRS后会造成免疫抑制,易出现各种混合感染和继发感染,这增加防控的难度。文章回顾了PRRS的临床症状、病理变化、病原特性、传播途径、诊断方法与防控措施。在PRRS的防控上,猪场需要良好的生物安全、科学的疫苗免疫与正确的药物方案。文章还探讨了在发生了PRRS感染的猪场,使用替米考星进行控制的效果。     

第五章PRRS病毒——猪在感染PRRS病毒后会出现什么情况

○猪能通过鼻、肌肉、口腔和阴道等途径感染PRRS病毒。○感染后,猪能持续数周甚至长达数月低水平地散毒。在某些情况下,虽然PRRS病毒能在猪群中持续存在数月,但猪群中存在长期带毒者的情况仍未得到证实。○猪持续感染PRRS病毒是控制和根除PRRS等努力终告失败的最主要原因。○在持续感染的猪群中,PRRS病毒最有可能存在于淋巴组织(扁桃体、淋巴结)中。○持续感染的程度取决于很多因素,包括:猪感染时的日龄、猪先天免疫力和特定PRRS病毒毒株的特性。○PRRS病毒在自然环境下能保持活性的时间似乎不超过数天。温度、湿度、有机物质的存在以及所处环境的pH值都会影响病毒保持感染力的时间。○常规的清洗和消毒措施应该能有效控制环境中的PRRS病毒。     

蓝耳病在美国猪群的临床表现及其继发病控制

我们最近对美国19家、年出栏超过15万头猪场进行了一项调查,结果显示,蓝耳病（PRRS）对于繁殖猪群和保育猪群是第一重要的疾病,对育肥猪群是第二重要的疾病。PRRS对繁殖猪群的损失主要是流产率和胎产活仔数,而对断奶后仔猪的损失主要是平均目增重、死亡率和饲料转化率。PRRS对美国养猪业造成了每年5．6亿美元的巨大损失。为什么20多年来PRRS还是对养猪威胁最大的疾病7目前仍没有答案。     

蓝耳病在美国猪群的临床表现及其继发病控制

我们最近对美国19家、年出栏超过15万头猪场进行了一项调查,结果显示,蓝耳病（PRRS）对于繁殖猪群和保育猪群是第一重要的疾病,对育肥猪群是第二重要的疾病。PRRS对繁殖猪群的损失主要是流产率和胎产活仔数,而对断奶后仔猪的损失主要是平均目增重、死亡率和饲料转化率。PRRS对美国养猪业造成了每年5．6亿美元的巨大损失。为什么20多年来PRRS还是对养猪威胁最大的疾病7目前仍没有答案。     

我国部分省份不同阶段猪群CSF、PRRS及PR-GE抗体检测分析

为了解我国不同生长阶段猪群猪瘟(classical swine fever, CSF)、猪繁殖与呼吸综合征(porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS)及猪伪狂犬病(pseudorabies, PR)的免疫情况,从而为制定合理有效的免疫程序提供理论依据,进而更好地防疫此3种疫病,本试验应用ELISA方法对2018年收集的14 580份猪血清样本进行了CSF、PRRS及PR-GE抗体检测。结果显示,2018年,我国猪群CSF、PRRS、PR-GE抗体阳性率分别为78.84%,78.23%和27.47%;不同阶段猪群同种疫病抗体阳性率差异较大,其中,CSF抗体阳性率公猪最高(91.67%)、保育猪最低(57.00%),PRRS抗体阳性率育肥猪最高(91.31%)、保育猪最低(50.02%),PR-GE抗体阳性率公猪最高(33.98%)、后备母猪最低(19.17%);不同阶段猪群同种抗体离散度也存在较大差异。