猪细小病毒X株在不同细胞上增殖效果比较

为选择猪细小病毒X株增殖的细胞系,对猪细小病毒X株在ST、PK-15、CEF、Vero细胞系上增殖情况进行比较,观察病变时间和病变情况,并分别测定其TCID50和血凝价。结果表明,猪细小病毒X株在这4种细胞上都能产生细胞病变,在ST、PK-15、CEF、Vero细胞上最先开始出现病变的时间分别为24、36、72和48 h,测其在以上4种细胞上的TCID50分别为10-6.4/0.1 mL、10-5.8/0.1 mL、10-2.1/0.1 mL和10-3.2/0.1 mL,HA分别为1 210、1 28、1 23、1 25,因此,建议选用ST细胞作为猪细小病毒X株的增殖细胞系。     

犬细小病毒病的临床诊断和治疗

犬细小病毒病为犬常见的一种烈性传染病，宠物犬尤其多发。该病以春季（2-4月）和秋季（10-12月）多发。其中以发病前3天就诊治疗的治愈率较高。病毒对外界理化因素抵抗力非常强。粪便中的犬细小病毒可存活数月至数百年，室温下可存活90天。在pH值3-9和56℃条件下至少能稳定1小时。紫外线、福尔马林、β-丙内酯、次氨酸钠、氨水和氧化剂能使之灭活，但犬细小病毒对乙醚、氯仿、醇类和去氧胆酸盐有抵抗力。     

犬细小病毒病的诊断与治疗

<正>犬细小病毒是由细小病毒(PV)引起的一种急性传染病,以剧烈呕吐、腹泻、白细胞显著减少,心力衰竭和小肠上皮变性坏死为特点,临床上病犬多以出血性肠炎和非化脓性心肌炎为其主要特征,发病率达50%～100%,死亡率10%～50%,对幼犬危害更大。     

犬细小病毒的防治体会

犬细小病毒病又称犬传染性出血性肠炎,是由犬细小病毒引起犬的一种急性传染病。临诊表现为肠炎型和心肌炎型,肠炎型以剧烈呕吐、血水样腹泻、脱水、白细胞显著减少、小肠出血性坏死性肠炎为特征;心肌炎型以急性非化脓性心肌炎为特征。幼犬多发,死亡率为10-50%,是犬的重要传染病之一。     

Alloferon2体外抗犬细小病毒作用研究

为试验Alloferon2是否具有抗犬细小病毒作用并开发出一种可以用于防治犬细小病毒病的新药物,将不同剂量的Alloferon2添加于病毒感染前、病毒感染时、病毒感染后的细胞培养液进行体外抗犬细小病毒试验.结果显示,FK81细胞病毒接种CPV后2d,细胞开始变圆,胞质内颗粒增多;4～6 d病变细胞呈葡萄串状脱落,在80％细胞产生病变时收毒,TCID50为10-6.2～ 10-6.1/mL.对照组细胞上清为血凝反应阴性,接种病毒细胞上清的血凝价为212.对照组的8孔细胞生长正常,接种病毒的8孔细胞全部产生病变.250 μg/mL和25 μg/mL2个浓度的抗病毒作用较强,2.5 μg/mL浓度的抗病毒作用较弱;病毒感染前或同时加入多肽的抗病毒作用较好,而病毒感染后加入多肽的抗病毒效果较弱.结果表明,Alloferon2可以用于犬细小病毒病的防治.     

犬细小病毒肠炎最佳免疫程序的探讨

以猫源细小病毒肠炎免疫犬。在试验设计的４个免疫程序中，以产仔前一个月对母犬免疫，所生的仔犬６０日龄首次免疫，结果７５日龄加强免疫，以后每间隔６个月免疫一次效果最佳，该免疫程序对犬的保护率为１００％。结果表明，犬细小病毒肠炎的保护率与适宜的免疫程序有直接关系。     

犬细小病毒

犬细小病毒感染是由犬细小病毒引起的犬的一种急性传染病．以出血性肠炎或非化脓性心肌炎为主要临床特征。多发生于幼犬．病死率10％～50％。本病于1978年同时在澳大利亚（Kelley氏）和加拿大（Thomson氏等）证实以来,已在美国、英国、德国、法国、意大利、俄罗斯和日本等国相继发现。我国于1982年证实此病以后．在华北、华东和西南等地区的警犬和良种犬中陆续发生和蔓延。     

水禽细小病毒选择压力与基因重组分析

通过对临床水禽细小病毒进行PCR检测、基因组测序和进化分析，确定分离毒株的基因型。进一步通过Paml、RDP软件对分离株的基因组进行选择压力和基因重组分析，确定分离株的演化趋势。结果表明，分离的3株水禽细小病毒均属于新型鹅细小病毒，分别命名为YiCH株、AnQ株和XiY株，基因组长度分别为5 056、5 056、5 068 bp。3个分离株与新型鹅细小病毒M15株亲源关系最近，其中XiY株两端ITR区域191～196位、4 878～4 883位均有6个碱基插入。对分离株进行选择压力分析，分离株VP蛋白检测出3个正选择位点，分别为116Q、261A、485S。重组分析显示，分离株YiCH株和AnQ株都存在重组现象，以XiY株为主要亲本株、GPV 06-0329株为次要亲本株重组而成。     

PPV_(S-1)A株保存期研究及免疫原性测定

为了确保疫苗质量,保证生产用种毒的稳定性,将猪细小病毒PPVS-1A株的干毒和湿毒分别在-20℃和-70℃保存,每12个月取样一次,分别进行病毒含量测定、红细胞凝集价测定、乳鼠安全试验和豚鼠抗体检测。结果病毒含量均大于107.25;红细胞凝集价为1∶1024;乳鼠接种未见不良反应;豚鼠抗体检测HI均不低于1∶32。确定猪细小病毒PPVS-1A株湿毒在-20℃的保存期为24个月,在-70℃的保存期为48个月;猪细小病毒PPVS-1A株冻干毒在-20℃的保存期为36个月,在-70℃的保存期为60个月。猪细小病毒PPVS-1A株毒保存期长,具有良好的安全性和免疫效力。     

貉细小病毒RDPV-JL3株的分离鉴定及VP2基因序列分析

本试验从吉林省某养殖场疑似患貉细小病毒的貉肠道组织中成功分离出1株貉细小病毒(Raccoon dog parvovirus,RDPV),将其命名为RDPV-JL3株.对其VP2基因进行克隆测序和序列分析,结果表明,VP2核苷酸基因序列与RDPV HeB10-3 (KJ194463)株相似性为100％,属于CPV-2亚型...     

猪细小病毒HNLY201301株遗传特性及其对小鼠的致病性研究

【目的】探究猪细小病毒HNLY201301株的遗传特性及其对小鼠的致病性。【方法】对HNLY201301株进行遗传学分析、生物学分析以及小鼠攻毒试验。【结果】HNLY201301株属于经典猪细小病毒1型（PPV1），具有强毒株的遗传特性。该毒株可在猪肾（PK-15）细胞上复制，其滴度最高可达10-8.45TCID50/mL。该毒株的血凝谱广，能凝集小鼠、大鼠、豚鼠、兔、鸡、鸭和猪的红细胞。该毒株可通过静脉注射和阴道灌注感染小鼠，主要引起小鼠子宫损伤。【结论】细小病毒仍在我国猪场间流行，且具有较强致病性，对该病的防控应引起重视。     

犬细小病毒病的分离与鉴定

犬细小病毒是细小病毒科细小病毒属成员,属单链小DNA病毒,与猫细小病毒和水貂肠炎病毒关系密切。感染CPV发病犬以呕吐、     

多重PCR快速诊断猪伪狂犬病毒、猪圆环病毒2型与猪细小病毒方法的建立

利用PrimerPremier5．0及DNAstar软件对猪伪狂犬病毒gB基因、猪圆环病毒2型ORF2基因和猪细小病毒VP2基因的保守区进行引物设计,选出扩增序列为猪伪狂犬病毒（373bp）、猪圆环病毒2型（430bp）和猪细小病毒（495bp）的3对引物．敏感性和特异性试验结果表明,mPCR对3种病毒的核酸检测限量从猪伪狂犬病毒至猪细小病毒分别为1．62×10-6、1．47×10-6和1．28×10-4 ng,对灭菌双蒸水、猪繁殖与呼吸障碍综合征病毒eDNA和猪瘟病毒eDNA的mPCR扩增结果均为阴性．mPCR可作为临床上猪伪狂犬病、猪圆环病毒2型感染和猪细小病毒病的病原学快速诊断方法．     

肠炎型犬细小病毒的分离鉴定及病毒滴度测定

为获得肠炎型犬细小病毒分离株,采集犬细小病毒胶体金初检阳性的3份粪便,采用同步接毒法分别接种猫肾细胞(F81)和犬肾细胞(MDCK)进行分离培养,F81盲传至第2代出现细胞病变,MDCK盲传至第3代出现细胞病变,2种细胞均仅从病料3中分离出1株病毒。采用PCR方法鉴定该分离株为犬细小病毒并命名为CPV3。根据VP2基因核苷酸序列绘制的系统进化树及其推导氨基酸序列的分析,确定CPV3属于CPV-2a亚型。测定CPV3在MDCK中72 h时的组织细胞半数感染量(TCID50),第5代次(CPV-M-5)和第10代次(CPV-M-10)的TCID50数值分别为10-4. 83/0. 1 mL和10-5. 50/0. 1 mL,这为后续测定重组犬干扰素活性试验提供了材料。     

水貂阿留申病PCR完全诊断技术

本研究参考并分析GENBANK中阿留申病毒、肠炎细小病毒的序列及本实验室测序的两种病毒序列，设计并实验筛选出阿留申病毒诊断引物2对和肠炎细小病毒1对；其中阿留申病毒诊断引物ADV537与肠炎细小病毒引物PAR593组成联合诊断引物。由于2种病毒同属细小病毒属，基因某些区段相似，用于2种病毒的鉴别诊断、阿留申病毒与肠炎细小病毒混合感染的诊断。     

复方参芩对防止心肌细胞免受犬细小病毒损伤的保护和抗氧化作用

目的:探讨复方参芩防止心肌细胞免受犬细小病毒损伤的保护和抗氧化作用.方法:培养的乳鼠心肌细胞,加入犬细小病毒液致心肌细胞病毒性氧化损伤,测定乳鼠心肌细胞裂解液中SOD,MDA及用MTT法测定细胞活性,探究复方参芩防止心肌细胞免受犬细小病毒损伤的保护和抗氧化作用.结果:病毒损伤组细胞保护率为70.67％±1.33％,复方参芩高、中、低剂量组细胞保护率分别为83.52％,92.35％,80.72％,与病毒损伤组相比有极显著性差异(p＜0.01);病毒损伤组细胞裂解液中SOD活性降低,MDA质量分数增高,而复方参芩组上述指标有所改善,其中SOD活性升高,MDA降低,与模型组相比差异极显著(p＜0.01).结论:复方参芩可防止心肌细胞免受犬细小病毒损伤,其机理可能与增强细胞抗氧化作用、减少自由基和脂质过氧化导致的细胞损伤有关.     

一例貉源细小病毒病的诊断与防治

山东泰安地区一貉养殖场发生疑似貉细小病毒病例,利用细胞接种、 PCR扩增、间接免疫荧光实验等实验室诊断方法,成功分离鉴定一株貉细小病毒,经TCID50、血凝实验测得该细小病毒具有较强毒力。结果表明,貉细小病毒在泰安地区貉养殖场内持续存在,指导该养殖场进行药物治疗,紧急接种疫苗。针对细小病毒变异性强的特点,需要研制针对性强的疫苗进行免疫接种。     

小鹅瘟地方株的分离鉴定及致病力试验

通过对当地鹅场发生的小鹅瘟疑似病例的病变肝脏进行病毒分离,将具有病变的肝脏加hanks液进行研磨后,低温反复冻融3次,除菌过滤后接种12日龄的鹅胚。收集死亡鹅胚的尿囊液,初步分离出鹅细小病毒,经电镜观察、琼脂扩散试验、血清保护试验鉴定为鹅细小病毒。动物回归试验表明,该病毒的潜伏期为5d,病程为1～3d,病死率达100%,对雏鹅半数致死量(LD50)为0.1mL 10-4.5稀释的病毒液。     

猪博卡病毒的流行特点与检测方法

正博卡病毒为细小病毒亚科的博卡病毒属,细小病毒分为浓病毒亚科和细小病毒科亚科,浓病毒亚科主要感染昆虫,细小病毒科亚科主要感染脊椎动物。细小病毒亚科又分为貂阿留申病毒属、细小病毒属、红病毒属、博卡病毒属和依赖病毒属等。博卡病毒是无囊膜单股线状DNA病     

小鹅瘟的防治技术

<正>小鹅瘟是由鹅细小病毒引起的雏鹅急性或亚急性败血性传染病,主要侵害30天以内的雏鹅,以渗出性肠炎、肝炎、肌肉变性特别是心肌变性为主要特征。病雏鹅的临诊特点是精神委顿、食欲废绝、严重下痢,有时出现神经症状,死亡率高,可达50%~95%。病原是细小病毒,该病毒对外界的抵抗力较强,在-20℃下可存活2年以上,能抵抗56℃的高温3小时。小鹅瘟病毒主要通过病鹅的分泌物、排泄物、种蛋及病鹅饮过的水、饲料、用具、场地等传播。