李离体茎尖的超低温保存

 以简单玻璃化法为基本方法,研究了影响李离体茎尖超低温保存的因子—继代培养时间、低温驯化时间、PVS3处理时间以及化冻后茎尖存活检测;建立了较为简单的李离体茎尖超低温保存技术程序：即选择继代培养120 d的试管材料,经过5 ℃低温驯化21 d,0.7 mol·L^-1蔗糖预培养1 d,PVS3处理100 min,浸入液氮。化冻后茎尖存活率可达60 %以上。     

树莓茎尖玻璃化法超低温保存及植株恢复培养研究

对离体树莓茎尖的玻璃化法超低温保存进行了研究。结果表明,离体树莓茎尖超低温保存程序为在含0.8mol/L蔗糖的固体MS培养基预培养4天,低温驯化21天,再经玻璃化液PVS2处理60分钟后浸入液态氮。保存结束,茎尖在40℃水浴5分钟解冻,存活率达80%,植株再生率达75%。     

马哈利樱桃离体茎尖超低温保存的研究

用玻璃化法超低温保存马哈利樱桃;切取经５℃低温驯化３０d的离体茎尖置于固体培养基 （ＭＳ＋０．７mol/Ｌ蔗糖）预培养２４h,在含１mＬ５０％甘油＋５０％蔗糖的保护液中处理８０min后浸入液氮。２５℃水浴快速化冻２min,然后接种到标准培养基上。２１d后调查,茎尖存活率达８４．６％。     

菊花茎尖玻璃化法超低温保存技术研究

以菊花品种"神马"为试材,采用单因素逐级优化试验设计方法,研究了蔗糖浓度、预培养时间、装载时间、玻璃化处理时间、茎尖大小以及冻存时间对茎尖存活率的影响。结果表明:菊花茎尖玻璃化超低温长期保存最佳处理组合为预培养蔗糖浓度0.25mol/L,预培养时间3d,装载处理温度25℃、40min,玻璃化处理温度0℃、60min,菊花茎尖大小1.5~2.0mm。采用此体系保存菊花茎尖180d后,经卸载及恢复培养,存活率可达71.33%。     

扁桃小滴玻璃化超低温保存研究

【目的】以扁桃休眠茎尖为试材,探讨小滴玻璃化法对扁桃离体超低温保存的影响,为扁桃种质资源的长期保存提供有效途径。【方法】采用小滴玻璃化法,通过正交设计试验和单因素试验对预培养蔗糖浓度、预培养时间、装载时间和PVS2[30%(ω,后同)甘油+15%二甲基亚砜+15%乙二醇+0.4 mol·L~(-1)蔗糖]脱水处理时间这4个因素影响扁桃休眠茎尖超低温保存后成活率的情况进行分析。【结果】预培养时间对休眠茎尖超低温保存后成活率的影响极显著(P<0.01),而预培养蔗糖浓度、装载时间和PVS2处理时间的影响不显著。建立了以‘莎车14号’为代表的扁桃茎尖小滴玻璃化法超低温保存体系,最佳处理方案是:用0.5 mol·L~(-1)预培养蔗糖液处理2 d,装载液处理20 min,PVS2脱水处理120min,放入含新鲜PVS2小滴的铝箔纸上投入液氮24 h后,浸入用40℃温水预热过的洗涤液(1.2 mol·L~(-1)蔗糖的MS)中30 s,然后再将休眠茎尖转入新鲜的洗涤液中洗涤30 min。恢复后接种在MS+0.3 mg·L~(-1)6-BA+0.5 mg·L~(-1)IAA+0.3 mg·L~(-1)GA3培养基上,扁桃成活率达80.44%。运用优化的方案对‘莎车1号’‘莎车11号’和‘莎车18号’3个扁桃品种进行超低温保存,平均成活率分别为87.41%、85.44%和83.02%。【结论】利用小滴玻璃化法可提高扁桃超低温保存成活率,建立了适合扁桃休眠芽超低温保存技术方法,为扁桃种质资源的长期保存提供理论和实践借鉴。     

‘品丽珠’葡萄离体茎尖超低温保存的研究

 研究了包埋干燥法超低温保存‘品丽珠’葡萄离体茎尖的影响因素———芽的位置、干燥时间、预冰冻温度及材料生理状态。选继代培养4 个月以上的侧芽, 蔗糖预培养3 d、干燥5 h , 两步降温和直接在MS 培养基上培养, 存活率达40 %。     

玻璃化法超低温保存柑桔茎尖及植株再生

 采用玻璃化法对柑桔茎尖的离体超低温保存进行了研究。约10 mm 长的柑桔茎尖于含5 %二甲基亚砜(DMSO) 的培养基上预培养3 d , 切取2～2. 5 mm 长的茎尖, 室温下60 %玻璃化溶液2 (PVS2) 装载20～30 min , 然后用PVS2 于0 ℃处理50～60 min , 换入新鲜的PVS2 , 迅速投入液氮中, 24 h 后在40 ℃水浴中迅速化冻, 再用1. 2 mol/L 蔗糖培养基洗涤2次, 接种于含BA 1. 0 mg/L 的MT培养基上, 26 ℃暗培养1 周后转于正常光下培养。枳壳茎尖超低温保存后用氯化三苯基四氮唑(TTC) 法检测, 成活率为100 % , 培养再生率达到90 % ,再生后的苗能正常生根, 与对照没有形态上的变异, 移栽可成活。     

“童子一号”草莓玻璃化法超低温保存技术研究

以玻璃化法进行"童子一号"草莓离体茎尖的超低温保存研究,探讨了低温锻炼时间、预培养时间、预处理时间、PVS2处理时间等对存活率的影响。结果表明:将4℃条件下低温锻炼30d的健壮草莓苗茎尖,接种在固体预培养培养基中预培养4d,预处理30min后,吸出预处理液,加入PVS2,0℃处理80min后,更换新鲜的PVS2,并迅速投入液氮60min后,置于40℃快速化冻1min;室温洗涤3次并取出茎尖,接种到再生培养基恢复培养;成活率最高可达43.00%,且再生植株分化正常。     

马铃薯(Solanum tuberosum L.)茎尖超低温保存的研究

以克新8号为试验材料,通过优化超低温保存马铃薯茎尖中影响成活及再生的几个关键因素,成功建立了基于玻璃化法的马铃薯茎尖超低温保存体系。茎尖在MS+0.3M蔗糖的培养基上预培养1天后,经2M甘油+0.4M蔗糖的加载液室温加载30 min,浸入到PVS2溶液中(00C)处理60 min,将处理后的茎尖转至含有0.05 mg/L GA3的MS后培养基上培养,成活率和再生率达到94.8%和78.1%。并将建立的玻璃化法应用到其它4个品种,平均再生率为65.5%,研究结果可为中国马铃薯种质资源的超低温保存提供技术支持。     

包埋干燥超低温保存苹果离体茎尖

选用继代培养７０ｄ的苹果离体茎尖,在５℃条件下低温驯化３周,经不同浓度蔗糖预培养及藻酸钠包埋后,在无菌空气中干燥脱水４ｈ直接投入液氮,化冻后茎尖存活率达７０％以上。通过选择材料的生理状态可缩短和简化保存过程。     

玻璃化法超低温保存猕猴桃离体茎尖及其植株再生

 以中华猕猴桃矮型种质为离体培养材料, 建立试管无性系, 对其离体茎尖的玻璃化法超低温保存技术进行研究, 探讨猕猴桃种质长期保存的适宜途径。结果表明, 含1～2个叶原基(1.5～2.5 mm) 的茎尖, 在5%二甲基亚砜(DMSO) + 5%蔗糖+MS培养基上预培养4 d后, 于室温下用2 mol/L甘油+ 0.4 mol/L蔗糖预处理30 min, 再在0℃下用玻璃化液(PVS2 ) 脱水处理40 min并迅速投入液氮中, 保存24 h后接种至继代培养基上再培养, 成活率和再生率分别为56.7%和51.6%。再生植株生根后可移栽成活。     

番木瓜茎尖的玻璃化法超低温保存及其植株再生

 研究了番木瓜( Carica papaya L. ) 茎尖玻璃化法超低温保存的一些影响因素。结果表明: 无菌试管苗在MS + BA 0.5 mg/L + NAA 0.1 mg/L + GA₃ 1.0 mg/L 的培养基上生长较好。番木瓜茎尖超低温保存较佳体系是: 3～5 cm的茎尖在含有5 %二甲基亚砜(DMSO) 培养基上预培养3 d , 解剖镜下剥取含1～2 个叶原基的茎尖(1.5～2.5 mm长) , 先在室温下于60 %的玻璃化溶液(PVS2) 中装载40～50 min , 再用PVS2于0 ℃下处理30 min , 换1 次PVS2 溶液后迅速投入液氮。保存24 h 后, 在40 ℃水浴中化冻, 用1.2 mol/L 的蔗糖培养液洗涤两次, 转入继代培养基上再培养, 成活率和再生率分别达53.7 %和52.6 %。再生植株生根后可移栽成活。     

通过玻璃化超低温处理脱除草莓轻型黄边病毒(SMYEV)研究

以草莓品种明宝为材料,取茎尖做初代培养,继代扩繁5次后,取2mm左右的茎尖,利用玻璃化超低温技术对SMYEV进行脱除,并利用结合内标的多重RT-PCR技术对再生植株进行病毒检测。结果表明,在病毒脱除过程中,预培养蔗糖浓度为0.5mol/L,处理3d;装载处理为25℃,60min;玻璃化处理为0℃,120min;液氮处理60min后,进行40℃水浴2min,草莓茎尖的存活率为76%,而草莓轻型黄边病毒的脱除率为95%。只有通过液氮处理才可以脱除该病毒,液氮处理前的玻璃化处理脱毒率为0。利用超低温脱毒法可以简便有效地脱除SMYEV。     

马铃薯茎尖小滴玻璃化法超低温保存及其再生植株的遗传稳定性

以马铃薯试管苗为试材,对其茎尖小滴玻璃化法超低温保存的影响因素进行了研究,并对再生植株进行了遗传稳定性检测。结果表明,马铃薯茎尖依次在含有0.3 mol · L-1和0.5 mol · L-1蔗糖的液体MS培养基中预培养各1 d后,在0 ℃下PVS2处理30 min,转到铝箔条上PVS2小滴上（约15 μL）,将粘有茎尖的铝箔条在液氮里蘸一下,然后直接装入盛满液氮的冷冻管中,投入液氮至少保持1 h。室温下用含有1.2 mol · L-1蔗糖的MS液体培养基解冻并洗涤30 min后,接种到MS + 0.5 mg · L-1 Zeatin + 0.1 mg · L-1 NAA＋1.0 mg · L-1 GA3恢复培养基上,存活率和再生率最高达79.91%和62.52%。通过SSR分子标记检测,再生植株的遗传稳定性没有发生改变。     

Droplet-vitrification of apical shoot tips of Rubus fruticosus L. and Prunus cerasifera Ehrh.

Apical shoot tips excised from in vitro plantlets of blackberry (Rubus fruticosus L. ‘?a?anska Bestrna’) and cherry plum (Prunus cerasifera Ehrh.) were tested for recovery after cryopreservation using the droplet-vitrification technique. Following treatment for 30 min with a loading solution comprising 1.9 M glycerol and 0.5 M sucrose, explants were dehydrated with a highly concentrated cryoprotectant solution, so called vitrification solution. Shoot tips were dehydrated for 10, 20 and 30 min at room temperature with a solution derived from the original PVS2 solution (containing 37.5% (w/v) glycerol, 15% (w/v) dimethylsulfoxide, 15% (w/v) ethylene glycol and 22.5% (w/v) sucrose) and for 60, 90 and 120 min using the PVS3 solution (containing 50% (w/v) glycerol and 50% (w/v) sucrose). Explants were cooled by direct immersion in LN in 10 μl droplets of vitrification solution placed on aluminium foil strips. Rewarming was done by direct plunging of foil strips in a preheated (37 °C) unloading solution (0.8 M sucrose) for 30 s, after which an equal volume of unloading solution (at room temperature) was added for further incubation for 30 min. As for regrowth of blackberry, PVS3 proved more effective than the modified PVS2, but the difference was significant (P < 0.05) only for the shortest treatment duration. The duration of PVS3 treatment had no significant effect on regrowth of cryopreserved shoot tips (45.8–70%). By contrast, a 30-min treatment with modified PVS2 solution resulted in a significant increase in regeneration percentage (30%), as compared with a 10-min treatment with the same solution (5%). Cherry plum shoot tips were very sensitive to both vitrification solutions and growth recovery of cryopreserved samples was generally lower (5–20%) than that of blackberry explants. No significant influence of PVS treatment (both type of solution and treatment duration) on regrowth of cryopreserved shoot tips was observed with cherry plum shoot tips. Experiments performed in France and in Serbia produced similar results, thereby showing the robustness and reproducibility of the protocols developed.     

食用百合种质的玻璃化法超低温保存技术初探

以离体茎尖为试材 ,采用玻璃化法 ,对食用百合离体超低温保存技术进行了初步研究。结果表明 ,用2～ 3mm茎尖 ,在MS +0 .5mol·L-1蔗糖浓度的培养基上预培养 1～ 2d ,室温下植物玻璃化溶液 (PVS2 )处理 2 0min ,换入新鲜的PVS2 ,迅速投入液氮中 ,2d后取出 ,在 4 0℃水浴中解冻 2min ,再在 2 5℃水浴中解冻 10min ,用1.2mol·L-1蔗糖液体培养基洗涤 2 0min ,接种在 6 -BA 0 .5mg·L-1+NAA 0 .1mg·L-1+GA3 0 .3mg·L-1+蔗糖 30 g·L-1+琼脂 7g·L-1的MS培养基上 ,2 5℃弱光培养 1周后转为正常光下培养 ,2周后再生率达到 5 2 .6 %。     

Cryopreservation of Malus cultivars: Comparison of two droplet protocols

Two droplet procedures, droplet-vitrification (PVS2) and droplet (DMSO) were applied for cryopreservation of in vitro cultured apple (Malus domestica Borkh., cvs. Florina, Idared, Colmar and Rebra) plants. The highest post-thaw regrowth rates (70% for cv. Florina, 66% for cv. Idared, 63% for cv. Colmar and 60% for cv. Rebra) were achieved after using the droplet-vitrification (PVS2) protocol. The excised shoot tips (2–3 mm in length) were precultured in 0.5 M sucrose enriched media for 24 h. Subsequently they were transferred in PVS2 vitrification solution for 30 or 40 min (depending on cultivar) at 24 °C and then immersed in liquid nitrogen. Rewarming was performed in liquid MS medium at 24 °C. Plants regenerated from cryopreserved shoot tips did not display any sign of morphological alteration or abnormalities in growth in comparison with control plants.     

野生毛桃叶片愈伤组织诱导及不定芽再生

【目的】为了初步建立野生‘毛桃1号’叶片愈伤组织诱导、保存及不定芽再生技术体系,【方法】以野生‘毛桃1号’试管苗幼嫩叶片为外植体,探讨了基本培养基、激素配比等一系列因素对‘毛桃1号’叶片愈伤组织诱导和保存的影响及TDZ浓度对愈伤组织不定芽再生的影响。【结果】结果表明,适合‘毛桃1号’叶片愈伤组织诱导的培养基为LP+6-BA 1.0 mg.L-1+2,4-D 3.0 mg.L-1+AgNO30.5 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂6.0 g.L-1;保存的培养基为LP+2,4-D1.5 mg.L-1+CH 0.4 g.L-1+蔗糖30 g.L-1+CA 3.0 g.L-1或PVP 3.0 g.L-1+琼脂5.8 g.L-1,且采用持续暗培养保存,每28 d继代1次。愈伤组织在SH+TDZ 3.0 mg.L-1+NAA 0.3 mg.L-1+蔗糖30 g.L-1+琼脂6.0 g.L-1的培养基上可再生不定芽,再生率为6.83%。【结论】初步建立了‘毛桃1号’叶片愈伤组织诱导、保存及不定芽再生体系,为桃愈伤组织再生和遗传转化的研究奠定了基础。