OT型百合品种黄天霸花器官组培快繁体系的建立

[目的]研究OT型百合品种黄天霸花器官的离体培养快速繁殖技术,为其种球产业化生产提供技术支持.[方法]以黄天霸花蕾和半开花的不同部位为外植体,以MS为基本培养基,探讨不同外植体的愈伤组织诱导效果、0～3.0 mg/L6-BA对外植体愈伤组织分化、1.0～3.0 mg/L 6-BA＋0～0.2 mg/L NAA组合对叶片不定芽诱导、30.0～80.0 mg/L蔗糖对鳞茎形成及生根的影响,调查不同基质对组培苗移栽种植的效果.[结果]花蕾和半开花不同部位愈伤组织诱导从易到难表现为：子房＞柱头＞花药＞花托＞花丝、花瓣,子房和柱头的愈伤组织诱导率均超过50.0％.在MS培养基中,随着6-BA用量的增加（0～3.0 mg/L）,外植体愈伤组织分化率先提高后稍有下降,适宜分化培养基为MS＋ 2.5 mg/L 6-BA.在不同6-BA和NAA组合中,以培养基MS＋3.0 mg/L 6-BA的无菌叶片不定芽诱导效果较优.添加60.0 g/L蔗糖的MS培养基利于不定芽结鳞茎生根;带鳞茎组培苗移栽于大田菜园土即可成活.[结论]成功建立的OT型百合品种黄天霸花器官离体快速繁殖体系可用于其种球工厂化生产,扩大规模化种植.     

东方百合花器离体培养和快速繁殖研究

以东方百合(Lilium tenuifolium oriental hybrid)索邦品种的花瓣、花丝、花托为外植体,就不同激素组合对诱导愈伤组织和不定芽的影响进行了研究.结果表明,索邦百合花瓣、花丝、花托形成愈伤组织的能力有差异,其能力大小依次为花托＞花丝＞花瓣;愈伤组织诱导的最佳培养基为MS 2,4-D 1.0 mg/L BA 0.5 mg/L,芽最佳分化培养基为MS BA 1.0 mg/L NAA 0.1 mg/L,芽最佳增殖培养基为MS KT 0.5 mg/L NAA 0.1 mg/L,生根最佳培养基为1/2 MS NAA 0.2mg/L.     

水晶布兰卡百合花器官的组织培养

以水晶布兰卡百合的花器官子房、花瓣、花丝为外植体,研究不同培养基配方对水晶布兰卡百合不同花器官对小鳞茎诱导、愈伤组织分化及小鳞茎增殖的影响。试验结果表明,培养基MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L较适合于初代培养,此时子房小鳞茎的诱导率达58.3%;MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L适合于不同花器官愈伤组织的分化;MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L有利于小鳞茎的增殖。     

麝香百合花部组织离体培养与植株再生

以麝香百合幼嫩花部组织为外植体进行离体培养,研究了不同部位外植体和植物生长调节物质对其愈伤组织的诱导及植株再生的影响。结果表明．不同外植体诱导愈伤组织的能力不同,由强到弱依次为花丝〉花托〉花梗〉花柱〉花瓣。在愈伤组织诱导过程中,花丝、花托及花梗在培养基MS＋NAA1．0mg·L^-1（单位下同）＋BA0．5上的诱导率都高达80％以上。交替在MS＋NAA1．0＋BA0．5和MS＋NAA0．5＋BA0．25两种培养上培养最有利于愈伤组织的增殖。不定芽的分化以MS＋KT1．0＋NAA0．5最佳。生根培养基以MS＋NAA0．2效果为好。     

野鸭椿组织培养的初步研究

以野鸭椿（Euscaphis japonica）茎段、叶片和根为外植体,以MS为基本培养基,添加不同浓度的6-BA、NAA进行愈伤组织诱导试验。通过对比试验,研究了不同外植体、灭菌剂及灭菌时间、激素对野鸭椿组织培养的影响。结果表明：对外植体灭菌用0.2%的升汞溶液,灭菌8min效果最好。以6-BA1.5mg/L＋NAA1.5mg/L的激素组合最有利于野鸭椿茎段愈伤组织的诱导,其诱导率最高,可达100%。     

野鸭椿组织培养的初步研究

以野鸭椿(Euscaphis japonica)茎段、叶片和根为外植体,以MS为基本培养基,添加不同浓度的6-BA、NAA进行愈伤组织诱导试验.通过对比试验,研究了不同外植体、灭菌剂及灭菌时间、激素对野鸭椿组织培养的影响.结果表明:对外植体灭菌用0.2%的升汞溶液,灭菌8 min效果最好.以6-BA 1.5 mg/L+NAA 1.5mg/L的激素组合最有利于野鸭椿茎段愈伤组织的诱导,其诱导率最高,可达100%.     

生石花离体培养与快繁研究

[目的]建立番杏科生石花多肉花卉的快繁技术体系.[方法]以其叶肉为外植体,以MS为基本培养基,研究不同消毒时间、不同激素质量浓度配比对外植体的诱导、增殖与生根的影响,建立适合生石花离体快繁的技术体系.[结果]外植体最佳的消毒方式为5 s75％酒精+8 min NaClO溶液,无菌率高达41.2％,成活率高达45.6％;最佳启动培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.4 mg/L,愈伤组织诱导培养基为MS+ 6-BA0.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L,愈伤组织诱导率达71.5％,丛芽分化率达51.5％;生根培养基为1/2MS+NAA0.1 mg/L,生根率达95.5％,炼苗后移栽苗成活率达90％以上.[结论]成功建立生石花离体快繁技术体系.     

雪莲果叶片愈伤组织的诱导

[目的]研究雪莲果叶片愈伤组织诱导的最佳灭菌方法和最佳培养基。[方法]以雪莲果叶片为外植体,用浓度0.1%升汞浸泡不同时间,筛选最佳灭菌方法;以MS为基本培养基,比较不同浓度生长调节物质对愈伤组织诱导的影响。[结果]用浓度0.1%升汞溶液灭菌8 min,外植体污染率为54.55%,死亡率为3.64%;最佳诱导培养基为MS+6-BA 1.0~1.5 mg/L+NAA 0.5~1.0 mg/L。[结论]最佳灭菌方法为浓度0.1%升汞对叶片灭菌8 min;诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+6-BA 1.0~1.5 mg/L+NAA 0.5~1.0 mg/L。     

亚洲百合Strawberry and Cream花器官组培快繁技术研究

为完善百合种球繁殖技术体系,对亚洲百合Strawberry and Cream花器官进行组织培养及快速繁殖技术研究。结果表明:不同外植体分化能力不同,由强到弱依次为花瓣,花丝和花柱;花瓣诱导不定芽的最佳培养基为MS+1.00mg·L-1TDZ+0.1mg·L-1NAA,诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+2.0mg·L-12.4-D+0.5mg·L-1KT;花丝诱导不定芽的最佳培养基为MS+1.0mg·L-1TDZ+0.5mg·L-1NAA,诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+2.0mol·L-12.4-D+1.5mg·L-1KT;不定芽扩繁的最佳培养基为MS+1.0mg·L-1BA+0.1mg·L-1NAA。     

雪菊的组织培养研究

以雪菊带芽茎段、茎尖、叶片为外植体以MS为培养基添加不同浓度6BA和NAA进行组织培养实验,结果表明适合带芽茎段愈伤组织诱导的培养基为MS＋6BA1.0mg/L＋XAA0.3mg/L;适合茎尖愈伤组织诱导的培养基为MS＋6BA1.0mg/L＋XAA0.1mg/L;适合叶片愈伤组织诱导的培养基为MS＋6BA3.0mg/L＋NAA0.3mg/L,适合雪菊愈伤组织增殖和不定芽诱导的培养基为MS＋6BA2.0mg/L＋NAA0.3mg/L;适合雪菊试管苗生根的培养基为1/2MS＋6BA0.3mg/L＋XAA0.03mg/L,蔗糖减半,以雪菊无菌苗的带芽茎段、茎尖和叶片为外植体成功地诱导出了愈伤组织,其中带芽茎段愈伤组织诱导率最高时间最短效果最好茎尖次之叶片最差.     

百合愈伤组织的诱导及植株再生

试验以东方百合(Oriental hybrids)"bernini"的花柱、花丝、花瓣为外植体,利用组织培养技术,探讨不同外植体愈伤组织的诱导、胚状体发生及植株的再生状况。结果表明,三种外植体均能诱导愈伤组织,花柱和花瓣诱导的愈伤组织为绿色致密的非胚性组织,而花丝诱导的愈伤组织为黄色疏松的胚性组织,将胚性愈伤组织继续培养一个月可发生胚状体。花丝愈伤组织诱导率、分化率以及分化速度均高于花柱和花瓣。诱导愈伤组织的最佳培养基为改良MS(盐酸硫胺素的浓度为4mg·L~(-1))+2,4-D2mg·L~(-1)+水解乳蛋白300mg·L~(-1);最佳分化培养基为MS+KT0.1mg·L~(-1)+BA 0.5mg·L~(-1)+NAA 1mg·L~(-1);最佳生根培养基为MS+IBA 0.5mg·L~(-1)。     

濒危药材金线莲愈伤组织诱导及分化成苗研究

[目的]建立有效的濒危药材金线莲的再生体系,为其工厂化生产奠定技术基础。[方法]选取福建金线莲的叶片、茎片、带节茎段、不定芽为外植体,建立无菌体系,而后以愈伤组织的诱导率为指标,采用正交设计优化不同外植体各阶段(愈伤组织的诱导和分化)培养基中激素的种类及浓度。[结果]在试验的福建金线莲4种外植体中,不定芽的愈伤组织诱导率最高,可达96.67%,其最适培养基配方为MS+0.5 mg/L NAA+4.0 mg/L BA+0.3 mg/L KT。在此培养基上,诱导的愈伤组织在分化培养基MS+0.5 mg/L NAA+2.0 mg/L BA和增殖培养基MS+0.2 mg/L NAA+2.0 mg/L BA上继代形成了无根试管苗。[结论]该研究建立的无菌繁殖体系,解决了前人所指出的金线莲愈伤组织诱导率极低的瓶颈问题,组培成苗的效率有较大提高。     

薄荷组织培养条件的选择

考察了消毒方式、外植体部位、培养基配方等因素对薄荷(Mentha haplocalyx Brip.)组织培养的影响.结果表明,外植体先用体积分数70％的乙醇处理30 s后,再用1 mg/L HgCl2+2滴吐温80浸泡一定时间,消毒效果好于40 mg/L的漂白粉处理,适宜的HgCl2消毒时间分别为茎段、叶片、叶柄和已萌发的芽12 min;末萌发的芽10 min.茎段的不定芽诱导率和不定芽生长情况好于其他外植体.在薄荷旺盛生长期采集半木质化的茎段作为外植体进行诱导培养,不定芽萌芽早而且生长速度快.MS+0.50 mg/LBA+0.10 mg/L NAA是适合外植体不定芽诱导的培养基配方.     

花生胚小叶体细胞植株再生系统的建立

[目的]研究花生胚小叶体细胞植株再生体系,为利用胚小叶进行外源基因遗传转化提供试验依据。[方法]以花生品种四粒红和改良海花的胚小叶为外植体,2种外植体取材方式(预培养和直接取材)为培养背景,探讨了不同取材方式下各个培养要素(基因型、培养基等)与脱分化、再分化的关系,初步建立了花生胚小叶体细胞植株再生体系。[结果]在预培养取材条件下,预培养6d的四粒红外植体在2号培养基(MS+3mg/L6-BA+1mg/LNAA)上分化得最好,每愈伤组织再生芽2.34个,预培养5d的改良海花外植体在1号培养基(MS+5mg/L6-BA+3mg/LNAA)上分化最佳,每愈伤组织再生芽2.08个。直接取材条件下,改良海花在1号培养基上每愈伤组织出芽数为6个,而四粒红为3个。直接取材在诱导愈伤组织及器官分化方面都好于预培养取材。[结论]直接取材条件下,不同培养基对诱导愈伤组织及芽分化的作用差异较大,而基因型在诱导愈伤组织上的作用有显著差异,在出芽率上的作用差异并不显著。     

三角梅外植体消毒和愈伤组织诱导研究

[目的]探索三角梅的最佳消毒时间和最佳愈伤组织诱导培养基。[方法]采用不同消毒时间对三角梅的7种外植体进行灭菌,并用不同激素与浓度组合的培养基诱导愈伤。[结果]三角梅的最佳外植体为半木质化茎段;最佳消毒方法为先用浓度75%酒精溶液灭菌30 s,无菌水冲洗5次,再用浓度0.1%升汞溶液消毒9 min,最后用无菌水冲洗7~8次;最佳诱导培养基为MS＋2.0 mg/L 6-BA＋1.0 mg/L NAA。[结论]获得了三角梅外植体的最佳消毒方式和最佳愈伤组织诱导培养基,为三角梅组织培养体系的建立奠定了基础。     

虎尾兰组培快繁技术研究

[目的]寻求虎尾兰组培快繁的最佳培养基。[方法]以虎尾兰幼叶为外植体,采用2种不同浓度的消毒剂进行处理,探讨外植体最佳消毒方法。以MS为基本培养基,研究添加不同浓度的2,4-D、6-BA和NAA对虎尾兰幼叶愈伤组织诱导、芽分化诱导及生根的影响,确定虎尾兰组培快繁的最佳培养基。[结果]虎尾兰外植体最佳消毒方式为70%酒精10 s＋0.1%升汞5 min,外植体污染率为7.7%;虎尾兰愈伤组织诱导最适宜培养基为MS＋0.25 mg/L 2,4-D,出愈率为100%;诱导芽分化的最适宜培养基为MS＋0.5 mg/L 2,4-D＋2.0 mg/L 6-BA,分化率为76%;根培养的最适宜培养基为MS＋4.0 mg/L NAA,生根率达到100%,试管苗成活率达95%。[结论]该研究为虎尾兰组培快繁的大规模工厂化生产提供了科学依据。     

企业文化就是一言一行

几年前,中国企业家调查系统在对2881位企业经营者做出的问卷调查表明,有60．1％的人同意“企业文化是企业发展到一定阶段才形成的”这一说法。     

滩涂适生金银花组培体系的构建与优化

[目的]构建并优化滩涂适生金银花的组培体系。[方法]以具有活力的金银花茎段、叶芽和叶片为材料,采用混合水平的正交试验设计,以MS为基本培养基,与不同浓度比例的NAA、IBA、6-BA、KT等植物生长调节剂构成金银花诱导愈伤组织、丛芽分化、生根的组合方案,对金银花组织培养快繁技术开展系统研究。[结果]外植体类型影响愈伤组织的产生,叶芽的愈伤组织诱导分化率显著高于茎段和叶片(P0.05),诱导出的愈伤组织结构紧密。不同植物生长调节剂组合的培养基对愈伤组织的诱导率也有显著影响(P0.05)。愈伤组织在培养基MS+0.05 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA中生长良好,具备较高的分化能力。含有低浓度的生长素和分裂素的培养基MS+0.1 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA更有利于金银花愈伤组织诱导丛芽分化,能够从数量和质量上改善分化出的丛芽素质。在诱导根分化的培养基MS+0.03 mg/L NAA+1.00 mg/L IBA中,根的分化效率明显提高,丛根更为密集,有利于扩大繁殖系数。[结论]试验为金银花提供了从"外植体选择→诱导愈伤组织→丛芽分化→生根"等整个过程中优化的组培快繁体系,为耐盐金银花滩涂规模化种植提供了技术支撑。     

菊花茎段组织快繁体系的建立

通过对菊花茎段采用不同的消毒处理,然后进行诱导、增殖和生根试验,建立了菊花离体快繁体系：消毒灭菌处理以70％酒精浸泡10s后,在0.1％升汞溶液中浸泡3min为最佳;带腋芽茎段诱导的最适宜培养基是MS＋6-BA2.0 mg·L-1＋ NAA0.1mg·L-1;腋芽增殖的最适宜培养基为MS＋6-BA2.0 ～3.0 mg·L-1＋NAA0.1mg·L-1;利用不带腋芽的茎段诱导愈伤组织的最适宜培养基是MS＋6-BA0.5mg·L-1＋ NAA0.5mg·L-1;愈伤组织再分化成丛生芽的最适宜培养基是MS＋6-BA2.0 mg·L-1＋ NAA0.1mg·L-1;诱导生根的适宜培养基为1/2MS＋ NAA0.5 mg·L-1;生根率为100％;试管苗移栽到疏松透气的蛭石＋珍珠岩＋园土（1：1：1）混合基质中,成活率可达98％.