苦瓜疏松愈伤组织诱导的研究

获得生长迅速、疏松的愈伤组织是进行植物细胞悬浮培养的前提。研究以“滨江二号”苦瓜子叶和下胚轴做外植体,在添加不同浓度的BA和NAA的MS固体培养基上诱导苦瓜愈伤组织．并对苦瓜愈伤组织的诱导率和长势予以比较。结果表明,下胚轴外植体在MS＋1．0mg／16-BA＋0．1mg／1NAA的培养基上培养时,其愈伤组织诱导率和长势最好。     

牡丹花药诱导愈伤组织

以牡丹品种‘凤丹’的带花丝的花药为外植体,诱导其产生愈伤组织,利用不同发育时期的花药诱导愈伤组织,确定了最佳的花药发育时期为单核中期,利用单核中期的花药,在确定合适激素配比的基础上,从不同的蔗糖质量浓度、4℃条件下不同处理时间等方面对花药愈伤组织诱导的影响进行了系统研究。结果表明:花药诱导愈伤组织合适的激素组合为MS+2,4-D2.0 mg.L-1+6-BA1.5 mg.L-1+NAA1.0 mg.L-1;花药在蔗糖质量浓度为6%、4℃条件下处理8 d时,愈伤组织的诱导率最高可达50.8%,优化了牡丹花药愈伤组织培养组合。     

连香树愈伤组织诱导研究

[目的]为珍稀濒危树种连香树寻求组培快繁方法。[方法]以1/4MS、1/2MS、MS添加不同浓度的NAA、KT、GA3为培养基,以连香树当年生带芽茎段为外植体进行愈伤组织诱导。[结果]以4月份采集的带芽茎段作为外植体愈伤组织诱导效果相对较好;在1/4MS+NAA 1.0 mg/L+KT 0.2 mg/L+GA31.00 mg/L培养基中愈伤组织诱导效果相对较好,但总体而言愈伤组织诱导率较低。[结论]连香树愈伤组织诱导具有可行性,需进一步研究。     

杂交榛子愈伤组织的诱导

利用组织培养技术对杂交榛子无性器官进行培养研究,从而为后续人工控制条件下获得更多的紫杉醇提供基础性研究材料。结果表明,对于10年生杂交榛子的根、茎段和叶片3种外植体进行愈伤组织诱导,其中茎段愈伤组织诱导率最高为66%,基础培养基MS为最适培养基,最适生长调节剂组合为2,4-D 2.5 mg·L-1+6-BA0.5 mg·L-1。     

提高棉花花药愈伤组织诱导率的研究

研究了棉株不同节位,低温预处理,激素等条件对５０个棉花品种（系）花药愈伤组织诱导率的影响。结果表明,以５￣８果枝上１￣２果的花药做材料,低温处理６ｄ后在附加１．５ｍｇ／Ｌ ２,４－Ｄ＋０．５ｍｇ／Ｌ ＺＴ的ＭＳ培养基在培养,愈伤组织发生最好。     

枇杷花药培养诱导愈伤组织的研究

为了寻找枇杷花药愈伤组织诱导的最佳条件及配方。以枇杷花药为试验材料,采用完全组合设计研究了温度、蔗糖浓度、激素对花药愈伤组织诱导的影响。低温处理对愈伤组织的形成没有多大影响,随着低温时间的延长,愈伤组织诱导率低于对照;30 g/L蔗糖诱导花药愈伤组织的效果较好,诱导率为62.5%;在附加1 mg/L 2,4-D和2 mg/L 6-BA的MS培养基上,诱导率最高,为90.00%;MS+0.25mg/L6-BA+1 mg/LNAA最有利于愈伤组织的增殖。高浓度的蔗糖不利于愈伤组织的形成。一定浓度的2,4-D和6-BA对枇杷花药愈伤组织的诱导有较大的影响,且2,4-D起着主导作用。     

长春花愈伤组织诱导

长春花(Catharanthus roseus (L.)G.Don.)是夹竹桃科植物,全草入药,据报道有抗癌作用,其主要抗癌成分为长春碱和长春新碱[1].由于含量甚微[2],价格昂贵,人工栽培远远满足不了人们的需要.诱导愈伤组织是组织培养的第一步,是进行工业化生产的基础.曾有人先后在B5[3]、White[4]、Wo-L[5]、WoNiKo5-L[6]培养基上诱导出长春花愈伤组织,且在其上的继代培养也获成功.笔者在MS培养基上对于是否能诱导出长春花茎的愈伤组织进行了的探索.     

红栀子愈伤组织诱导研究

[目的]为了研究红栀子组织培养的最佳条件,为栀子黄色素的工业化生产提供理论依据。[方法]以红栀子茎尖、茎段和幼嫩叶片为外植体,在MS、1/2MS和1/4MS3种培养基上进行培养试验,研究不同外植体、培养基、激素浓度和消毒时间对诱导愈伤组织的影响。[结果]红栀子茎尖和幼嫩叶片的诱导效果明显优于茎段。在3种培养基中,MS培养基更有利于愈伤组织的产生和生长。在MS培养基中添加2,4-D时,2.0mg/L为诱导红栀子茎尖愈伤组织的最适浓度。用升汞消毒,茎尖、茎段和幼嫩叶片的最佳消毒时间分别为9、12和7min。[结论]MS+2,4-D2.0mg/L+6-BA1.0mg/L为红栀子幼嫩叶片愈伤组织的最佳培养基,且10d后形成愈伤组织。     

枸杞愈伤组织诱导因子的研究

以枸杞嫩茎为试验材料,研究不同的激素组合及浓度、消毒剂、培养基以及培养基中添加肌醇对枸杞愈伤组织诱导的影响,为枸杞的离体培养提供了依据。     

西瓜花药愈伤组织的诱导

以10个西瓜品种杂交后代F1的花药作为研究材料,从基因型与激素作用关系等方面对花药愈伤组织的诱导进行了研究。结果表明,适宜的基因型是花药诱导培养成功的关键因素,不同基因型对激素变化的敏感性不同,最适培养基也不相同。     

日本厚朴愈伤组织诱导的研究

本试验以B5培养基为基本培养基,采用正交试验比较了不同外植体和激素配比对日本厚朴愈伤组织的诱导影响,同时研究了光培养和暗培养对愈伤组织诱导的影响,结果表明:日本厚朴愈伤组织诱导的最佳外植体是顶芽、最佳愈伤组织诱导培养基为B5+2,4-D 4.0 mg/L+NAA 1.0mg/L,最佳的培养方式为暗培养.     

羊草的愈伤组织诱导

用MS培养基添加不同浓度的2,4-D对羊草根、茎、叶外植体进行愈伤组织诱导。结果表明,2,4-D在较低浓度下对羊草的根茎愈伤组织诱导效果比较好。在MS培养基中加入2,4-D浓度在0.1、0.5、1.0mg/L均可出现愈伤组织,但2,4-D浓度在0.5mg/L时愈伤组织出愈率最高,其次是1.0mg/L,然后是0.1mg/L。     

青钱柳愈伤组织诱导

为获得优质的愈伤组织,以青钱柳嫩茎和叶片作为外植体诱导愈伤组织,研究了不同的消毒方法、基本培养基和植物生长调节剂对青钱柳叶片和茎段愈伤组织诱导的影响.结果表明,以青钱柳茎段为外植体诱导愈伤组织,最佳的消毒组合为70％酒精10 s+0.1％升汞4min,污染和死亡率最低(18.0％),诱导率最高(95.0％).以青钱柳叶...     

大蒜愈伤组织诱导条件的优化

对大蒜愈伤组织诱导条件进行了优化,结果表明：采用带表皮、外植体大小为０．５ｃｍ×０．３ｃｍ×０．２ｃｍ的广州白皮大蒜蒜瓣,在ＭＳ＋３．０ｍｇ／Ｌ２,４－Ｄ＋２．２ｍｇ／ＬＩＢＡ培养基中可促使大蒜愈伤组织大量发生,广州白皮大蒜与大头蒜品种对务组织诱导无显著差异,大蒜外植体４℃低温保藏１８ｄ可降低出愈污染,但对伤组织诱导影响不大。     

白花夹竹桃愈伤组织的诱导试验

[目的]探讨夹竹桃愈伤组织诱导的适宜条件,为更好开发夹竹桃的药用价值奠定基础。[方法]用不同的消毒方法和激素配比对夹竹桃的叶片和茎段进离体培养,诱导愈伤组织。[结果]对夹竹桃外植体采用自来水冲洗1h,75%酒精处理30s,4%NaClO消毒12～16min能取得较好的消毒效果;茎段更适宜做为诱导愈伤组织的外植体,在MS培养基加0.05mg/L2,4-D和0.15mg/L6-BA的条件下,能高效率的诱导出愈伤,且生长较好;[结论]该研究为进一步筛选产强心苷的高产细胞系奠定了基础。     

大豆子叶的愈伤组织诱导

[目的]建立大豆子叶的愈伤组织诱导体系。[方法]以大豆子叶作为外植体,研究不同激素种类及其浓度对叶片再生的影响。[结果]在试验所用的4种培养基处理中,以MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L培养基的愈伤组织诱导效果最佳。[结论]为大豆的进一步工业化生产奠定了基础。     

雪莲果叶片愈伤组织的诱导

[目的]研究雪莲果叶片愈伤组织诱导的最佳灭菌方法和最佳培养基。[方法]以雪莲果叶片为外植体,用浓度0.1%升汞浸泡不同时间,筛选最佳灭菌方法;以MS为基本培养基,比较不同浓度生长调节物质对愈伤组织诱导的影响。[结果]用浓度0.1%升汞溶液灭菌8 min,外植体污染率为54.55%,死亡率为3.64%;最佳诱导培养基为MS+6-BA 1.0~1.5 mg/L+NAA 0.5~1.0 mg/L。[结论]最佳灭菌方法为浓度0.1%升汞对叶片灭菌8 min;诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+6-BA 1.0~1.5 mg/L+NAA 0.5~1.0 mg/L。     

细叶远志愈伤组织的诱导

[目的]探讨影响细叶远志（Polygala tenuifolia Willd.）愈伤组织诱导的因素,建立细叶远志愈伤组织培养方法。[方法]采用组织培养方法,比较不同外植体、pH、温度、光照、激素种类及配比对细叶远志愈伤组织诱导的影响。[结果]在培养基MS上,子叶的诱导率最高,为88%;叶片和茎诱导生成的愈伤组织较少;不同pH对愈伤组织生长质量的影响差异不明显;愈伤组织诱导最适温度为28℃;66%的光照培养诱导率高于33%的光照培养;1.0 mg/L6-BA＋0.1 mg/L NAA的激素配比的诱导率最高。[结论]细叶远志愈伤组织的适宜培养基为MS＋1.0 mg/L6-BA＋0.1 mg/LNAA＋30 g/L蔗糖＋5 g/L琼脂（pH6.8）,培养温度为28℃,66%的光照培养18 h和黑暗培养6 h交替进行。     

核桃子叶胚性愈伤组织的诱导

用正交设计法研究了不同植物生长调节剂处理对核桃子叶胚性愈伤组织诱导的影响。结果表明,植物生长调节剂影响核桃子叶胚性愈伤组织诱导的因素大小为6-BA>KT>IBA,其最佳诱导培养基为DKW+6-BA 1.3 mg/L+KT 2.2 mg/L+IBA 0.02 mg/L。