盆载非洲菊的组织培养及快速繁殖

盆载非洲菊快繁的无性系可通过小花托离体培养和种子培养2种方法，在不同激素水平的MS培养基中，以MS＋BA8．0＋NAA0．1诱导小花托的效果最好，以MS＋BA0．5＋NAA0．1增值效果较佳，1／2MS＋IBA0．3中长根能力最强。     

非洲菊组织培养快速繁殖研究

非洲菊(Gerberd hybrida Horf)是重要切花之一。本研究通过组织培养方法,提高了非洲菊繁的殖系数,完善了非洲菊组培快繁的一套技术。试验结果还表明;白砂糖和自来水可代替化学纯蔗糖和蒸馏水配制培养基;在自然光照条件下培养的试管苗和在人工光照条件下培养的试管苗其生长、增殖和出根快慢没有显著差异。     

非洲菊组织培养离体快速繁殖

随着社会文明程度的不断提高和人民生活的不断改善,花卉在美化环境、装点居室、节日庆典中具有不可替代的作用.本文为快速繁殖利用非洲菊提供了可参考的技术方法,同时为快速繁殖其他新优品种花卉提供了可借鉴的经验和技术思路.     

盆栽非洲菊的栽培与养护技术

盆栽非洲菊 ( Gerbera jamesonii) ,别名扶郎花 ,为菊科大丁草属多年生宿根常绿草本植物。叶基生 ,多数 ;头状花序单生 ,花色多样 ,花朵清秀挺拔 ,姣美高雅 ,在室内四季花开不断 ,给人以温馨、祥和、热情之感 ,近年来颇受大众喜爱。现将其栽培养护技术总结如下。1　土肥水管理盆栽非洲菊对土壤要求不严 ,喜欢 p H值为 6 .0～ 6 .5的微酸性土壤 ,在中性或微碱性土壤上也能生长、开花 ,但在碱性土壤中叶片易发生缺绿症 ,以疏松透气、富含腐殖质的沙质壤土为宜。一般选用松针、稻壳、醋糠等通透性好的材料与腐熟的有机肥 (如猪粪、牛粪等 )和…     

棣棠组织培养及快速繁殖技术

对棣棠采用越冬饱满芽和当年生嫩枝为试材进行组织培养和快繁研究,结果表明：适宜的初代培养基为1/2MS＋NAA0.1mg/L＋IBA0.1mg/L,继代培养基为1/2MS＋BA0.1mg/L＋IBA0.2mg/L,生根培养基为1/3MS＋IBA0.1mg/L。组培苗先经光培炼苗7-10d,再进行移栽成活率达90%以上,春季炼苗移栽的苗木秋季即可出圃。     

沙枣组织培养与快速繁殖

以沙枣的顶芽和腋芽为外植体,经过不同时间的灭菌处理,在MS基本培养基中添加不同配比的植物生长调节剂进行离体培养。结果表明:沙枣外植体采用10%Ca(ClO)2上清液处理的最佳灭菌时间为11 min。芽诱导适宜的培养基为MS+6-BA2.0 mg.L-1+NAA2.0 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1,适宜的增殖培养基为MS+6-BA1.5 mg.L-1+NAA1.0 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1和MS+6-BA1.0 mg.L-1+NAA0.5 mg.L-1+蔗糖30.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1,适宜的生根培养基为1/2MS+NAA0.5 mg.L-1+蔗糖20.0 g.L-1+琼脂4.5 g.L-1。以腐叶土:炉灰=2:1的营养土做移栽基质效果最好,移栽成活率达85%。     

黄精组织培养与快速繁殖技术研究

为了筛选出适合黄精组培快繁的最佳培养基配方,以黄精带芽根茎为外植体,进行了黄精组培快繁技术研究。黄精外植体用0.1%HgCl₂溶液消毒15 min较适宜,消毒后将其置于含不同配比激素的培养基中进行了培养,结果表明：培养基MS+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IBA+0.2 mg/L NAA诱导不定芽生长状况最好;最适增殖、生根培养基为：MS+3.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IBA+1.0 g/L花宝1号,平均增殖系数8.5,并能直接诱导不定根,平均根数为16.8;组培苗移栽后成活率达到了90%以上。     

植物组织培养快速繁殖类型综述

应用植物组织培养方法进行快速繁殖,具有繁殖速度快、能保持植株的优良性状等优点。其繁殖类型有无菌扦插、器官发生、器官直接转变型、胚状体发生和原球茎等类型。指出了组织培养快速繁殖技术目前存在的主要问题。     

切花品种非洲菊的组培和快繁

以非洲菊幼叶及幼嫩花托为外植体，采用两次灭菌方法，用MS作基本难关基，添加不同浓度的6－BA，KT，NAA，IBA等进行诱导分化，增殖，生根培养和过渡炼苗，不同品种的诱导率差异较大，采用MS＋6－BA2．0－5．0mg/L(单位下同）＋NAA0．2－0．5培养基，愈伤组织诱导率在80％以上，采用MS＋6－BA0．5－1．0＋NAA0．1－0．2培养基对芽的生长及增殖效果较好；生根采用MS或1／2MS＋NAA0．2－0．5或IBA0．2均可，过渡移栽在蛭石：珍珠岩：火土灰＝1：1：1中，成活率可达90％以上。     

石斛兰组织培养及快繁技术研究

对两种石斛兰属植物进行了茎尖培养和快繁技术研究,结果表明，在不同激素配比的MS培养基中，MS＋BA0．5＋NAA0．5＋CH有利于石斛兰的原球茎球状体（PLB）分化成幼苗，在MS＋BA2．0＋NAA0．5＋CH中石斛兰的原球茎球状体（PLB）易保持原形态增殖，1／2MS＋IBA0．3活性炭能促进根的生成和生长。     

重瓣非洲菊的组培技术研究

取重瓣非洲菊幼小花托 ,以MS为基本培养基 ,附加不同生长调节剂及浓度水平诱导愈伤组织形成不定芽进行组培研究。结果表明 :重瓣非洲菊幼小花托在MS +BA 5 0mg·L-1+NAA 0 5mg·L-1培养基上能很好地诱导形成愈伤组织并分化出不定芽 ,诱导率 91 8% ;MS +KT 5 0mg·L-1+IAA 0 5mg·L-1培养基对不定芽增殖效果较好 ,增殖倍数达4 4 4 ;生根培养基为 1/ 2MS +NAA 1 0mg·L-1,生根率达 98%。选择河泥 +细沙 (2∶1)混合作移栽基质 ,成活率达 90 %以上。     

培养基和蔗糖对非洲菊增殖及其生长特性的影响

为提高非洲菊增殖培养效果,增强种苗质量,减少后代变异,在较低植物生长调节剂浓度条件下,研究了不同培养基含量和蔗糖浓度对非洲菊增殖及生长特性的影响情况,并对不同处理后组培苗的增殖系数和生长指标进行了测定。结果表明,在培养基含量为1/4MS~2MS的条件下,苗高、鲜质量、干质量、叶面面积和叶绿素总体上呈现出随培养基含量的增加而提高的趋势;不添加蔗糖,组培苗会停止生长直至死亡,当蔗糖浓度为1.5%~4.5%时,苗高、鲜质量、干质量、叶面面积和叶绿素总体呈现出随蔗糖浓度的增加而提高的趋势,但其增殖系数均表现为先增后降的趋势。据此认为,非洲菊增殖苗培养的最佳条件分别是培养基含量为MS、蔗糖浓度为3%。     

绿巨人的茎尖培养与快速繁殖

利用绿巨人的盆栽大苗作外植体母株进行茎尖培养,经试验得出最佳分化培养基、最佳生根培养基和最佳移栽方法,组培“三率”分别为５０６％ ,８０２０％ ,９０００％ 。由此,为绿巨人的工厂化快速繁殖提供了技术保证。     

非洲菊F1的组织培养

以非洲菊南燕F1种子无菌萌发的种子苗作外植体,在含不同植物激素的培养基上进行丛生芽的诱导、芽的继代增殖、芽生根与移栽,以快速获得再生植株.结果表明:丛生芽诱导培养基以MS+BA1.5mg·L-1+IBA0.2mg·L-1较好,诱导系数达到7;增殖培养基以MS+BA0.5mg·L-1+NAA0.1mg·L-1较好,增殖系数高达10,且增殖芽生长好;生根培养基以1/2MS+IBA0.2mg·L-1最佳,生根率达100%,平均生根数量多,幼苗生长势旺.     

非洲菊无土栽培苗期基质的选择

以苇末渣、溪沙、木炭、煤渣为材料，按不同比例配成混合基质，并施以同种营养液，对非洲菊进行无土栽培试验。试验以园土栽培为对照，分析比较了6种混合基质对非洲菊苗期生长的影响。结果表明：非洲菊无土栽培在6种基质处理中以苇末渣2＋溪沙1＋木炭1为最好，其次为苇末渣2＋溪沙1＋煤渣1。     

蓝莓的组织培养及快速繁殖

对蓝莓的组培快繁技术进行了研究。结果表明:茎段在1/3MS+BA1.5mg/L+NAA0.2mg/L+ZT1.5mg/L培养基上继代一次即可出苗,繁苗系数8倍以上;生根培养以1/4MS+IBA0.5mg/L培养基为最好,生根率达100%,并且每株可达5～10条根;移栽基质以腐苔藓为最好,成活率达80%以上。     

广宁红花油茶组织培养育苗技术研究

对广宁红花油茶（Camellia semiserrata）组织培养快繁育苗方法进行试验,结果表明,采用两种浓度升汞液（0.025%和0.1%）进行二次消毒的处理方法可将外植体污染率控制在50%以下。在快繁增殖阶段,培养基组分为WPM+TDZ 4.0 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L可有效诱导外植体分化丛生芽;WPM+TDZ 1.0 mg/L +6-BA1.0 mg/L +NAA 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L可维持芽丛持续快速增殖;而WPM+6-BA 1.5 mg/L +NAA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L有利于促进不定芽个体生长。通常的培养方法无法诱导植株生根,但经过针对调节极性表现的程序系列培养可显著提高植株极性反应水平,调整生理反应的同步性,促使不定根分化,生根率最高达90%。再生植株移栽的平均存活率为85.4%。     

大马士革蔷薇的组织培养与快速繁殖

以大马士革蔷薇的当年生枝条为外植体,研究了不同浓度6-BA和NAA外源激素配比组合对其离体培养的影响,结果表明：适宜的诱导腋芽培养基为MS＋BA0．4mg／L＋NAA0．2mg／L;继代增殖培养基为MS＋BA0．5mg／L＋NAA0．2mg／L;生根培养基为1／2MS＋NAA0．3mg／L。