南平市延平区猪场猪瘟和猪繁殖与呼吸综合征抗体水平监测及分析

为了解南平市延平区规模化猪场猪瘟（Clssical Swine Fever,CSF）和猪繁殖与呼吸综合征（Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）的免疫水平，采用酶联免疫吸附试验（ELISA）方法对2019-2022年收集到的1 926份猪血清进行CSF和PRRS抗体检测。结果发现2019-2022年CSF抗体阳性率总体在95%以上，相比之下，PRRS抗体阳性率存在波动，其阳性率总体也在83%以上；对春秋两季猪群CSF和PRRS抗体阳性率检测显示，CSF和PRRS抗体阳性率在春秋两季差异均不显著（P>0.05），然而2种疫病的抗体阳性率在春季普遍较高。说明猪场除了重点加强PRRS的免疫防控，也要特别注重秋季对CSF和PRRS的免疫防控来减少猪场损失。     

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)的检测技术

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是一种严重危害养猪业的传染病,常与其他病原混合感染,临床诊断非常困难,要确诊需要进行实验室检测。而及时诊断是防控PRRS的关键环节。从抗体的检测和病原的检测两个方面对PRRS的检测技术进行了简要综述,旨在为诊断PRRS提供指导。     

应用酶联免疫吸附试验检测猪生殖与呼吸综合征血清抗体的研究

建立的检测猛增生殖与呼吸综合征（PRRS）酶联免疫吸附试验（ELISA），其抗原包被浓度为24μ／mL，血清稀释度为1∶100，酶标二抗的工作浓度为1∶500。应用该方法对陕西省9个地区采集的有疑似PRRS征候的250份猪血清进行检测，检出阳性血清32份，阳性率为12．8％，从而证实陕西省存在PRRS，也为该病的大面积血清学普查提供了一种简易、快速、准确的检测方法。     

猪繁殖--呼吸综合症(PRRS)抗体免疫金标快速检测试纸的研制与应用

应用酶联免疫吸附原理和胶体金层析技术，在玻璃纤维和硝酸纤维素膜的检测线和对照线上分别喷上胶体金PRRSV，PRRSV和兔抗PRRS抗体，从而制作成猪PRRS抗体免疫金标试纸，用该试纸与PRRS—ELISA试剂盒分别对30份猪血清及血液样品进行抗体水平检测，结果完全一致。说明金标试纸法是一种微量、特异、简便和结果容易判定的新的检测方法，非常适用于基层兽医站和猪场，特别是进行现场检测和开展大规模疫情普查时使用。     

猪繁殖和呼吸综合征的诊断及血清学调查

对临床疑似猪繁殖和呼吸综合征(PRRS)的病例进行了病理组织学观察和PCR检验，证实了PRRS在本地区的存在。流行病学资料显示：该地区流行的PRRS以仔猪感染为主，发病率46．8％～96．2％，病死率73．5％～100％，而母猪的繁殖障碍表现较轻。对来自某些规模化猪场的270份血清样品进行血清学检测，结果PRRS抗体阳性率平均为43．7％。     

利用猪口腔液对猪场猪繁殖与呼吸综合征抗体进行检测

猪口腔液应用于检测猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)抗体监测在国内尚处于起步阶段。通过研究在猪场利用猪口腔液监测商品猪的PRRS抗体,并同时采集血液,比较口腔液和血液中PRRS抗体水平,进而为猪PRRS抗体监测提供新思路。对母猪和仔猪免疫PRRS弱毒疫苗,免疫后分不同时间段分别进行耳缘静脉采血和使用自制口腔液采样套装采集口腔液。然后利用2种ELISA试剂盒分别检测口腔液和血液PRRS抗体。结果表明,利用商品化ELISA试剂盒进行口腔液和血液中的PRRS抗体水平检测发现其具有相关性,尤其是免疫6周后,使用2种试剂盒检测的口腔液和血清中PRRS抗体结果符合率可达100%,故可选择测定免疫6周后口腔液抗体用于PRRS免疫效果评价。所以,猪口腔液采样是一种实用、有效的猪群PRRS抗体监测方法,可根据监测需求确定监测方案。     

种猪场猪生殖和呼吸系统综合征血清抗体检测

应用ELISA试剂诊断盒对青海省几个主要种猪场的103份血清进行了PRRS的血清抗体检测，共检出阳性血清6份，阳性率为5．83％，表明青海省几个主要种猪场存在PRRS。     

应用HerdChek PRRS2XR抗体检测试剂盒控制阳性猪群

HerdChek PRRS2XR抗体检测试剂盒，曾被一些养猪公司用于检测那些曾接种过疫苗或受过感染的阳性个体的抗体水平。应用旧的HerdChek PRRS抗体检测试剂盒进行检测发现，在接种疫苗后4～6周出现了血清转换的高峰，其高峰值(S／P值)在1．5和2．5之间。     

3种检测猪繁殖与呼吸综合征抗体的ELISA试剂盒的比较

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)给我国养猪业带来巨大损失,对该病的诊断主要依据流行病学、病理剖检、抗体检测、病原检测等手段,其中实验室抗体检测手段应用得比较广泛,且试剂盒种类繁多。通过比较3种不同PRRS抗体检测试剂盒在猪场发生疑似PRRS疫情时的应用,发现IDEXX公司和INGEZIM公司的PRRS抗体检测试剂盒重复性和一致性比较高,适用于发病诊断和疫病预警。     

猪繁殖与呼吸综合征疫情与猪繁殖与呼吸综合征病毒基因型的相关性研究

本试验在暴发猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)的广东某猪场进行,猪群暴发PRRS后立即封群。为研究猪场PRRS疫情和PRRSV基因型之间的相关性,在母猪饲料中全群添加抑制PRRS的泰万菌素100 mg/kg~200 mg/kg,持续90 d。统计猪场PRRS暴发到平稳期间的临床数据,并用RT-PCR检测的方法检测分娩母猪血清、脐带血、弱残仔猪和保育死淘猪病料。结果显示,猪群PRRS暴发时,存在PRRSV经典毒、高致病性野毒和高致病性疫苗毒3种毒株亚型;猪群PRRS平稳时,猪群只检测到PRRSV疫苗毒株1种亚型。表明猪群感染PRRSV类型越单一,猪群PRRS越平稳。     

猪繁殖-呼吸综合征活疫苗对仔猪的安全性试验

本试验用猪繁殖-呼吸综合征（PRRS）活疫苗和国内分离的PRRS强毒CH—1a株接种PRRS阴性的断奶仔猪，分别在接种后的3、7、14d各剖杀1头，取各脏器分别做冰冻切片和病理切片观察。用间接免疫荧光法检测各脏器PRRS病毒的分布。结果表明，PRRS活疫苗在免疫初期，抗原主要分布在脾脏、淋巴结，其次是肾脏和肺脏，少见于肝脏和心脏，第14d时在脾、淋巴结和肾脏有一定量的抗原，而肺脏相比则数量很少，肝脏和心脏未检到PRRS病毒抗原的存在，表明接种PRRS活疫苗随着时间的推移抗原分布呈下降趋势。而强毒抗原分布以脾脏最多，依次是肾脏、肺脏、淋巴结、肝脏、心脏，接种后第14d仍能在各脏器检到PRRS病毒抗原。病理组织学检测结果表明，活疫苗产生以下颌淋巴结、脾脏增生为特征的免疫应答，组织损伤轻微，对肺的病变较少，且仔猪生长良好。强毒则引起以大面积的肺泡隔增宽为特点的间质性肺炎和微循环障碍的病理变化，淋巴小结、脾脏滤泡发生崩解与周围界限不清，个别淋巴细胞核浓缩，组织损伤严重。本试验表明弱毒疫苗对仔猪是安全的。     

不同进口蓝耳病病原抗体ELISA检测试剂盒比较及应用浅析

为比较4种PRRS抗体ELISA试剂盒检测效果的差异,将PRRS标准阳性血清和免疫过PRRS疫苗的猪血清分别以100、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7倍比稀释， 同时分别用4种不同的ELISA试剂盒 （I、J、B、L） 进行检测。结果显示,I厂家的试剂盒敏感度最好，J、B 2家的次之，L厂家的敏感度最低。检测结果表明不同商品化试剂盒的灵敏度存在一定的差异。本研究可为蓝耳病免疫程序制定以及净化检测提供参考。     

猪繁殖与呼吸综合症血清抗体的检测报告

2001年从四川省6个市7个种猪场采集未经免疫猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）疫苗的种猪血清样本598份，用乳胶凝集试验检测PRRS抗体，结果表明，平均阳性率为19．56％，最低的为0，最高者达63％，阳性场占6／7。     

猪繁殖与呼吸综合征检测技术与疫苗研发进展

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)给世界养猪生产造成了巨大经济损失。对PRRS的精准检测以及疫苗的科学使用是临床PRRS防控的重中之重。为此,本文综述了PRRS检测技术和疫苗研发进展,以期为临床PRRS综合防控提供依据。目前临床上检测PRRS的主要技术包括血清抗体ELISA检测以及各种类型的RT-PCR检测技术。ELISA检测以评价疫苗免疫效果或野毒感染情况为主要目的,RT-PCR检测以临床诊断及调查野毒株类型为主要目的。在疫苗方面,目前市场上主要有活疫苗、灭活苗、亚单位疫苗、DNA疫苗以及载体疫苗等不同类型的单苗以及联苗。其中:活疫苗保护效果较好,但交叉保护不强;灭活苗安全性较高,但免疫效力较差;亚单位疫苗可用于妊娠晚期;DNA疫苗可增强活疫苗的保护效果;载体疫苗虽具有部分保护力,但未进行实际应用。目前依旧没有完全符合国际新一代标准的PRRS疫苗上市。因此,通过科学检测以及将生物安全和合理的疫苗接种结合起来,进行田间毒株的检测和基因分析,进而选择相应基因型毒株疫苗进行免疫,对控制农场以及地区的PRRS具有非常重要的作用。     

猪繁殖与呼吸综合征的ELISA抗体检测结果分析与应用

本研究应用ELISA方法共检测25个猪场26个猪群507份血清的PRRS抗体水平,应用统计学方法分析各猪群的检测数据,结合猪群临床表现和病原污染情况的流行病学调查结果,可将猪群分为无PRRSV污染,临床健康;PRRS病毒污染,临床稳定;PRRS病毒污染,临床发病且控制困难等3种流行模式,并提出了应用猪群PRRS ELISA检测值标准差、个体检测极值及盒须图(Box-and-Whisker Plot)进行分类的具体指标和PRRS分类控制的建议。     

猪繁殖与呼吸综合征病毒实验室诊断方法的研究

猪繁殖与呼吸综征（PRRS）自1987年首次在美国发现以来，已给世界养猪业造成了巨大的损失。快速精确的诊断是有效防制该病的前提。随着分子生物学技术的不断发展，已建立了许多敏感性高、特异性强、易于操作的诊断及检测PRRS抗体和抗原的方法。作者就PRRSV实验室检测方法的研究进展进行了概述，为进一步检测和控制该病提供参考。     

间接免疫酶组织化学法检测猪繁殖与呼吸综合征病毒感染和抗原定位

以蔗糖密度梯度离心法提纯的猪繁殖与呼吸综合征（Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）病毒SC1株作为抗原,免疫家兔制备兔抗PRRS病毒IgG,成功建立了检测PRRS病毒抗原的间接免疫酶组织化学法。该方法只与PRRS病毒感染猪组织呈现阳性反应,与猪瘟病毒、猪细小病毒、猪伪狂犬病毒、猪乙脑病毒人工感染并致死仔猪的肝脏组织呈现阴性反应。用该方法检测PRRS SC-1株人工感染28日龄仔猪,在感染后7 d即可在肺门淋巴结、胸腺、扁桃体、十二指肠、肺、大脑和肾脏检测到PRRS病毒抗原。PRRS病毒抗原主要分布于胸腺和十二指肠感染细胞的胞浆内、肺门淋巴结小梁周围的淋巴窦和弥散的淋巴组织、扁桃体淋巴结的隐窝及其周边。该法具有特异、直观和敏感的特点,可用于PRRS病毒感染的实验室诊断、抗原定位及甲醛固定样本的回顾性诊断。     

不同来源的仔猪蓝耳母源抗体检测结果比较

通过3个饲养条件不同、仔猪来源不同的猪场的仔猪的PRRS母源抗体检测比较,同一个猪场的仔猪母源抗体离散度较大,不同来源的仔猪PRRS母源抗体水平差异显著。检测结果表明应根据初生仔猪母源抗体水平及消长规律科学地制定PRRS的免疫程序,同时做好生物安全防护措施,从而有效控制PRRS的发病和流行。     

猪繁殖与呼吸综合征灭活疫苗临床使用效果评估

为评估猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)灭活疫苗的临床使用效果，选用市售A、B两种PRRS灭活疫苗在陕西省某4 800头规模化母猪场开展对比试验。试验选取180头健康妊娠母猪，随机分为3组，在猪场正常生产管理流程下分别在母猪妊娠8周龄免疫A PRRS灭活疫苗、B PRRS灭活疫苗和灭菌生理盐水(对照组)。通过对试验组和对照组生产成绩、疫苗免疫后的抗体水平变化、分娩仔猪14日龄的PRRS母源抗体水平及仔猪PRRS水平传播能力等综合分析，发现A PRRS灭活疫苗免疫组生产成绩优于B PRRS灭活疫苗免疫组和对照组；A PRRS灭活疫苗免疫组母猪及14日龄仔猪抗体水平均高于B PRRS灭活疫苗免疫组和对照组；A PRRS灭活疫苗免疫组仔猪PRRS的水平传播能力低于B PRRS灭活疫苗免疫组和对照组。说明妊娠8周母猪免疫A PRRS灭活疫苗可提高母源抗体对仔猪的保护力，A PRRS灭活疫苗在一定程度上可阻断PRRS在产房的水平传播。     

猪繁殖与呼吸综合征在我国的流行状况及其检测

我国自1996年由郭宝清等首先证明了猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)在我国的存在以来,国内广泛地开展了对PRRS的检测.现对1996～2000年间在7种杂志发表的32篇关于我国PRRS发生与流行及其检测的报道,现综述如下.