杀菌剂开发中的室内生物测定

针对杀菌剂开发中的室内生物测定,探讨了活体和离体的相互关系,生物测定类型的选择问题,同时从多角度阐述了杀菌剂生物测定的创新途径。     

马铃薯早疫病菌化学防治及抗药性研究进展

综述了生产中马铃薯早疫病化学防治、主要防治药剂及其作用机理、早疫病菌对常用杀菌剂抗性发生现状、抗性菌株生物学特性和抗药性机制的研究进展,并提出了防治早疫病菌的杀菌剂抗性治理策略和研究展望。     

杀菌剂对几种果蔬采后病害生物测定试验方法的综述

杀菌剂的生物测定实验主要包括病原菌的采集、分离与提纯、离体培养及杀菌剂室内毒力测定。生长速率法、抑菌圈法、孢子萌发法等均是常用的杀菌剂室内毒力测定方法。本文概述了我国部分重要的果蔬采后病害的生物测定方法,并对未来果蔬采后病害的综合防治方法做出展望。     

卵菌对杀菌剂的抗药性及治理策略

介绍了目前用于防治卵菌病害的保护性杀菌剂和高效内吸性杀菌剂 ,同时讨论了卵菌对内吸性杀菌剂的抗药性现状、产生原因、抗药性机制及交互抗药性问题 ,最后对卵菌抗药性的治理策略提出探讨     

桔全爪螨体内羧酸酯酶活性与对有机磷抗药性的关系

以生物测定及羧酸酯酶活性测定方法,检测了福州地区桔全爪螨对有机磷的抗药性。结果表明:(1)桔全爪螨对有机磷普遍产生抗药性:(2)桔全爪螨对有机磷的抗药性与体内羧酸酯酶活性增加有关;(3)与生物测定方法相比,羧酸酯酶活性测定方法能迅速而又准确地检测桔全爪螨对有机磷的抗药性。     

植物病原菌抗药性研究进展

植物病原菌杀菌剂是防治植物病害的重要手段．但近年来杀菌剂的抗药性问题呈现逐年增多的趋势．已引起相关领域的广泛关注。本文从抗药性病原菌生物学特性、抗药性机制、抗性治理技术与抗性利用4个方面综述了植物病原菌杀菌剂的抗药性研究进展。     

2020—2021年江苏省稻曲病菌对三唑类杀菌剂的抗药性监测

前期研究发现江苏省稻曲病菌对三唑类杀菌剂存在抗药性风险,为进一步明确江苏省稻曲病菌对三唑类杀菌剂的抗药性发展规律,指导全省三唑类杀菌剂的科学使用,利用菌丝生长速率法,测定了2020年江苏省6个地区和2021年江苏省7个地区共计219个稻曲病菌单孢菌株对三唑类杀菌剂的敏感性,并通过测定抗性菌株的生长速率和对水稻的致病力对其适合度进行了分析。结果表明,2020年采集的84株稻曲病菌对丙环唑均敏感;2021年,在靖江市监测到1株抗药性菌株,该市抗性频率为6.7%,全省抗性频率为0.7%;抗性水平2.2倍。进一步对筛选到的稻曲病菌抗药性菌株适合分析发现,抗药性菌株生长和致病力与敏感菌株相比均无显著差异,表明在三唑类杀菌剂的田间选择压下,抗药性可能会进一步发展。本研究明确了江苏省稻曲病菌对三唑类杀菌剂存在低抗药性风险,目前在做好抗药性监测的前提下,三唑类杀菌剂可继续作为江苏省防治稻曲病的主要药剂。     

灰霉病化学防治及抗药性研究进展

综合评述了灰霉病菌对苯并咪唑类、二甲酰亚胺类、N-苯基氨基甲酸酯类和苯胺基嘧啶类等杀菌剂的抗性及其抗性机制,并简单介绍了可用于治理灰霉病菌抗药性的吡咯类、酰胺类、吡啶类和甾醇生物合成抑制剂类等新型杀菌剂的生物学特性及其作用机理。     

杀菌剂抗性阻止与治理概述

本文对植物病原物抗性的基本概念、影响杀菌剂抗性的基本因素、杀菌剂抗药性阻止途径以及杀菌剂抗药性的治理策略进行了综述,以期为杀菌剂的科学合理使用提供参考.     

梨黑星病菌抗药性研究进展

综述了梨黑星病菌的种类、抗性监测方法和抗性划分标准,以及近年来国内外梨黑星病菌对苯并咪唑类和三唑类内吸性杀菌剂的抗药性发生现状、抗药性机制等方面的研究进展。为梨黑星病菌抗药性治理对策的制定提供了参考,同时对梨黑星病菌的研究方向和发展前景提出了相关建议。     

白僵菌代谢物对杨树云斑天牛毒性生物测定方法研究

[目的]确定检测白僵菌代谢物杀虫活性的最佳方法。[方法]以云斑天牛幼虫为试虫,采用表皮接触、口服和血腔注射3种生物测定方法测定白僵菌代谢物的杀虫活性。[结果]3种生物测定方法均可使白僵菌代谢物对云斑天牛幼虫表现杀虫活性。表皮接触生物测定法10d内试虫平均死亡率为6.67%,口服生物测定法10d内试虫平均死亡率为28.89%,试虫死亡时间主要集中在第4～8天,血腔注射生测法10d内试虫平均死亡率为86.67%,试虫死亡时间主要集中在第4～6天。方差分析表明血腔注射法表现的死亡率较其他2种方法有极显著差异。[结论]3种生物测定方法各有其优缺点,血腔注射和口服生物测定法适于室内研究,血腔注射生物测定法最容易检测到白僵菌代谢物的杀虫活性,适于生产应用前。     

抑制光合作用除草剂的生物测定

本文详细介绍了抑制光合作用除草剂的作用原理和除草剂的生物测定方法，主要介绍几种常用的抑制光合作用除草剂的生物测定方法并举例说明。     

螨的综合测试方法的研究

比较了不同生测方法对朱砂叶螨成螨、若螨、卵的毒力差异 ,确定不同虫态的螨的生测方法和评价指标 ,结果表明对螨的 3种生测方法各有特点 ,叶碟浸渍法和浸渍法较敏感 ,适于新化合物的普筛 ;叶碟喷雾法较准确 ,适合初筛中的定量测定。对成螨的毒力评价时间以浸药 72 h后最适宜 ;对若螨的测试方法 ,毒力评价时间以浸药后 1 44 h适宜 ;对卵的测试方法施药处理应在卵后 2 4 h,毒力评价时间在卵后 1 2 0 h     

螺虫乙酯对桃蚜的毒力及持效期

[目的]明确新型内吸型杀虫剂螺虫乙酯对桃蚜(Myzus persicae)的毒力及持效期.[方法]利用3种生物测定方法开展螺虫乙酯对桃蚜的室内生物测定,用定量数据概率和时间剂量死亡率模型分析螺虫乙酯对桃蚜的毒力,并利用微虫笼法对螺虫乙酯的持效期进行研究.[结果]玻璃板法、微虫笼法和圆片法的测定结果存在差异,微虫笼法进行生物测定时植物叶片的保持时间较长,测定结果更加可靠.3种生物测定方法测得的桃蚜若蚜死亡率随着时间的延长呈上升趋势,到120 h达稳定.利用定量数据概率的方法分析表明,玻璃板法、微虫笼法和圆片法测定的螺虫乙酯对桃蚜若蚜的LC50分别为0.0886、0.1258和0.8459 mg·kg-1,利用时间剂量死亡率模型分析表明,在1.5625 mg·kg-1下的LT50分别为2.5、2.9和3.5d,LT50随着药剂浓度的增大而递减.螺虫乙酯具有较长的持效期,防治效果在施药7d后开始下降,死亡率由100％降低至20％以下.[结论]本研究提出的用微虫笼进行螺虫乙酯生物测定的方法,可为长持效期药剂的生物测定提供参考;目前田间桃蚜种群对螺虫乙酯仍处于非常敏感的状态.     

ELISA法与小白鼠生物法检测麻痹性贝类毒素的研究

麻痹性贝类毒素(PSP)是当前世界范围内分布最广、危害最大的一种海洋生物毒素。该研究以福建地区贻贝为原料,采用酶联免疫吸附法(ELISA)与传统的小白鼠生物测定法对20份贻贝样品中的麻痹性贝类毒素进行检测,结果表明:两种方法检测麻痹性贝类毒素的结果吻合程度较好,但ELISA法更适于检测PSP含量较小的贝类。通过比较研究,小白鼠生物法操作简单但无法准确定量;而ELISA法快速简便、灵敏度高且检测成本低,对于麻痹性贝类毒素的快速筛选检测具有重要的现实意义。这两种方法结合运用可以确保麻痹性贝类毒素检测的结果更加准确。     

烟粉虱成虫对烟碱类杀虫剂抗性的生物测定方法

采用浸叶法和内吸法测得的烟粉虱成虫对吡虫啉、啶虫脒和噻虫嗪的抗性比值分别为1.22、3.28、2.49和1.37、4.27、3.26,2种方法测定的结果基本一致.浸叶法测定结果表明,吡虫啉对自然混合日龄与饲养的不同日龄成虫的LC50之间无显著差异.此外,分别以棉花叶和茄子叶作为试验材料测定烟粉虱对吡虫啉的抗性,测定结果也是基本一致的.因此,认为可以采用与田间实际用药情况相接近的成虫浸叶法进行烟粉虱对烟碱类杀虫剂的抗药性监测,而且可采用自然混合日龄成虫代替饲养的相同日龄成虫直接进行生物测定,棉花叶和茄子叶均可作为抗药性生物测定的试验材料.     

玉米弯孢叶斑病菌粗毒素的制备

对玉米弯孢叶斑病菌毒素的研究表明,利用甲醇沉淀毒素培养液得到蛋白和非蛋白部分,其中非蛋白部分对寄主具有生物活性;毒素培养液中的活性成分是一类极性较大的物质,而且溶于甲醇。各种生物测定方法中,针刺法方便、快捷,可作为检验该毒素生物活性的测定方法。可以利用甲醇沉淀、氯仿和甲醇混合提取制备粗毒素。     

稻瘟病菌粗毒素的定量生物测定法研究

利用诱致秧苗萎蔫、抑制胚芽生长、抑制胚根生长和抑制种子萌发等毒素生物测定方法都能有效地对稻瘟病菌粗毒素进行定量测定，而以后两种方法效果较佳。粗毒素制剂的不同ｐＨ值不同处理温度和时间以及处理前胚根的长度对抑制胚根生长法的定量测定结果都有影响。     

橡胶不同品种对棒孢霉落叶病的抗性评价

对云南各主要植胶区采集、分离得到的7个橡胶树多主棒孢菌株进行致病性测定,获得强致病力菌株DF4。分别用菌丝体接种鉴定、分生孢子悬浮液接种鉴定和粗毒素接种鉴定相结合的方法,对云南植胶区的9个主栽橡胶品种进行抗病性评价。结果表明,不同接种体或不同接种方法获得的抗性评价结果大致相同,但是也存在一定的差异。     

青藏高原野燕麦群体对高效氟吡甲禾灵的抗药性检测

为明确青藏高原地区不同野燕麦种群(wild oats)对高效氟吡甲禾灵(haloxyfop-R-methy)的抗药性水平,本研究采用整株植物测定法和培养皿种子测定法,测定了29个地区油菜田野燕麦种群对高效氟吡甲禾灵的抗药性水平。结果表明,供试杂草对高效氟吡甲禾灵产生了不同程度的抗药性,其中采自门源清石咀的野燕麦种群抗性水平较高,整株测定法测得抗性倍数为154.90倍,EC50值为1 123.468μg/m2;培养皿种子测定法测得抗性倍数为76.01倍,EC50值为30.114 7μg/m2,培养皿种子测定法与整株测定法测得结果一致。