文冠果不定芽再生与快速繁殖

以成熟文冠果叶片作为外植体,通过器官直接发生途径,对其进行不定芽诱导、不定芽增殖及生根培养,建立了一种简单易行的、可再生的文冠果快速繁殖方法。结果表明,在不定芽诱导阶段,当MS培养基添加2.0mg.L-1BA和0.2mg.L-1 NAA时,不定芽诱导率最高;高浓度的BA显著降低不定芽诱导率;当MS培养基添加2.0mg.L-1 BA和0.1mg.L-1 NAA,每个外植体获得的不定芽数达到最大;当叶片远轴面接触培养基时,不定芽诱导率高于近轴面接触培养基。在增殖培养阶段,当MS培养基添加0.5mg.L-1 BA时,不定芽增殖率、增殖个数及增殖芽长均达到最大;在不同浓度的BA培养基中添加NAA降低了不定芽的增殖效果。在生根培养阶段,1/2MS培养基添加0.5mg.L-1 IBA的生根率最高;IBA的生根效果显著优于NAA或IAA。生根苗在含有土壤、沙子和泥炭的混合基质(1∶1∶1)中移栽成活。     

草木樨愈伤组织的诱导和芽的再生

为了建立草木樨的高效再生体系和基因转化体系,以黑龙江草木樨为材料,用MS、1/2MS为基本培养基,添加不同种类和浓度的植物激素,对草木樨的愈伤组织培养和绿色芽点培养进行了研究。结果表明,诱导其愈伤组织的培养基以MS 2,4-D 1.0 mg.L-1 KT 0.3 mg.L-1为最好,愈伤组织的形成率可达90%;诱导绿色芽点的培养基以MS 2,4-D 0.2 mg.L-1 6-BA 1.0～1.5 mg.L-1为最好,芽点形成率可达45%。最后,将再生芽转入生根培养基1/2 MS IAA 0.5 mg.L-1上,生根率可达100%。     

氯化胆碱和多效唑在何首乌快繁中的应用

以何首乌茎段和顶芽为材料,对何首乌的组培快速繁殖技术进行了研究.试验结果表明:以MS为基本培养基,附加BA1.0 mg·L-1+IBA0.05 mg·L-1,芽增殖倍数为3.20,苗增高4.69 cm,当添加50 mg·L-1氯化胆碱时,芽增殖倍数为5.30倍,苗增高6.50 cm.诱导生根以1/2MS+NAA0.5 mg·L-1+PP333 2.0 mg·L-1的培养基最好,生根率为96.7%,苗也较粗壮,移栽成活率达90.0%,比不添加PP333的1/2MS+NAA 0.5 mg·L-1的成活率提高了47.1%.试验证明氯化胆碱对何首乌试管苗增殖有利,而多效唑对其生根有促进作用.     

大豆子叶节再生体系的建立

以大豆子叶节作为外植体,研究不同基因型对丛生芽诱导的影响,筛选出丛生芽诱导率较高的大豆基因型小粒豆(东农50)。在此基础上,以小粒豆的子叶节为外植体,研究种子消毒方法、种子萌发及芽诱导阶段6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)对丛生芽诱导的影响以及生根阶段吲哚丁酸(IBA)对生根的影响。在确定氯气消毒法作为适宜大豆种子消毒的方法的基础上,最终确定萌发培养阶段添加1.0mg.L-1 6-BA、芽诱导阶段添加1.67mg.L-1 6-BA、生根培养阶段添加1.0mg.L-1 IBA较宜。     

海棠花离体繁殖技术研究

以海棠花组培苗和叶片为材料,应用正交试验法,以MS培养基为基础,分别加入不同浓度配比的6-BA/IBA组合和TDZ/IBA组合作为增殖培养基和叶盘不定芽再生培养基,研究了不同植物激素及其配比对组培苗增殖、叶片不定芽再生的影响。结果表明:在添加6-BA 1.0mg.L-1+IBA 0.1mg.L-1的MS培养基上最适宜海棠花组培苗的增殖及生长,增殖倍数高达8.11,海棠花组培苗平均高度达2.14cm;在添加TDZ 1.0mg.L-1+IBA 0.5mg.L-1的MS培养基上叶再生效率最高,再生效率为100%,每叶平均再生芽数为6.73。     

印尼野生姜黄的离体培养和再生体系研究

以印尼野生姜黄的根茎及无菌苗的茎段为试材,研究并建立了离体培养的再生体系.根茎在MS 6-BA1.0 mg·L-1 NAA0.1 mg·L-1培养基上分化效果最好,30 d后不定芽的诱导率达83.33%.茎段在2,4-D 0.5 mg·L-1 KT4.0 mg·L-1培养基上愈伤组织的诱导率最高,达80%,且不经转接就能分化出少量的不定芽;在添加有6-BA的几种培养基上,不经愈伤组织而直接分化出不定芽,其中MS 6-BA3.0 mg·L-1 NAA0.1 mg·L-1为最适合不定芽分化的培养基,平均3.3芽每茎段.适宜不定芽增殖培养基为MS 6-BA1.5 mg·L-1 NAA0.2 mg·L-1,增殖率100%,平均增殖系数6.25.在不定芽的生根壮苗中,以培养基1/2 MS NAA0.5 mg/L效果最好.     

大豆下胚轴不同切段离体培养器官发生的研究

以鄂豆6号成熟种子无菌苗下胚轴1/2切段、1/3切段为外植体,按顺插、反插、平躺3种方式接种在添加植物生长调节剂NAA、6-BA、2,4-D、KT配伍的1/2MS基本培养基中诱导器官发生。结果表明,添加NAA0.1mg.L-1 KT1.0mg.L-1培养基中下胚轴生根率较高,添加NAA0.1mg.L-1 KT1.0mg.L-1、2,4-D0.1mg.L-1 6-BA1.5mg.L-1、2,4-D0.1mg.L-1 KT1.5mg.L-1可诱导芽的发生;1/2切段生根和发芽比1/3切段的好;反插根的发生较多,顺插有利于芽的形成。     

铁棒锤组织培养技术研究

以铁棒锤越冬芽为外植体,在添加抗褐化剂聚乙烯吡咯烷酮(PVP)和活性碳(AC)的MS培养上,附加不同浓度组合的NAA和6-BA,进行了芽增殖和试管苗生根培养.结果表明:在MS培养基上添加1.5 g·L-1AC+1.0 g·L-1PVP可抑制培养物褐化;在MS培养基上添加2.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1...     

网纹甜瓜离体再生体系的研究

探讨组织培养中不同因素对甜瓜不定芽诱导的影响,以期建立简单、快速、高效的网纹甜瓜离体再生体系.以日本伯爵系列网纹甜瓜R97和国内网纹甜瓜品种顶峰3号为试材,比较不同外植体部位、苗龄对不定芽诱导的影响,在培养基中添加不同激素,调查不定芽在不同培养基中的长势情况.结果表明:升汞消毒时间以10min为宜:5d苗龄的子叶为较适宜的外植体;适宜的初代培养基为MS 2.0mg·L-1BA 0.2mg·L-1IAA;适宜的继代培养基为MS 0.4mg·L-1BA 0.05mg·L-1IBA;适宜的生根培养基为MS 0.5mg·L-1IBA.     

广州一号桉树高效组培再生体系的建立

以广州一号桉树优良无性系无菌苗茎段为外植体,通过对噻唑基脲类新型分裂素(N-phenyl-N’-[6-(2-chlorobenzothiazol)-yl]urea,PBU)等多种不同质量浓度植物生长调节剂组合的优化,进行愈伤组织诱导及再生研究。结果表明,在添加了2 mg.L-1PBU和0.06 mg.L-1IAA的改良MS培养基上,茎段外植体5 d后愈伤组织诱导率达100%;将愈伤组织接种在添加1 mg.L-16-BA和0.1 mg.L-1NAA的MS培养基上,诱芽率高达90%;随后,在添加了0.2 mg.L-1PBU与0.05 mg.L-1NAA的1/2MS培养基上诱导芽伸长,用1/2MS培养基附加0.2 mg.L-1IBA诱导生根,炼苗15 d后,以质量m(黄心土)∶m(腐殖质土)=1∶1为基质进行移栽,得到完整再生植株,成活率高达95%。     

桃儿七愈合组织的诱导及植株再生

以桃儿七Sinopodophyllum hexandrum成熟种胚为材料,研究了不同种类和浓度的细胞分裂素(噻苯隆TDZ和6-苄氨基腺嘌呤6-BA)和生长素(萘乙酸NAA和吲哚乙酸IAA)对桃儿七愈合组织诱导和不定芽分化及无菌苗生根的影响,建立了完整组织培养再生体系。结果表明:在添加0.5 mg·L-1TDZ+500 mg·L-1水解酪蛋白(CH)的MS(Murashige和Skoog)培养基中,成熟种胚愈合诱导率最高,为97.8%,显著高于其他处理。在添加0.5 mg·L-1TDZ的继代培养基中,出现球形胚和心形胚,但继代培养褐化严重,添加谷胱甘肽160 mg·L-1能显著抑制褐化现象。在附加1.5 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA+500 mg·L-1CH的分化及增殖培养基中,不定芽诱导率最高,为53.3%,且增殖芽数最高为5.2。在添加0.5 mg·L-1NAA,0.5mg·L-1IAA等2种处理均可诱导生根,以MS+0.5 mg·L-1IAA生根率最高,为22.4%。     

蒙古栎茎段的离体培养

以水培萌发的健壮茎段为外植体,研究了离体条件下培养基及激素对蒙古栎器官发生和植株再生的影响。结果表明,在培养基中添加0.2 g·L-1PVP能有效地抑制茎段褐化,在茎段初代培养中,以1/2MS基本培养基添加0.2 mg·L-16-BA培养效果最好,启动时间早,芽平均高3.00 cm,最高的可达5.20 cm。茎段增殖培养,以1/2MS+6-BA0.15 mg·L-1+KT0.15 mg·L-1效果最好,平均茎芽长接近3.00 cm,平均增殖系数为3.33;高质量浓度的6-BA对茎芽生长不利,基部高度愈伤化,出现玻璃化现象。茎段最佳生根培养基为MS+NAA0.02 mg·L-1+IBA0.05 mg·L-1,生根率达到62.5%。     

宿根婆婆纳‘达尔文之蓝’的组培脱毒和快繁技术

将供试品种的带茎尖和腋芽的茎段,用70%酒精浸泡30 s,然后用20%的次氯酸钠溶液浸泡30 min,无菌水冲洗4次,消毒处理后剥取0.1~0.3 mm的茎尖,接种于以MS为基本培养基添加6-BA、IAA、NAA等外源激素的培养基中,研究了不同条件对愈伤组织诱导芽形成和芽继代增殖、生根和移栽效果的影响。结果表明,以MS为基本培养基,添加6-BA 1.0 mg·L-1和IAA0.5 mg·L-1为较适宜的外植体诱导愈伤组织和愈伤组织诱导芽的培养基。最佳继代增殖培养基为6-BA2.0 mg·L-1和NAA0.1 mg·L-1。最佳生根培养基为1/2MS添加NAA0.2 mg·L-1和IAA1.0 mg·L-1。25 d后,组培苗移栽成活率达到98%以上。     

不同培养因素对黑玫瑰石竹丛生芽增殖的影响

研究多种因素对黑玫瑰石竹组培快繁中丛生芽分化增殖培养的影响,结果表明:丛生芽增殖培养以MS为基本培养基时,增加或减少大量矿质元素不利于丛生芽的诱导;NAA/6-BA为0.1 mg·L-1/1.0 mg·L-1的激素配比有利于丛生芽的增殖,在此基础上添加谷氨酰胺100 mg·L-1,可提高增殖数达9.4;选用蔗糖15 g·L-1为增殖培养的碳源,在提高增殖效果的同时可有效降低成本。     

金山绣线菊(Spiraea×bumalda ‘Gold Mound’)再生体系的建立

以金山绣线菊为研究试材,以茎段为外植体,通过使用不同的生长调节剂、不同质量浓度配比对外植体腋芽萌发和增殖影响进行了研究,建立了金山绣线菊无菌培养系;同时,探讨了叶片作为外植体的再生体系的建立.研究结果表明:金山绣线菊的茎段在添加2.0mg·L-16-BA、0.2mg·L-1NAA的MS培养基上腋芽能迅速萌发且长势良好,萌发率为93.3%;叶片在添加2.0mg·L-12,4-D、0.4 mg·L-16-BA、0.04 mg·L-1IBA的MS培养基上培养20d后产生的愈伤组织,转接到去除2,4-D,添加0.8 mg·L-16-BA、0.04 mg·L-1NAA的MS培养基上继续培养50d后,不定芽分化率为90%,每个外植体平均再生不定芽数为3.5个;再生植株在添加0.5 mg·L-1NAA、0.1% AC(活性炭)的1/2MS培养基上,生根率达到100%,生根苗移植于混合基质中,成活率为86.7%.     

独蒜兰快繁技术的研究

研究结果表明,独蒜兰组织培养最好选用种子萌发的幼芽体进行.激素的种类和浓度影响愈伤组织的形成,在2,4-D 2 mg*L-1 6-BA 0.25 mg*L-1和2,4-D 2 mg*L-1 KT 0.25 mg*L-1的MS培养基中,外植体的死亡率较低;高浓度的2,4-D有利于快速形成大量的愈伤组织,但愈伤组织褐变死亡率较高;无论是种子萌发的芽还是从假鳞茎上剥下的芽,在6-BA 2 mg*L-1的MS上其长势都是最好;6-BA 2 mg*L-1最适合外植体为种子萌发的芽的增殖,当6-BA浓度为4 mg*L-1时,则抑制了外植体的芽的增殖与生长;NAA对外植体的芽的增殖和生长都有抑制作用;MS 6-BA 3.0 mg*L-1 NAA 0.5 mg*L-1培养基对不同外植体芽的增殖倍数有显著性差异;添加了IBA的培养基有利于根系的诱导.     

莪术的组织培养

以广西莪术的根茎为外植体,接种在以MS为基本培养基,附加不同种类、不同浓度植物生长调节物质的培养基上,进行不定芽诱导、丛生芽增殖、试管苗生根及移栽等试验。在MS培养基中附加BA3.0 mg.L-1时,不定芽诱导率最高,丛生芽增殖壮苗培养基以MS BA3.0mg.L-1 氯化胆碱(CC)10mg.L-1为最佳,试管苗生根以MS NAA2.0mg.L-1最好。     

砀山酥梨叶片培养和植株再生

以砀山酥梨叶片为外植体,首次系统地研究了基本培养基、植物生长调节剂、碳源、暗培养时间和琼脂用量等对其再生不定芽的影响。结果表明,砀山酥梨叶片再生不定芽的适宜组合为NN69 6-BA 2.5 mg.L-1 IBA 0.3 mg.L-1 山梨醇20 g.L-1 琼脂8.0 g.L-1,暗培养20 d。叶片再生频率最高为83%,平均再生芽数2.17。叶片再生苗在生根培养基1/4 MS IBA 0.5 mg.L-1 NAA0.3 mg.L-1 蔗糖20 g.L-1 琼脂6.0 g.L-1上已经生根。     

杜梨离体培养技术的研究

本试验以一年生杜梨茎段为材料,建立其离体再生体系.结果表明,最适诱芽培养基为NN69+6-BA 1.0mg·L-1+NAA 0.01mg·L-1+IBA 0.01 mg·L-1,增值倍数达5.84,且芽苗生长健壮.继代培养的最适培养基为NN69+BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.01mg·L-1,2.0 mg·L-1的GA3能明显地促进芽的增殖和伸长生长.     

菜用大豆胚尖转化再生体系优化研究

以福建省菜用大豆新品种闽豆5号的胚尖为材料,研究次氯酸钠消毒方法及不同浓度潮霉素B培养基对不定芽的诱导和生根的影响。结果表明:以10%的次氯酸钠消毒10min为宜;芽伸长阶段潮霉素B筛选压力为7mg.L-1;生根培养基不添加6-BA效果更佳,即1/2 MS盐+1/2B5有机+3%蔗糖+0.56%琼脂+1.0mg.L-1 IBA,pH 5.8。