菊叶薯蓣茎段组织培养研究

为解决菊叶薯蓣种苗的繁育问题,用不同种类、浓度的植物生长调节剂对菊叶薯蓣幼嫩茎段进行离体培养试验,结果表明,启动培养用M S 6-BA 0.2m g/L KT 1.0m g/L NAA 0.01m g/L诱导不定芽萌芽率为100%,效果最理想;继代培养用M S 6-BA 0.8m g/L NAA 0.2m g/L诱导芽的增殖系数超过3,长势较理想;生根培养用1/2M S IBA 1.5m g/L NAA 0.3m g/L诱导生根长苗率达90%以上,对生根培养的效果最佳;采用河沙 塘泥假植菊叶薯蓣组培生根苗成活率高,生产成本降低;表明应用组培快繁技术能为菊叶薯蓣的规模化种植提供充足的优质种苗。     

菊叶薯蓣组织培养试验

<正>本试验采用植物组织培养方法对菊叶薯蓣快繁进行初步研究。选用菊叶薯蓣的茎段和茎尖作外植体进行多次试验。结果表明,适宜菊叶薯蓣外植体生长的培养基配方为:MS+NAA     

菊叶薯蓣栽培技术

菊叶薯蓣(又名墨西哥薯蓣),原产于墨西哥,是一种提取皂素合成其它皮质激素的重要原料。20世纪70年代引入云南省试种成功。因该品种皂素含量较高,其皂素含量是同等重量盾叶薯蓣的两倍。种植3年后其亩产量近5~6吨。目前生产厂家合同收购价格为每千克2.5元,平均每亩年收入近4000元     

墨西哥菊叶薯蓣的生长习性及高产栽培技术

阐述了墨西哥菊叶薯蓣的生长习性,总结了墨西哥菊叶薯蓣高产栽培技术,包括土壤选择、整地、种植时间及苗期管理、田间管理、病虫害防治、采收等方面内容,以期为墨西哥菊叶薯蓣高产栽培提供参考。     

菊叶薯蓣栽培技术

菊叶薯蓣又名墨西哥薯蓣，原产于墨西哥，20世纪70年代引入我国云南省试种成功，是一种提取皂素合成其他皮质激素的重要原料。因该品种皂素含量较高，其皂素含量是同等重量盾叶薯蓣的2倍。种植3年后其亩产量为5000～6000kg，目前生产厂家合同收购价格2．5元／kg，平均每亩年收入近4000元。是一种具有较大推广价值的薯蓣品种。     

大叶相思茎段腋芽组织培养技术初探

用4年生大叶相思枝条茎段作外植体，研究不同培养基对试管苗的诱导、增殖和生根效果，结果表明：最适宜的大叶相思枝条茎段腋芽诱导和增殖培养基为改良Ms 6 BA 0．8mg／L NAA0．2 mg／L，增殖率达3倍；生根诱导的培养基为改良 Ms IBA 0．2～0．4 mg／L NAA 0．4 mg／L，生根率达90％，试管苗移植成活率达85％．     

菊叶薯蓣和盾叶薯蓣的光合特性初探

对陕西安康试验站引种的菊叶薯蓣和当地栽种的盾叶薯蓣光合速率、蒸腾速率、光响应曲线、水分利用率等生理特性测定和分析表明:同等条件下,菊叶薯蓣的光合速率、蒸腾速率、水分利用率均大于盾叶薯蓣.菊叶薯蓣、盾叶薯蓣的光饱和点分别为800、400 μmol·m-2·s-1,菊叶薯蓣的光合能力较强.     

墨西哥菊叶薯蓣高产优质栽培技术

墨西哥菊叶薯蓣 (Dioscoreacomposita)是目前国内外筛选到的种植产量最高 ,皂甙元含量最高的种质资源之一 ,1978年引入我国云南省西双版纳热带地区 ,经过引种驯化栽培 ,在热带、南亚热带地区种植比目前国内种植的盾叶薯蓣 (黄姜 ) (DioscoreaZingibeven sis)、小花薯蓣(苦良姜) (Dilscoreaparviflora)产量高 ,栽培粗放 ,皂甙元含量高 ,具有较好的市场前景。云南省潞西市年平均气温20℃ ,全年≥10℃积温7170℃ ,年太阳辐射总量6077兆焦耳 /m2,年日照在2000～2452小时 ,无霜期300天以上 ,日温差较大 ,具有南亚热带气候资源优势 ,是墨西哥菊…     

菊叶薯蓣种植管理技术

<正>菊叶薯蓣原产于墨西哥,20世纪70年代被引种到中国云南试种成功,其深度开发的目的是合成甾体激素药物,而甾体激素的发现及成功合成,是半个世纪以来医药工业取得的最引人注目的两大进展     

桔梗茎段的组织培养及植株再生

桔梗(Platycodon grandiflorum)又名六角荷，铃铛花，包袱花等，属于桔梗科，桔梗属，为多年生草本植物，原产我国，主要分布于华南至华北，朝鲜、原苏联，远东地区和日本也有。桔梗又因花蕾膨胀时呈气球形，欧美常称它为“中国气球”。桔梗既是一种美丽的花卉，又是一种常用的中药，其根人药，有清肺清利头目，咽嗌，祛痰，止咳，清痛散结的作     

栓皮栎茎段离体培养及生化特性研究

【目的】建立高效的栓皮栎器官再生植株体系。【方法】从陕西周至西楼关栓皮栎天然林中选择4株优良结实母株(30年生以上)并采种,以沙培育苗3~4个月的实生苗茎段及4株母株幼龄及成龄茎段为外植体,比较离体条件下不同来源、不同基因型茎段增殖能力和生根能力的差异,并探讨抗氧化酶活性与增殖和生根能力的关系。【结果】相同来源的不同基因型茎段增殖培养后,其增殖茎芽数量、最长芽长及增殖叶数量无显著差异;母株幼龄茎段增殖培养后,其增殖茎芽数量、最长芽长及增殖叶数量均高于实生苗茎段和母株成龄茎段,差异达显著水平(P<0.05);相同来源的不同基因型茎段生根培养后,其生根率和平均每株根数量无显著差异;母株幼龄茎段生根率和平均每株根数量高于实生苗茎段和母株成龄茎段,差异达显著水平(P<0.05);相同来源的不同基因型茎段在各培养阶段,抗氧化酶活性无显著差异;3个来源茎段抗氧化酶活性在第2次增殖培养后及生根培养后均高于增殖培养的其他阶段,差异达显著水平(P<0.05)。【结论】母株幼龄茎段是建立栓皮栎器官高效再生植株体系最佳的外植体来源;抗氧化酶活性与增殖能力和生根能力有一定的关系。     

Adventitious shoot regeneration from the leaves of some pear varieties (Pyrus spp.) grown in vitro

The pear (Pyrus spp.) is one of the most important temperate fruit crops. A complete protocol for adventitious shoot regeneration was developed from the leaves of four pear varieties grown in vitro: Abbe Fetel, Yali, Packham’s Triumph and Aikansui, and the Chinese rootstock variety Duli. Shoot explants were collected from the field and cultured in vitro in Murashige and Skoog (MS) media supplemented with 1.0 mg·L⁻¹ 6-benzylaminopurine (BA) and 0.1 mg·L⁻¹ indole-3-butyric acid (IBA). After four weeks, leaf explants of all 5 varieties grown in vitro were excised and cultured in MS media supplemented with 0.0 mg·L⁻¹, 0.2mg·L⁻¹, 0.5 mg·L⁻¹, 1.0 mg·L⁻¹ and 2.0 mg·L⁻¹ naphthaleneacetic acid (NAA) and 5.0 mg·L⁻¹ BA or with 1.0 mg·L⁻¹, 2.0 mg·L⁻¹ and 4.0 mg·L⁻¹ thidiazuron (TDZ). The cultures were maintained in darkness for 21 days for shoot induction in the shoot induction medium (IM), then transferred to the shoot expression medium (EM) in 1.0 mg·L⁻¹ TDZ without any auxins and kept in a growth room at (25±2)°C under a 16/8 h light/dark photoperiod regime for 8 weeks. Finally, the shoots were transferred to the MS shoot elongation medium (SEM) supplemented with 0.2 mg·L⁻¹ BA, 0.1 mg·L⁻¹ IBA and 0.2 mg·L⁻¹ gibberellic acid (GA₃). A combination of TDZ and NAA had a significant effect on the number of shoot regenerations in all 5 tested varieties. The maximum mean number of shoots and maximum number of shoots per leaf obtained from Yali variety were 11.8 (P⩽0.001) and 22, followed by Aikansui with 6.6 (P⩽0.001) and 4.6, and Duli with 8 (P⩽0.001) and 12, all arising from the combination of 0.2 mg·L⁻¹ NAA with 1.0 mg·L⁻¹ TDZ. For Packham’s Triumph and Abbe Fetel, the maximum mean number of shoots and maximum number of shoots per leaf were 5.6 (P⩽0.001), 4.8 and 8 (P⩽0.001), and 11, respectively, from the combination of NAA (1.0 mg·L⁻¹) and TDZ (2.0 mg·L⁻¹). Abbe Fetel was the only variety which produced significantly higher adventitious shoots from the two different combinations of 1.0 mg·L⁻¹ NAA and 5.0 mg·L⁻¹ BA (P⩽0.05), and 2.0 mg·L⁻¹ NAA and 5.0 mg·L⁻¹ BA (P⩽0.01). Some of the most prominent problems associated with shoot proliferation and regeneration were also observed and discussed in this paper.     

北碚榕组培不定芽的两段生根

以北碚榕组培不定芽为外植体,采用两段生根法生根(在琼脂培养基中诱导不定根发生,在近黑暗多孔隙基质中完成根系发育)并将其与一般生根法比较,培养30d后统计2种方法的生根率,测定生根苗生长与生理指标;生根苗移栽30d后统计移栽成活率,测定移栽苗生长指标.试验结果表明:二者生根率均为100%;与一般生根法相比,两段生根后生根苗的根尖数、总根长、根总体积和根平均直径分别提高301.42%,27.85%,123.53%和9.68%;生根苗的株高和叶片增量分别提高307.89%和83.33%,叶绿素含量和硝酸还原酶活性分别提高13.09%和297.29%;生根苗的移栽成活率(100%)、移栽苗的株高和叶片增量分别提高15.00%、41.12%和23.81%,且二者间差异有统计学意义.实验结果证明,两段生根法显著优于一般生根法.所得试管苗根系发达,移栽成活率更高,生长状态更佳.两段生根法对于其它植物的组培生根有应用价值.     

箭杆杨组织培养再生体系的建立

【目的】探讨常温下适宜箭杆杨试管苗腋芽增殖、生根的最佳培养条件。【方法】以MS培养为基本培养基,附加不同浓度的吲哚丁酸(IBA)、萘乙酸(NAA)以及6-氨苄基腺嘌呤(6-BA)组成试验培养基,对箭杆杨组织进行培养,观察其生根情况和愈伤组织诱导情况。【结果】箭杆杨脱分化最佳培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,该条件下的愈伤组织诱导率为90%;不定芽分化诱导培养基为:1/2MS+0.1 mg/L IBA+0.5 mg/L6-BA,该条件下的诱导分化率为67.1%;芽增殖培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,该条件下的增殖数为5.8;最佳生根培养基为:1/2MS+1.0 mg/L IBA,该条件下的生根率为81.3%。【结论】建立了箭杆杨组织培养再生体系,为其种质资源的试管保存奠定了基础。     

绒毛狼尾草幼穗的愈伤组织诱导与植株再生

以绒毛狼尾草幼嫩花穗为材料,研究了培养基种类和2,4-D对愈伤组织诱导以及6-BA对分化的影响。结果表明,MS较N6培养基适合绒毛狼尾草的组织培养。在附加3 mg·L-1 2,4-D的MS培养基中愈伤组织诱导率最高,达到100%。分化培养基以附加1.0 mg·L-1 6-BA的MS培养基为最佳,分化率为44.0%。在1/2MS培养基中附加0.5 mg·L-1 NAA和0.3 mg·L-1活性炭进行生根培养,根系生长健壮,生根率达100%。     

甘蓝根系再生植株技术研究

【目的】研究甘蓝根系再生植株技术,为小孢子单胚再生双单倍体(DH)植株当年快速扩繁提供参考。【方法】以甘蓝DH15-1A的根段为外植体,设置预培养后再进行共培养和直接共培养2种培养方式,共培养的培养基为MS+4.5mg/L 6-BA+6mg/L AgNO_3,再向其中添加不同质量浓度(0.045,0.03,0.025,0.018和0.015mg/L)的NAA,筛选适宜的培养方式和NAA质量浓度;选择根龄分别为15,20和25d的DH15-1A的根段在适宜培养基上培养,比较根龄的诱导效果;以DH15-1A、DH15-2B和DH15-3C无菌植株苗的须根作为外植体,分析基因型对植株再生的影响。【结果】采用直接共培养并选用MS+0.030mg/L NAA+4.5mg/L 6-BA+6mg/L AgNO_3培养基可获得甘蓝根段诱导培养的最佳效果,其中愈伤诱导率、外植体诱导率和不定芽诱导率均最高,分别达100.0%,90.0%和430.0%,培养3周后分化芽生长健壮,叶片翠绿;根龄20d外植体的愈伤诱导率最高,达96.0%,并且愈伤分化芽点多,芽点周围褐化少,外植体诱导率和不定芽诱导率均最高,分别为84.0%和420.0%。DH植株基因型是决定根系再生植株效果的一个主要因素,3个供试基因型中,以DH15-2B根段的再生效果最好,愈伤诱导率、外植体诱导率和不定芽诱导率分别为83.3%,76.7%和430.0%。【结论】选用DH15-2B基因型甘蓝20d的根段在MS+0.03mg/LNAA+4.5mg/L 6-BA+6mg/L AgNO_3培养基上培养,最有利于根段再生植株形成,植株再生率高达100%。     

扭果花旗杆组织培养与再生体系的建立

【目的】以扭果花旗杆(Dontostemon elegans)根和下胚轴为外植体,建立扭果花旗杆组织培养体系,为后续遗传转化体系的建立提供技术基础。【方法】以MS培养基为基础培养基,利用萘乙酸(NAA)探究根和下胚轴直接诱导不定芽情况,利用2,4 二氯苯氧乙酸(2,4-D)、6-苄氨基嘌呤(6-BA)、NAA、苯基噻二唑基脲(TDZ)、吲哚丁酸(IBA)进行愈伤组织诱导及分化和不定芽生根试验,统计愈伤组织诱导及分化和不定芽生根情况,确定扭果花旗杆组培体系最佳培养基类型。【结果】（1）由根和下胚轴直接诱导不定芽的最适培养基分别为MS+0.3 mg/L NAA和MS+0.6 mg/L NAA,直接诱导不定芽的最佳外植体为根。（2）扭果花旗杆根和下胚轴都能诱导愈伤组织,其中根系诱导愈伤组织速度最快且状态最佳,其次为下胚轴。根系愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+1.0 mg/L 2,4-D+0.2 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,诱导率可达100.00%;下胚轴愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+0.3 mg/L 2,4-D+1.5 mg/L 6-BA+1.5 mg/L NAA,诱导率可达100.00%。（3）根系和下胚轴的最佳愈伤组织分化培养基均为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA,分化率分别为100.00%和86.66%。（4）最佳生根培养基为MS+0.5 mg/L IBA,生根率可达50%以上。（5）将组培苗移至土壤后,在光照培养室培养15 d,其存活率可达83.33%。【结论】建立的扭果花旗杆组培体系可获得与实生苗形态一致的组培苗,为扭果花旗杆遗传转化体系的建立奠定了技术基础。     

香樟涌金的组织培养和植株再生

[目的]探讨香樟涌金茎段组培快速繁殖方法,为工厂化生产香樟涌金组培苗提供技术支持.[方法]以香樟涌金带腋芽茎段(长1.0～1.5 cm)为外植体,进行腋芽诱导、丛生芽增殖及植株再生研究.[结果]香樟涌金腋芽在诱导培养基MS+6-BA l.0 mg/L+IBA 0.02 mg/L中萌发率达100.0％,并能正常伸长展叶;在MS+6-BA 3.0 mg/L+IAA 0.05mg/L培养基中腋芽能正常生长并增殖,平均有效芽数6.5个;在1/2MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.03 mg/L生根培养基中培养30 d后,有87.6％的丛生芽生根,移栽成活率达90.0％.[结论]MS+6-BA l.0 mg/L+IBA 0.02 mg/L、MS+6-BA 3.0mg/L+IAA 0.05 mg/L、1/2MS+IBA 0.05 mg/L+NAA 0.03 mg/L可分别作为香樟涌金茎段腋芽最佳的诱导培养基、适宜的继代与增殖培养基和相对适合的生根培养基.     

鄂西红豆离体培养及植株再生研究

【目的】对外植体采用特殊处理方法,并对不同培养时期的基本培养基进行调整,以建立高效、快速、繁殖系数高的鄂西红豆再生技术体系。【方法】以成熟度为80%的鄂西红豆种子为外植体,通过向培养基中添加不同质量浓度和配比的植物生长调节物质,筛选适宜的芽诱导培养基、继代增殖培养基、壮苗培养基和生根培养基,并对诱导生根培养的试管苗进行炼苗移栽,观察其成活率。【结果】最适芽诱导培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+KT0.5mg/L+NAA 0.5mg/L+维生素B10.1mg/L+蔗糖30g/L+琼脂6.5g/L+活性炭1.5g/L,诱导率达85%;最适芽继代增殖培养基为WPM+6-BA 1.5 mg/L+KT 0.3 mg/L+TDZ 0.02 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖30g/L+琼脂6.5g/L+活性炭1.5g/L;无根苗壮苗培养基为WPM+NAA 0.5 mg/L+IBA 1.0 mg/L+IAA 1.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂6.5g/L+活性炭1.5g/L。当无根苗生长到4~5cm时形成完整植株并转接到生根培养基上诱导生根,最适生根培养基为1/2WPM+IBA 0.5mg/L+NAA 1.5mg/L+新型基因诱导生根剂0.05mg/L+蔗糖30g/L+琼脂6.5g/L+活性炭1.5g/L。【结论】建立的鄂西红豆再生技术体系可获得75%~85%的正常萌芽,生根率达85%以上,瓶苗移栽成活率达90%。