石斛兰“绿色星辰×出水芙蓉”杂交种子无菌萌发与组培快繁研究

[目的]研究石斛兰＂绿色星辰×出水芙蓉＂杂交种子无菌萌发与组培快繁。[方法]以＂绿色星辰＂为母本、＂出水芙蓉＂为父本进行杂交,并对其杂交种子进行了离体培养和组培快繁。[结果]石斛兰杂交种＂绿色星辰×出水芙蓉＂的F1代种子在改良Knudson培养基上（附加1.00 mg/L 6-BA、1.00 mg/L NAA和10.0%熟香蕉泥）可获得理想的无菌萌发效果,且原球茎在该培养基上也能较快增殖。以1/2MS最适合于该杂种石斛兰F1代无菌实生苗的组培快繁;8种供试培养基用于增殖培养的效果为：1/2MS〉MS〉1/3MS〉1/4MS≈N6〉改良Knudson≈B5〉H。NAA用于杂种石斛兰＂绿色星辰×出水芙蓉＂F1代无菌实生苗的生根壮苗效果要优于IBA;NAA的推荐浓度为2.00 mg/L。[结论]为今后的新品种选育提供了育种材料。     

罗布麻组织培养快繁技术体系研究

[目的]研究罗布麻组织培养快繁技术,为其产业化栽培提供种苗来源。[方法]通过处理罗布麻种子获得无菌苗,切取无菌苗子叶、胚轴和茎尖置于不同激素配比的培养基上,比较不同激素浓度组合对子叶和胚轴分化、茎尖快繁、再生芽快繁和快繁苗生根的影响。[结果]子叶和胚轴分化形成再生芽的最佳培养基分别为MS+2.0 mg/L BA+0.03 mg/L NAA和MS+0.07 mg/L NAA;MS+2.0 mg/LBA+0.02 mg/L NAA为茎尖快繁的最佳培养基;MS+1.9 mg/L BA+1.7 mg/L NAA为再生芽快繁的最佳培养基;1/2MS+0.6 mg/LNAA为快繁苗的最佳生根培养基。[结论]该研究筛选出了罗布麻组培快繁技术体系的培养基激素配比,为罗布麻产业化栽培提供了技术保障。     

台尔曼忍冬的组织培养与快速繁殖

[目的]建立台尔曼忍冬的组织培养和快速繁殖技术体系,为台尔曼忍冬优良株系的快速繁殖提供依据。[方法]以台尔曼忍冬未木质化或半木质化茎段为外植体,用不同浓度的NAA与IBA培养基进行组培快繁研究。[结果]在MS＋1.0 mg/L 6-BA＋0.1 mg/LNAA培养基上培养8～10 d后开始有芽萌动;MS＋0.8 mg/L 6-BA＋0.1 mg/L NAA培养基对增殖效果较好;生根培养基为1/2MS＋0.8mg/L IBA＋0.1 mg/L NAA,生根率达78.5%。[结论]该研究建立的台尔曼忍冬组培快繁体系稳定性好,增殖速度快。     

芝樱组培与快繁研究

[目的]建立芝樱的组织培养和快速繁殖技术体系,为芝樱的快速繁殖及种质资源离体保存提供依据。[方法]以芝樱幼嫩茎段为外植体,筛选适合芝樱组培快繁不同生长阶段的最适培养基。[结果]适合芝樱启动培养的培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1mg/L,增殖培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L,生根培养基为1/2 MS+IBA 0.5 mg/L+蔗糖15 mg/L+琼脂0.7%(pH 5.8～6.0)。[结论]该研究建立的芝樱组培快繁体系稳定性好,增殖速度快。     

‘火焰’品种彩色马蹄莲组培快繁体系的建立及优化

[目的]建立并优化‘火焰’品种彩色马蹄莲组培快繁体系。[方法]以‘火焰’品种彩色马蹄莲的球茎嫩芽为试验材料,对其组织培养无性繁殖体系进行研究。[结果]最佳诱导培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/LNAA;最佳增殖培养基为MS+2.0 mg/L6-BA+0.2 mg/L NAA;植株再生最适合培养基为1/2MS+0.2 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;最适生根培养基为1/2MS+0.2 mg/L NAA+2.0 g/L活性炭。[结论]该研究建立了‘火焰’品种彩色马蹄莲的组培快繁体系,为其快速繁殖及产业化生产提供了技术和理论依据。     

黑叶观音莲组培快繁技术体系研究

[目的]建立黑叶观音莲组培快繁技术体系。[方法]以黑叶观音莲的顶芽作为外植体,通过对外植体的消毒时间、不定芽诱导、增殖继代和生根培养等环节技术探究,建立黑叶观音莲组培快繁技术体系。[结果]最佳的外植体消毒时间为19min,污染率为5.6%,褐变率为4.4%;培养基MS+6-BA 5.00 mg/L+NAA 0.20 mg/L最适合不定芽的诱导,诱导率62.2%;最佳的丛生芽增殖培养基为MS+6-BA 3.50 mg/L+NAA 0.30 mg/L,增殖倍数为4.3;最佳的生根培养基为1/2MS+NAA 0.20 mg/L+0.50 g/L活性炭,生根率达100%。[结论]该研究建立了黑叶观音莲组培快繁技术体系,为其工厂化生产提供了理论依据。     

橡皮树组织培养快繁体系的建立

[目的]利用组培快繁技术培育橡皮树,以满足花卉市场对该植物的需求。[方法]以橡皮树茎尖为外植体,选择不同培养基和激素配比,初步建立橡皮树组培快繁体系,并进行对比试验。[结果]结果表明,愈伤诱导和芽分化培养基为:MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA0.01 mg/L,丛生芽增殖培养基为:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.01 mg/L,最佳生根培养基为1/2 MS+0.01 mg/L NAA+0.5 mg/L IBA。[结论]该研究为橡皮树的规模化生产提供了实践基础,但橡皮树的体细胞胚的诱导及萌发技术仍需改进。     

江西野生白花凤仙花组培快繁技术研究

[目的]建立江西野生白花凤仙花组培快繁体系。[方法]选取江西野生白花凤仙花具有顶芽或腋芽的茎段为外植体,诱导芽体萌发,进行快繁培养。通过试验对比分别筛选出诱导芽分化和诱导生根的最佳培养基。[结果]不同激素水平对江西野生白花凤仙花组培苗的生长有显著影响。其中最适宜的诱导培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;最适宜的生根培养基为IBA 0.6 mg/L+NAA 1.0 mg/L;江西野生白花凤仙花组培快繁的最佳基本培养基是MS培养基。[结论]为江西野生白花凤仙花种质资源保存和优质种苗的工厂化生产提供技术参考。     

生石花植株离体再生及组培快繁研究

[目的]建立生石花植株离体再生及组培快繁体系。[方法]以生石花成熟种子为外植体,研究生石花组培快繁技术。[结果]萌发后的幼苗在MS+0.50 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA培养基上被成功诱导出愈伤组织;不添加6-BA的MS培养基有利于愈伤组织的分化,不定芽诱导率为4.65;在MS+0.05 mg/L 6-BA+0.01 mg/L NAA培养基上不定芽增殖率较高,可达5.60。[结论]建立了生石花植株离体再生及快繁体系,有利于生石花种质资源保护和工厂化生产。     

高原野生濒危药材独一味的组培快繁技术研究

[目的]探究独一味组培快繁技术体系,保护并合理利用独一味资源.[方法]选取独一味无菌苗的子叶、嫩芽和幼根为外植体,采用不同类型的培养基和不同种类的植物生长调节剂进行组培快繁研究.[结果]独一味幼叶、嫩芽和幼根均可诱导出愈伤组织,其中幼根的愈伤组织诱导率最高,达93.5％,出愈时间为7d,最适诱导培养基为MS ＋1.0mg/L2,4-D＋ 0.5 mg/L 6-BA＋ 0.5 mg/L NAA;丛生芽诱导的适宜培养基为MS＋ 1.0 mg/L 6-BA＋ 0.5 mg/L NAA,诱导率达88.8％;生根的适宜培养基为1/2 MS＋ 0.5 mg/L NAA,诱导率高达97.9％.[结论]利用组织培养技术能够实现独一味的快速繁殖,为独一味资源的可持续利用提供参考.     

罗布麻组织培养快繁技术体系研究(英文)

[目的]研究罗布麻组织培养快繁技术,为其产业化栽培提供种苗来源。[方法]通过处理罗布麻种子获得无菌苗,切取无菌苗子叶、胚轴和茎尖置于不同激素配比的培养基上,比较不同激素浓度组合对子叶和胚轴分化、茎尖快繁、再生芽快繁和快繁苗生根的影响。[结果]子叶和胚轴分化形成再生芽的最佳培养基分别为MS+2.0mg/LBA+0.03mg/LNAA和MS+0.07mg/LNAA;MS+2.0mg/LBA+0.02mg/LNAA为茎尖快繁的最佳培养基;MS+1.9mg/LBA+1.7mg/LNAA为再生芽快繁的最佳培养基;1/2MS+0.6mg/LNAA为快繁苗的最佳生根培养基。[结论]该研究筛选出了罗布麻组培快繁技术体系的培养基激素配比,为罗布麻产业化栽培提供了技术保障。     

新疆紫草快繁技术研究

[目的]建立新疆紫草组培快繁技术体系.[方法]以新疆紫草无菌苗的茎尖为外植体,筛选适合茎尖萌发、增殖、生根的激素组合.[结果]茎尖最佳萌发培养基为MS+TDZ 1.0 mg/L,其萌发率为100;.芽增殖培养基为MS+TDZ 1.0 mg/L,芽增殖倍数为13.50倍,继代壮苗培养基为MS+NAA 0.3 mg/L +6-BA 0.5 mg/L,生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,生根率为84;.降低6-BA浓度到0.05 mg/L可大幅降低玻璃化发生率.经过此培养基继代后,再在原生根配方中生根,生根率提高到95.32;.[结论]茎尖是新疆紫草快繁的最佳外植体.     

四季青景天组培与快繁研究

[目的]建立四季青景天的组织培养和快速繁殖技术体系,为四季青景天的快速繁殖及种质资源离体保存提供依据。[方法]以四季青景天幼嫩茎段为外植体,筛选适合四季青景天组培快繁不同生长阶段的最适培养基。[结果]适合四季青景天启动培养的培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 mg/L+琼脂0.6%(pH 5.8～6.0),增殖培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1mg/L+蔗糖30 mg/L+琼脂0.6%(pH 5.8～6.0);生根培养基为1/2 MS+IBA 1.0 mg/L+蔗糖15 mg/L+琼脂0.7%(pH 5.8～6.0)。[结论]该研究建立的四季青景天组培快繁体系稳定性好,增殖速度快。     

铁皮石斛组培快繁技术

[目的]研究铁皮石斛的组培快繁技术.[方法]以铁皮石斛无菌苗的茎段为外植体,研究不同外源激素及其配比对铁皮石斛芽诱导及生根的影响.[结果]芽增殖最佳培养基为MS＋5 mg/L 6-BA＋ 0.4 mg/L NAA,此时外植体生长健壮,芽分化数和诱导率较高;最佳生根培养基为MS ＋0.5 mg/L IBA ＋0.5 mg/L NAA.[结论]该研究为铁皮石斛种苗的工业化生产奠定了基础.     

生姜芽的组培快繁

[目的]寻找生姜芽组培快繁的最佳方案。[方法]以MS为基础培养基,设计生姜芽组培快繁的两条途径,选择生姜芽组培快繁的最佳培养基配方。[结果]结果表明,茎尖→芽最适培养基为:改良MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;茎尖→愈伤组织→芽,茎尖诱导愈伤组织的最适培养基为:改良MS+2,4-D 2.0 mg/L+KT 1.0 mg/L,愈伤组织诱导芽分化的最适培养基为:改良MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L。采用超净工作台上用75.0%酒精30 s+10.0%NaClO 15 min+0.1%HgCl210 min+50 ug/L青霉素与台外消毒相结合对外植体进行表面消毒,去污效果最佳。[结论]对愈伤组织进行切割并继代培养后再诱导芽分化,可获得较大的增殖倍数。     

柳叶栒子组培快繁体系的建立

以柳叶栒子的实生苗为试验材料,建立无性快繁体系。结果表明,适宜的初代培养基为MS+0. 8 mg/L6-苄氨基腺嘌呤(6-BA)+0. 02 mg/Lα-萘乙酸(NAA)+1. 2 mg/L PPM(plant preservative mixture,植物组培抗菌剂);最适宜柳叶栒子继代增殖的培养基是MS+1. 0 mg/L 6-BA;最适宜柳叶栒子的生根培养基是F+0. 05 mg/L NAA;生根苗驯化移栽后的成活率可达72%以上。     

虎尾兰组培快繁技术研究

[目的]寻求虎尾兰组培快繁的最佳培养基。[方法]以虎尾兰幼叶为外植体,采用2种不同浓度的消毒剂进行处理,探讨外植体最佳消毒方法。以MS为基本培养基,研究添加不同浓度的2,4-D、6-BA和NAA对虎尾兰幼叶愈伤组织诱导、芽分化诱导及生根的影响,确定虎尾兰组培快繁的最佳培养基。[结果]虎尾兰外植体最佳消毒方式为70%酒精10 s＋0.1%升汞5 min,外植体污染率为7.7%;虎尾兰愈伤组织诱导最适宜培养基为MS＋0.25 mg/L 2,4-D,出愈率为100%;诱导芽分化的最适宜培养基为MS＋0.5 mg/L 2,4-D＋2.0 mg/L 6-BA,分化率为76%;根培养的最适宜培养基为MS＋4.0 mg/L NAA,生根率达到100%,试管苗成活率达95%。[结论]该研究为虎尾兰组培快繁的大规模工厂化生产提供了科学依据。     

萱草种子无菌培养及快繁技术研究

通过对萱草种子进行了无菌培养,研究其快繁技术.结果表明,萱草的组培快繁中,播种芽苗最佳脱分化诱导培养基为 MS BA 0.5mg·l-1 NAA 0.2 mg·l-1;最佳再分化培养基为 MS BA 0.5mg·l-1;最佳壮苗培养基为MS BA0.2mg·l-1;最佳生根培养基为1/2MS NAA 0.5mg·l-1;最佳炼苗基质为草炭 珍珠岩(7:3).     

金钗石斛的离体快繁体系研究

[目的]研究金钗石斛的离体快繁体系。[方法]以金钗石斛的种子为材料,采用组培法进行离体培养。[结果]适宜于金钗石斛圆球茎诱导增殖及芽分化的培养基为:MS+1 mg/L BA+0.02 mg/L NAA+浓度2%马铃薯+浓度3%白糖,增殖系数为7～10。生根培养基为1/2MS+0.2 mg/L BA+0.2 mg/L NAA+0.2 mg/L GA+浓度2%香蕉+浓度2%马铃薯+浓度2%白糖;生根率达98%以上,移栽成活率在90%左右。[结论]该方法对金钗石斛的离体快繁体系进行了研究,为组培繁殖金钗石斛种苗提供了参考。     

优良绣球品种“尼克兰”培养技术研究

[目的]提高优良绣球属花卉品种"尼克兰"的繁殖速度。[方法]选用"尼克兰"健壮幼嫩茎尖作为组培试验材料,进行组培快繁的研究。[结果]结果表明:诱导愈伤组织形成的培养基组合为MS+BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,有利于愈伤组织生长;不定芽分化的培养基为MS+BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,有利于不定芽的分化;而4/5MS+BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L有利于组培苗不定根的形成。[结论]在"尼克兰"的组培繁殖中,重要的是注意茎尖和环境的消毒。