木霉生防菌T25与T55原生质体形成与再生条件的研究

通过不同菌龄、酶液、缓冲液?稳定剂系统、酶解时间、再生培养基组合等条件对木霉T25、T55原生质体制备和再生的影响研究,结果表明,木霉T25、T55原生质体制备和再生的最适条件为:崩溃酶13 mg/mL,0.2 mol/L磷酸缓冲液(PBS),pH5.8和0.6 mol/L NaC l组成的缓冲液稳定系统,木霉T25菌龄为20 h,木霉T55菌龄为26 h的菌丝体在30℃下,酶解3h后,可分别获得原生质体数量9.0×106个/mL、6.33×106个/mL,两菌的再生培养基都是以加入0.5%酵母膏和0.5%泛酸钙的改良Czapek与NaC l的组合培养基,T25与T55的再生率分别为1.150%和0.785%。     

桦褐孔菌原生质体制备与再生

采用正交设计方法对桦褐孔菌原生质体最佳制备与再生条件从酶条件、酶解时间、温度等5个方面进行了研究。试验结果表明:其原生质体制备最佳条件是以液体静置培养6d的菌丝体,0.6mol·L-1KCl作为渗透压稳定剂,在30g·L-1溶壁酶作用下,32℃酶解4h,制备率达2.675×107个·mL-1;再生最佳条件是液体静置培养10d的菌丝体,0.6mol·L-1NaCl为渗透压稳定剂,在30g·L-1溶壁酶作用下,32℃酶解2h,再生率为6.83%。     

美味蘑菇原生质体制备与再生研究

采用正交试验方法对美味蘑菇原生质体制备与再生最佳体系进行筛选,包括酶条件、渗透压稳定剂、菌龄、酶解的时间及温度。结果表明,原生质体最佳制备条件为液体静置培养12d菌丝体,0.6mol·L-1NaCl作为渗透压稳定剂,在2%溶壁酶和3%蜗牛酶作用下,28℃酶解3h,原生质体制备率为3.6×106个·mL-1;最佳再生条件为液体静置培养12d菌丝体,0.6mol·L-1MgSO4·7H2O作为渗透压稳定剂,在2%溶壁酶和1%蜗牛酶作用下,35℃酶解1.5h,原生质体再生率为3.01%。     

里氏木霉DWC原生质体制备条件的研究

对影响里氏木霉 (Trichodermareesei)DWC原生质体制备和再生的条件 ,包括菌龄、水解酶液的种类及浓度、酶解温度、酶解时间、再生培养基的稳渗剂进行了研究。结果表明 :当菌龄为 1 0h ,采用 2 %纤维素酶和 2 %蜗牛酶混合液 ,酶解温度 30℃ ,酶解时间 90min ,用 0 .6mol·L- 1 蔗糖作再生培养基的稳渗剂 ,原生质体的形成数为60万个·L- 1 ,原生质体再生率为 1 0 .1 %。     

绿色木霉菌T23原生质体的制备和再生

试验研究了绿色木霉T23菌株原生质体制备及再生的适宜条件,并对原生质体的释放和再生过程进行了形态观察。结果表明:绿色木霉T23菌株原生质体制备的最佳条件:菌龄为24 h,酶浓度为15 mg/mL,酶解时间为3~4 h,酶解温度为30~35℃。观察到木霉菌以菌丝断裂方式释放原生质体,以2种方式进行再生。     

CryK13V基因对绿色木霉原生质体的转化

将Cry基因的13位赖氨酸(K)突变成缬氨酸(V)的突变基因CryK13V,构建于pCSN43载体,完成绿色木霉转化载体pCSNTCCm的构建.在研究绿色木霉(Trichoderma viride)原生质体形成和再生基础上,初步研究了绿色木霉转化条件.结果表明,绿色木霉原生质体形成的合适条件为:pH 6.98磷酸盐缓冲液加入4 mg·mL-1glucanex,培养24 h的菌丝,40 r·min-1振荡条件下30℃酶解4 h,原生质体产量达到4.7×107个·mg-1.原生质体在0.3 mol·L-1肌醇和0.3 mol·L-1KCl的CM培养基上再生率为14.5%.用限制酶XhoⅠ介导将带有潮霉素抗性标记的CryK13V基因转化到绿色木霉中,转化率为每微克DNA得到1～2个转化子,转化子稳定性和PCR鉴定结果表明,外源基因已转入受体菌绿色木霉中.     

菌核侧耳原生质体制备再生的研究

采用正交试验法,对菌核侧耳原生质体制备再生条件进行优化。结果表明,菌核侧耳原生质体制备最佳条件为:取培养3d的菌丝体,以0.6mol·L-1甘露醇作为渗稳剂,在1.5%溶壁酶的酶液中,30℃酶解1h,其原生质体得率最高,可达1.19×107。最佳再生条件为:取培养9d的菌丝体,利用0.6mol·L-1的蔗糖作为渗稳剂,在1.0%L+2.0%C+1.0%S的酶液中,36℃下酶解4h,其原生质体的再生率最高,可达2.43%。     

产纤维素酶原生质体形成和再生条件选择

研究了4种营养缺陷型产纤维素酶的原生质体形成和再生条件。结果表明,它们原生质体形成条件均以0．2mol.L^-1（pH5.8)磷酸缓冲液为好。绿色木霉（Trichoderma viride)UV2-11和另一未定木霉（T．sp.)UV2-2以0．2mol.L^-1KCl的渗透稳定剂为好,菌丝菌龄分别为20,18－20h;康宁木霉（T.Toningii)UV2-15以0．6mol.L^-1NaCl的渗透稳定剂为好,菌丝菌龄均为16－20h,酶解时间均为2－3h。原生质体再生培养基以加入0．5％酵母膏和0．5％泛酸钙钙的改良Czapek培养基效果好,用0．7mol.L^-1KCl和NaCl作为渗透稳定剂。菌株原生质体的生率较高。     

黑木耳原生质体制备及再生的研究

文章用浓度为0.6mol·L-1的MgSO4·7H2O渗透压稳定剂配制浓度为1.5%的溶壁酶,在pH6.0,30℃条件下酶解3h,黑木耳原生质体产量达到最高值为9.2×106个·mL-1。最适合原生质体再生的培养基配方为:马铃薯20%,葡萄糖2%,MgSO4·7H2O0.15%,蛋白胨0.1%,KH2PO40.1%,琼脂2%,甘露醇0.6mol·L-1,在此培养基中的再生率为33.09%。     

木霉菌T23菌株原生质体制备及再生研究

本文研究了木霉菌T23菌株原生质体制备及再生条件,并对原生质体的释放和再生过程进行了系统的观察。结果表明,木霉菌T23菌株原生质体制备的最佳条件:菌龄为24h,裂解酶采用崩溃酶,酶浓度为15mg.ml-1,酶解时间在3～4h之间,酶解温度以30～35℃时最为适合。观察到木霉菌以菌丝断裂方式释放原生质体,以产生不规则突出的方式进行再生。     

T优6135

审定情况：2004年通过国家审定，审定编号：同审稻2004034；2005年参加长江中下游中籼迟熟组续试并同时进行生产试验。     

智利小植绥螨对土耳其斯坦叶螨、截形叶螨、朱砂叶螨的捕食作用

[目的]研究智利小植绥螨(Phytoseiulus persimilis)雌成螨对新疆三种主要害螨土耳其斯坦叶螨(Tetranychus turkestani Ugarov et Nikolski)、截形叶螨(Tetranychus truncatctus Ehara)、朱砂叶螨(Tetranychus cinnabarinus)的捕食功能反应,以及智利小植绥螨个体之间捕食的干扰反应.[方法]在27℃条件下,采用实验生态学方法,用HoUingⅡ型圆盘方程进行拟合.[结果]智利小植绥螨雌成螨和若螨对的反应均属于HollingⅡ型.智利小植绥螨雌成螨的捕食能力(a/Th值)远大于若螨;智利小植绥螨雌成螨对土耳其斯坦叶螨的攻击率最高为0.665,对朱砂叶螨的攻击率最低为0.214;对土耳其斯坦叶螨的捕食能力最强为10.726,对朱砂叶螨的捕食能力最弱为3.754;智利小植绥螨的寻找效应随着天敌密度的增加而降低.[结论]智利小植绥螨对土耳其斯坦叶螨、截形叶螨、朱砂叶螨捕食作用均属于HollingⅡ型,其捕食作用同时受到猎物密度和自身密度的影响.     

太空甜椒T100

太空甜椒T100是郑州市太空种苗开发部与中国空间技术研究院合作,由神舟三号宇宙飞船搭载,经过7天的轨道运行,受太空环境诱变而发生基因变异的甜椒新品种.这是目前为止我国利用宇宙飞船搭载技术培育成功的第一个甜椒品种.……     

Identification of a T helper cell-derived lymphokine that activates resting T lymphocytes

A novel lymphokine with apparent molecular size of 10 to 12 kilodaltons is secreted from helper T cell clones within hours after cross-linking their T cell antigen-MHC (major histocompatibility complex) receptors (T3-Ti). This lymphokine, termed interleukin-4A (IL-4A), stimulates resting lymphocytes by binding to a surface component (or components) of the alternative T11 pathway and subsequently by inducing interleukin-2 (IL-2) receptors. The activation process is neither dependent on antigen specificities of the recruited population or the presence of macrophages. It appears, therefore, that IL-4A is a mediator involved in amplifying the T cell immune response.     

The T cell receptor

The primary structure of T cell receptor proteins and genes is well understood. Immunologists are now trying to understand the properties of these interesting molecules. Evidence suggests that T cell alpha beta receptors recognize a complex of an antigen-derived peptide bound to one of the cell-surface products of the major histocompatibility complex (MHC) genes. It is likely that alpha beta receptors and MHC proteins have coevolved to have some affinity for each other. During T cell development in the thymus, cells bearing self-reactive receptors are deleted by the mechanisms of tolerance, and cells are preferentially allowed to mature if they bear receptors that will be able to recognize antigen plus self-MHC after they have become full-fledged T cells. Some explanations for these phenomena have been tested, but no satisfactory theory can yet be proposed to account for them.