番茄离体培养及快繁殖技术研究

以番茄种子为试材,采用正交实验方法配制不同的培养基,研究不同浓度的6-BA、NAA、IBA对不定芽诱导及丛生芽增殖的影响.结果表明:愈伤组织诱导的适宜培养基为:MS+6-BA 2.0mg/L+IBA 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L;不定芽诱导适宜培养基为:MS+6-BA3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L;丛生芽增殖的适宜培养基为:MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.01 mg/L+蔗糖30 g/L;生根培养基为:1/2 MS+NAA 0.6mg/L+蔗糖30 g/L.     

秋子梨叶片植株再生研究

以秋子梨的春梢茎段和无菌叶片为试材,探讨不同激素配方对叶片再生的影响。结果表明,适宜诱导外植体不定芽的初代培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA2.0mg/L+IBA0.5mg/L+GA30.6mg/L;增殖培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA1.0mg/L+IAA0.6mg/L+GA30.6mg/L;诱导叶片产生愈伤组织培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA6.0mg/L+NAA1.5mg/L+TDZ1.0mg/L,诱导不定梢培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA5.0mg/L+NAA1.5mg/L+TDZ1.5mg/L;生根培养基为1/2MS培养基+IBA1.0mg/L。     

蝴蝶兰组培快繁技术研究

将蝴蝶兰花梗腋芽作为外植体,接种于不同培养基上进行培养.结果表明:1/2MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 2.0 mg/L+CM 15%培养基诱导丛生芽最合适,诱导率可达100%,丛生芽增殖阶段1/2 MS+6-BA 7 mg/L+NAA 0.5 mg/L+CM 15%培养基效果最好,增殖倍数达7.13.无菌苗叶片诱导丛生芽以1/2MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 2.0 mg/L+香蕉泥10%+AC 0.2%为最好,诱导率达54.3%,丛生芽增殖阶段1/2 MS+6-BA 7 mg/L+NAA 0.5mg/L+香蕉泥10%+AC 0.2%培养基效果最好,增殖倍数达6.17.茎尖诱导原球茎状体以MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 2.0 mg/L+CM 10%+0.2%,其诱导率达77.1%,原球茎状体进行增殖培养的适宜培养基1/3MS+6-BA 50 mg/L+NAA 0.5 mg/L+CM 15%+AC 0.3%,增殖倍数达8.3,随后转入1/2MS+6-BA 7 mg/L+CM 15%中,很快分化成芽.生根培养基以1/2MS+NAA 1.0 mg/L+IAA 0.5 mg/L+AC 1.0%较好,将生根蝴蝶兰移栽至水苔中,1个月后成活率为99.9%.     

两个百合商业品种的组培快繁技术研究

以东方百合商业品种‘Sorbonne’、‘Corvara’的球茎鳞片为试材,采用MS培养基为基础培养基,研究不同浓度的植物生长调节剂及蔗糖对百合组培苗生长的影响,筛选最合适配方。结果表明:最适外植体灭菌时间为10min。‘Sorbonne’最佳不定芽诱导培养基配方为MS+30g/L蔗糖+0.8%琼脂+6-BA 0.8mg/L+NAA 0.1g/L,增殖培养基配方为MS+30g/L蔗糖+0.8%琼脂+6-BA 0.8mg/L。‘Corvara’最佳不定芽诱导配方为MS+30g/L蔗糖+0.8%琼脂+6-BA 0.2mg/L+NAA 0.1g/L,增殖配方为MS+30g/L蔗糖+0.8%琼脂+6-BA0.6mg/L,使用高浓度蔗糖代替激素进行增殖,最佳培养基配方为MS+蔗糖60g/L+0.8%琼脂,最佳生根培养基配方为MS+30g/L蔗糖+0.8%琼脂+NAA 0.1g/L。     

山杏愈伤组织诱导及植株再生

以山杏成熟胚和胚乳为外植体,以MS为基本培养基进行组织培养,研究了基于山杏经愈伤组织途径建立的再生植株技术。结果表明:以胚乳为外植体诱导愈伤组织的适宜培养基为MS+6-苄基腺嘌呤(6-BA)1.0mg/L+2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3g/L;愈伤组织的继代及分化培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+萘乙酸(NAA)0.1mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3g/L;以成熟胚诱导愈伤组织和丛生芽增殖分化培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3g/L;生根培养基为1/2MS+NAA 0.5mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3g/L。     

留兰香微繁技术体系研究

以留兰香春季萌发的含顶芽幼嫩茎段为外植体,利用正交实验设计等方法研究了留兰香微繁技术体系.结果表明:用70％～75％酒精浸洗30 s,0.1％升汞浸洗6min对外植体消毒灭菌效果最好,适宜芽诱导的培养基是MS+NAA 0.05 mg/L+6-BA 1.5 mg/L+30 g/L蔗糖+7 g/L琼脂,最佳芽增殖培养基是MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.01 mg/L+GA30.1 mg/L+20～30 g/L蔗糖+7 g/L琼脂,最佳生根培养基是1/2MS+IBA 0.2 mg/L+KT 0～0.05 mg/L+20～25 g/L蔗糖+7 g/L琼脂.     

一品红的组织培养研究

以一品红腋芽、顶芽、茎段、嫩叶为初次诱导外植体,对一品红的组织培养途径进行研究,建立了一品红植株再生体系.结果表明:组织培养的取材部位为腋芽、顶芽和茎段.诱导愈伤组织外植体为茎段,培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L+蔗糖30 g/L.诱导丛生芽的外植体为腋芽、顶芽和愈伤组织,培养基配方为腋芽、顶芽:MS+6-BA 0.6mg/L+NAA0.1 mg/L+蔗糖30 g/L;愈伤组织:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L.丛生芽继代增殖的培养基配方为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L+蔗糖30 g/L.生根培养基配方1/2MS+NAA 1.0 mg/L+蔗糖30 g/L.     

柠檬香茅组培快繁技术研究

以柠檬香茅顶芽为外植体,开展组培快繁技术研究。结果表明:最佳诱导培养基为MS+6-BA3.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂5.5 g/L,诱导率为87.8%;最佳增殖培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂5.5 g/L,增殖系数达4.53/30 d;合适的生根培养基为:1/2 MS+ABT 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L+蔗糖20 g/L+活性炭0.1%+琼脂5.8 g/L,生根率达100.0%。     

大花虎刺梅的组培快繁技术

用大花虎刺梅的外植体进行组织培养研究。结果表明:最佳外植体诱导培养基为A6:MS+2.0mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA,最佳不定芽诱导培养基为B2,即MS+0.5mg/L6-BA+0.1mg/L NAA,增殖效果最好的培养基为C2:MS+0.5mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA,最适宜大花虎刺梅的生根培养基为D2:1/2MS+0.1mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA。     

樱桃砧木'大叶青'茎段离体与快繁技术

以引种栽培的樱桃砧木'大青叶'茎段为试材,探讨基本培养基和植物生长调节剂对茎段腋芽萌发、生长与增殖的效应,筛选离体培养的最适培养基.结果表明:MS+6-BA0.5 mg/L+ZT 0.1 mg/L+蔗糖20g/L+琼脂0.6 mg/L、MS+6-BA 1.0 mg/L+ZT 0.1 g/L+蔗糖20 g/L为丛生芽诱导及分化增殖的最适培养基;1/2MS+IBA 0.7mg/L+NAA 0.2 mg/L+琼脂0.6 mg/L为生根诱导的最佳培养基配方.     

紫秆海芋组织培养技术研究

用植物组织培养方法建立紫秆海芋快繁体系,结果表明:紫秆海芋外植体诱导成活最好的部位是芽,外植体诱导愈伤组织最佳培养配方是:MS+BA 1.5 mg/L+NAA 1.5 mg/L+碳粉3 g/L,诱导成活率高达100%,并且无污染;愈伤组织诱导成苗的最佳配方是:MS+TDZ 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L,诱导成苗率为100%;继代增殖的最佳配方是:MS+BA 1.5 mg/L+KT 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+琼脂5.8 g/L,增殖率410%,并且植株长势良好;生根培养的最佳配方是:MS+BA 0.2 mg/L+NAA 1.0 mg/L+IBA 1.0 mg/L,并且平均根数、平均根长、平均根粗3个数值较理想。     

紫皮石斛组培技术的优化研究

以紫皮石斛种子和茎段作为外植体,研究芽苗增殖培养、生根培养及组培苗优化条件。结果表明:种子最适宜作为快繁的外植体,种子通过无菌小芽苗、芽苗增殖、壮苗生根的途径再生成完整植株;并探索出适宜的培养基配方:初代诱导培养基为1/2MS+1mg/L BA+0.5mg/L NAA,种子直接萌发长成大量绿色、长势整齐的无菌小芽苗;增殖培养基为MS+2mg/L BA+0.5mg/L NAA+5%马铃薯汁+5%香蕉泥,芽苗增殖倍数高,达到4.6倍,且长势好、芽苗粗壮;生根壮苗培养基为1/2MS+0.5mg/L NAA+10%香蕉泥+0.1%活性炭,生根苗平均根数和根长达到了最佳状态,根系发达,苗高、健壮,叶色浓绿。培养基中适宜的琼脂浓度为6g/L,增殖倍数较高,植株直立,叶片也不弯曲。     

扭果花组织培养及快速繁殖的研究

以扭果花试管苗叶片为外植体,MS为基本培养基,添加不同浓度的6-苄基腺嘌呤（6-BA）与萘乙酸（NAA）,以此来探索这两种植物生长调节剂对扭果花叶片诱导不定芽的影响。结果表明,将外植体接种在MS＋BA0．5mg／L＋NAA0．5mg／L＋蔗糖30g／L＋琼脂9g／L上不定芽诱导率最高;不定芽继代增殖的最适培养基为MS＋BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L＋蔗糖30g／L＋琼脂9g／L;生根效果最佳培养基为MS＋NAA0．1mg／L＋蔗糖50g／L＋琼脂9g／L,生根率达100％。     

铁皮石斛组培苗生长的影响因素研究

以铁皮石斛组培苗为材料,研究不同蔗糖浓度对铁皮石斛原球茎(PLB)生长的影响,6-BA用量对铁皮石斛增殖芽生长的影响,不同糠源及添加物香蕉对铁皮石斛壮苗、生根的影响。结果表明:当蔗糖30g/L最有利于铁皮石斛PLB增殖,最适合PLB的培养基为MS+NAA 0.1mg/L+蔗糖30g/L。6-BA对铁皮石斛丛生芽形态建成有着很重要的作用,有利于促进芽的分化,适合继代的培养基为MS+BA 4mg/L+NAA0.1mg/L+CW5%+蔗糖30g/L。香蕉对铁皮石斛组培苗的根系生长具有显著的促进作用,以50 g/L葡萄糖为糖源更有利于铁皮石斛壮苗生长,适合生根苗生长的培养基为1/2MS+香蕉70g/L+活性炭0.1%+葡萄糖50g/L。     

大蒜组织培养快繁技术的研究

以贵州务川紫皮大蒜茎尖为试验材料,将其接种在附加不同NAA和6-BA的MS分化培养基中,比较组织诱导、分化和生根效果。试验结果表明,以MS＋6-BA 3.0 mg/L＋NAA 0.5 mg/L培养基诱导愈伤组织效果最好;以MS＋6-BA 2.0 mg/L＋NAA 0.1 mg/L培养基诱导不定芽增殖的效果较好,增殖倍数达5倍;以MS＋NAA 0.4 mg/L培养基的生根效果最佳。     

高品质甜叶菊品系“1096”的组培快繁

采用改良DNS等方法筛选出的生长快、糖苷含量高的甜叶菊品系＂1096＂为材料,研究了不同外植体、不同激素种类和配比对愈伤组织诱导、不定芽分化和生根的影响。结果表明：以茎尖为外植体愈伤组织和不定芽诱导率均最高;其次是带腋芽茎段;再次为叶片。无腋芽茎段和无菌根均能诱导出愈伤组织,但不能诱导成芽。茎尖不定芽诱导的最佳培养基为MS＋6-BA 1.0mg/L;叶片不定芽诱导的最佳培养基为MS＋6-BA 1.0mg/L＋IAA 1.0mg/L;带腋芽茎段不定芽诱导的最佳培养基为MS＋6-BA 1.5mg/L。不定芽继代增殖培养采用MS＋6-BA 0.5mg/L＋NAA0.05mg/L;在1/4MS＋IBA 0.1mg/L＋NAA 0.1mg/L＋1g/L活性炭的培养基上诱导生根,生根率可达100%,生根苗移栽后成活率达95%。     

红掌愈伤组织增殖分化条件的优化

以红掌愈伤组织为材料,研究影响红掌愈伤组织增殖和分化以及芽增殖的因素。结果表明:以MS+6-BA1.0 mg/L+KT 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂8 g/L为红掌愈伤组织增殖和分化的最佳培养基,培养到8周绝对生长速度达到910.31%、分化率达到100%,到150 d时分化指数达到24.17;在芽增殖培养试验中,以1/2 MS+6-BA2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+KT 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂8 g/L为适宜培养基。在培养方式上,液体培养优于固体培养。     

红莲子草耐寒无性系选育研究

为满足人们观赏栽培的需求,以能越冬的红莲子草嫩茎为材料,进行愈伤组织诱导、低温处理、冷冻处理、复冻处理,愈伤组织分化、试管苗生根与继代增殖培养,以及试管苗移栽和定植的研究,建立起红莲子草耐寒无性系。结果证明：MS＋BA0.4mg/L＋2,4-D1.0mg/L＋NAA0.5mg/L＋蔗糖30g/L为嫩茎愈伤组织诱导和耐冻愈伤组织继代增殖培养的理想培养基;1/2MS＋蔗糖30g/L是复冻后增殖培养的愈伤组织分化的理想培养基;N6＋NAA0.1mg/L＋IAA0.4mg/L＋蔗糖15g/L是生根培养和生根继代增殖培养的理想培养基;移植到水库岸边的试管苗保持了红莲子草的所有生物学性状,且连续3年正常越冬。     

无籽西瓜的组织培养及快速繁殖试验研究

以无籽西瓜顶芽为外植体,以MS为基础培养基,通过不同激素配比对离体顶芽的分化、增殖和生根效果进行试验研究。结果表明,无籽西瓜组织培养适宜的诱导培养基为:MS 6-BA 2.0 mg,L NAA 0.05 mg/L 30 g/L蔗糖 4 g/L琼脂;适宜的增殖培养基为:MS 6-BA 0.25 mg,L NAA 0.01 mg/L;适宜的生根培养基为:1,2 MS IBA 0.5 mg/L。     

彩叶植物金叶莸的组织培养及植株再生研究

对彩叶植物金叶莸进行了初代培养、继代培养、生根培养及驯化移栽等试验.结果表明:初代培养的最佳培养基为MS 6-BA 1.5 mg/L NAA 0.5 mg/L;继代培养的最佳培养基为MS BA 1 mg/L NAA 0.5 mg/L;生根培养的最佳培养基为1/2 MS NAA 0.5 mg/L或1/2 MS NAA 0.25 mg/L IBA 0.25 mg/L;驯化移栽的最佳基质为珍珠岩 腐叶土(1∶1).