蝴蝶兰V31品种原球茎诱导增殖培养研究

以蝴蝶兰红花品系V31品种的原球茎(PLB)为材料,比较不同培养基(MS、1/2 MS、改良VW、White)、不同添加物(椰子汁、香蕉汁、马铃薯汁、胰蛋白胨)和不同浓度的6-BA(0、0.5、1.0、1.5、2.0mg.L-1)对蝴蝶兰PLB增殖的影响,结果表明:试验中蝴蝶兰V31品种原球茎诱导最佳培养基组合为MS+0.5 mg.L-16-BA+0.2 mg.L-1NAA+4%蔗糖+0.2%活性炭(AC)+1.0%琼脂;原球茎继代增殖培养以1/2 MS+1.0 mg.L-16-BA+0.2 mg.L-1NAA+3%蔗糖+100 mg.L-1椰乳+0.2%活性炭(AC)+1.0%琼脂最佳。     

蝴蝶兰新品种“郑农火凤凰”的组培快繁技术研究

以蝴蝶兰新品种"郑农火凤凰"的花梗腋芽为外植体进行启动诱导,基本培养基为1/3MS,6-BA、腺嘌呤和NAA,分别设为3个处理,进行方差分析,结果表明:腋芽在1/3MS+6-BA4mg·L-1+腺嘌呤4 mg·L-1+NAA0.7 mg·L-1的培养基上诱导效果较好。丛生芽增殖和壮苗生根也分别进行正交实验,结果显示:去茎尖茎段在1/3MS+6-BA 2 mg·L-1+腺嘌呤3 mg·L-1+NAA0.2 mg·L-1+CM(椰汁)100 m L·L-1的培养基上可取得理想的增殖倍数;增殖无根苗在1/2MS+NAA 2 mg·L-1+IBA1 mg·L-1+蛋白胨1 g·L-1+香蕉泥100 g·L-1+活性炭1 g·L-1的培养基上生根效果最佳。     

蝴蝶兰原球茎诱导条件的筛选研究

蝴蝶兰未成熟胚和无菌苗叶片PLB(Protocorm-like body,类原球茎)的诱导试验结果表明:适合未成熟胚PLB诱导的培养基是1/2 MS+6-BA 2 mg/L+NAA 0.10 mg/L+PVP 1 g/L,诱导率达到了71.0%;适合完整叶片PLB诱导的培养基是1/2MS+6-BA 5 mg/L+NAA 1 mg/L+PVP 1 g/L,诱导率达到了31.0%。     

石斛兰叶片再生体系的建立

以石斛兰叶片为材料,建立了叶片外植体的离体再生体系.结果表明:KC+4 mg·L-16-BA+1 mg·L-1NAA是石斛兰叶片诱导原球茎的最佳培养基,诱导率为11.99%;原球茎适宜的增殖培养基为KC+2 mg·L-16-BA+0.5 mg·L-1NAA,增殖倍数达到8.02;分化培养基为1/2 MS+0.5 mg·L-16-BA;最佳的壮苗生根培养基为1/2 MS+1 mg·L-1NAA,最佳移栽基质为棕树皮,成活率达到93.33%.     

蝴蝶兰“V31"品种花梗腋芽快繁体系的建立

以蝴蝶兰"V31"品种花梗腋芽为试验材料,通过筛选丛生芽诱导、增殖、生根及移栽各阶段最适培养基,建立其快繁体系。结果表明,最佳腋芽诱导丛生芽培养基MS+8.0 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 NAA+15 g·L-1椰子粉,诱导率84.57%;最佳丛生芽增殖培养基MS+10 mg·L-1 KT+0.6 mg·L-1 NAA+0.2 mg·L-1 2,4-D,增殖倍率7.94;最佳生根壮苗培养基1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA+1 mg·L-1 6-BA+20 g·L-1蔗糖+10 g·L-1香蕉粉,平均生根数9.47;最佳栽培基质为经过0.1%高锰酸钾浸泡0.5 h的水苔+玉米棒(比例为1:1)。     

南抗杨叶片快速繁殖体系的建立

以南抗杨叶片为材料,对其快繁体系进行研究。选用9种分化培养基、4种增殖培养基和6种生根培养基,研究不同激素组合对快速繁殖体系建立的影响。结果表明,适宜的诱导分化培养基为MS+6-BA 1.5 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1+KT 0.1 mg·L-1;丛生芽增殖培养基为MS+6-BA 1.2 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1+KT 0.1 mg·L-1;最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg·L-1+NAA 0.01 mg·L-1。     

半蒴苣苔的叶片组织培养及植株再生

为了建立半蒴苣苔Hemiboea subcapitata的组培快繁技术体系,保护和开发利用半蒴苣苔这一民间植物药资源,以MS(Murashige and Skoog)为基本培养基,研究植物生长调节物质6-苄基腺嘌呤(6-BA)和萘乙酸(NAA)组合对叶片愈合组织诱导、不定芽分化,增殖和壮苗生根的影响,筛选出适合半蒴苣苔快繁的最适培养基。结果表明:叶片诱导愈合组织困难,但在叶片基部或切口处可直接诱导分化出不定芽,且随着6-BA 和NAA质量浓度的升高,芽的分化率先上升后降低,以MS+0.5 mg·L-1 6-BA+1.0 mg·L-1 NAA+1.5 g·L-1活性炭(AC)分化率最高,达到67.8%;但平均每外植体诱导芽数以MS+1.0 mg·L-1 6-BA +0.5 mg·L-1 NAA +1.5 g·L-1 AC最多,达到6.69个;不定芽增殖以MS+0.5 mg·L-1 6-BA+0.5 mg·L-1 NAA处理增殖倍数最高,达到23.43;在添加不同质量浓度吲哚丁酸(IBA)的培养基中生根率均超过90%。     

蝴蝶兰外植体诱导分化与培养基筛选技术研究

以蝴蝶兰的花梗为外植体,采用不同的培养基进行诱导分化、增殖生根试验。结果表明:蝴蝶兰诱导培养基MS+6-BA 3.0 mg/L+花宝1号1.0 g/L+柠檬酸30 mg/L、分化培养基MS+6-BA 5.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L+椰子汁10%+柠檬酸30 mg/L、生根培养基1/2MS+6-BA 0.1mg/L+NAA 0.3 mg/L+柠檬酸30 mg/L是筛选的最合适的培养基。     

国外引进优良绣球种的组培快繁技术

以绣球品种Snow Giant的带腋芽茎段为外植体.研究了不同浓度6-BA和NAA对绣球芽诱导增殖及生根的影响,结果表明.采用诱导培养基MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1有利于绣球芽的诱导;增殖培养基MS+6-BA2Dmg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1有利于芽的增殖;生根培养基1/2 MS+NAA 0.2 mg·L-1有利于无菌苗的生根.     

蝴蝶兰离体培养影响因素研究

以蝴蝶兰品种‘郑农鸿运’的丛生芽为外植体,进行丛生芽增殖培养以及幼苗的生根培养,分析不同浓度及配比的细胞分裂素(6-BA)与生长素(NAA),椰子汁、香蕉泥、土豆汁、蛋白胨对蝴蝶兰丛生芽分化和增殖的影响。结果表明,1/3MS+3.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+150 mL/L椰子汁,蝴蝶兰丛生芽增殖倍数最高,蝴蝶兰壮苗与生根的最佳培养基为1/3MS+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+150 mL/L椰子汁;培养基上添加椰子汁能提高增殖倍数,利于苗子生长。     

大花蕙兰原球茎增殖条件研究

采用原球茎（PLB）进行繁殖是大花蕙兰-种重要的再生方式。本研究以大花蕙兰原球茎为外植体进行研究,比较不同基本培养基（1／3MS、1／2MS、MS）、有机添加物（椰乳、香蕉泥、苹果汁）、活性炭和植物激素（6-BA、NAA）等因子对大花蕙兰原球茎增殖效果的影响。结果表明：1／2MS为基本培养基有利于PLB的增殖;有机添加物对PLB的增殖也有影响,其中,以椰乳的增殖效果最好,其次为香蕉泥、苹果汁;1．5g·L。活性炭可以有效减少褐变的发生;低水平的NAA（O．2mg·L-1）和较高水平的6-BA（1．0mg·L-1）对大花蕙兰PLB的增殖具有显著的促进作用。     

玉竹愈伤组织诱导及其细胞悬浮培养体系的建立

以玉竹叶片和根状茎为外植体,研究植物生长调节剂、碳源和pH对玉竹愈伤组织诱导的影响以及植物生长调节剂对愈伤组织增殖的影响,通过正交试验初步建立并优化玉竹愈伤细胞的悬浮培养体系。结果表明,叶片和根状茎愈伤组织诱导的最佳培养基均为MS+1.0mg·L~(-1)?6-BA+0.5mg·L~(-1)?NAA+30%蔗糖,培养基最佳pH5.6,叶片和根状茎愈伤组织增殖的最佳植物生长调节剂组合均为2.0mg·L~(-1)?6-BA+0.8mg·L~(-1)NAA,且根状茎愈伤组织的诱导率和增殖倍数均明显高于叶片。根状茎愈伤细胞悬浮培养的最佳接种量80g·L-1,最佳植物生长调节剂组合1.5mg·L~(-1)6-BA+0.6mg·L~(-1)?NAA,细胞生长曲线与多糖含量变化曲线均呈"S"形,细胞最佳继代周期16d,多糖含量在培养14d时最高,培养基pH呈先下降后上升然后趋于稳定趋势。     

蝴蝶兰叶片诱导类原球茎初探

以蝴蝶兰杂交品种H807无菌苗的叶片为材料,研究了防褐化物质(柠檬酸、抗坏血酸及活性炭)和细胞分裂素(6-BA与TDZ)对类原球茎诱导的影响。结果表明:在添加70mg/L抗坏血酸的培养基中,叶片褐化级别仅为1级,防褐化效果最佳;3mg/L的TDZ对蝴蝶兰叶片诱导类原球茎的诱导率最高,为75.0%。在以1/2MS附加70 mg/L抗坏血酸的基础上,激素组合TDZ3mg/L+NAA 1mg/L对蝴蝶兰H807类原球茎的诱导效果最佳。     

正交设计在根茎秋海棠‘Helen Lewis’组织培养中的应用

用正交试验设计法研究了6-BA,NAA和2,4-D 3种植物生长调节剂对根茎秋海棠 ‘Helen Lewis’叶片诱导不定芽的影响,建立了根茎秋海棠叶片再生体系。结果表明,诱导根茎秋海棠不定芽发生的最佳配方为：MS+2 mg·L-1 6\|BA+0.5 mg·L-1 NAA+0.5 mg·L-1 2,4-D,36 d时诱导率为86.7%,并有淡绿色愈伤组织形成。附加0.5 mg·L-1 6\|BA+0.2 mg·L-1 NAA的MS培养基有利于不定芽的分化和增殖。在1/2 MS+0.5 mg·L-1 IBA的培养基中生根效果最好,高于4 cm的再生植株移栽成活率达90%以上。     

伴矿景天叶片愈伤组织诱导及植株再生

以伴矿景天Sedum plumbizincicola幼嫩叶片为外植体,以添加了300 mg·L-1水解酪蛋白的MS（Murashige and Skoog）培养基为基本培养基,研究不同植物生长调节剂组合对伴矿景天愈伤组织诱导及分化的影响,并建立再生体系。结果表明:1.00 mg·L-1 2,4-二氯苯氧乙酸（2,4-D）+0.30 mg·L-1 6-苄基腺嘌呤（6-BA）组合下,愈伤组织诱导效果最佳（P < 0.05）,诱导率为92.01%;0.10 mg·L-1 2,4-D+1.00 mg·L-1 6-BA组合下,分化效果最优（P < 0.05）,分化率为27.44%。适宜的芽增殖培养基为0.10 mg·L-1 2,4-D+（0.50~1.00）mg·L-1 6-BA;适宜的生根培养基为1.00~2.00 mg·L-1吲哚丁酸（IBA）。本研究为伴矿景天转基因技术体系的建立奠定了组织培养基础。     

毛稔叶片离体培养及植株再生研究

以毛稔叶片作为外植体, MS为基本培养基,研究不同种类激素的浓度配比对毛稔叶片离体再生的影响。结果表明,黑暗条件与光照12 h·d-1有利于毛稔愈伤组织形成,毛稔叶片愈伤组织最佳诱导培养基为MS+0.5 mg·L-16-BA+2.0 mg·L-12,4-D+0.1 mg·L-1 NAA,光照12 h·d-1诱导40 d,愈伤诱导率为96%;叶片形成的愈伤组织分化率极低,分化率随6-BA浓度升高而升高,愈伤组织分化最适培养基为MS+0.1 mg·L-1 NAA+2.0 mg·L-16-BA,分化率为10%;最适生根培养基为1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA,生根率为88.89%。     

丽格海棠‘宣言’离体再生因素的优化

丽格海棠再生分化受到多种因子的影响,通过对丽格海棠离体再生影响因素的优化试验表明:以叶片为外植体,MS+6-BA2.0mg· L-1+NAA0.2 mg·L-1最利于海棠的不定芽诱导;不定芽增殖分化的培养基为MS+ 1/2MS(Trace element)+6-BA 1.5 mg·L-1+ NAA0.1 mg·L-1+ Sucrose 30 g·L-1;生根壮苗培养基为1/2MS +IAA0.1 mg· L-1.     

白首乌的组织培养条件的优化

以白首乌茎段、叶片、茎尖和带腋芽茎段为外植体,进行离体培养植株再生研究,结果表明：适合初代诱导的培养基为：MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1,诱导率可达100%;最佳外植体是带腋芽茎段;芽苗增殖的最佳培养基为：MS+KT 1.5 mg·L-1+NAA 0.05 mg·L-1,增殖系数为5.6;生根培养基为：1/2 MS+NAA 0.5 mg·L-1,生根率为93.3%。     

紫苏组织培养与快速繁殖

以栽培紫苏为材料,通过对其离体茎段的组织培养,建立了诱导、分化、增殖、生根等一整套离体快繁体系。研究结果表明,紫苏茎段外植体较好的灭菌方法为:75%酒精30s+0.1%HgCl210min;茎段外植体初代培养的适宜培养基为MS+2mg.L-1 6-BA+0.5mg.L-1 NAA;继代及增殖培养以6-BA 2mg.L-1与NAA0.1mg.L-1配比时效果较好;试管苗生根培养的最适宜培养基是1/2MS基本培养基附加0.2mg.L-1 NAA。     

宿根婆婆纳‘达尔文之蓝’的组培脱毒和快繁技术

将供试品种的带茎尖和腋芽的茎段,用70%酒精浸泡30 s,然后用20%的次氯酸钠溶液浸泡30 min,无菌水冲洗4次,消毒处理后剥取0.1~0.3 mm的茎尖,接种于以MS为基本培养基添加6-BA、IAA、NAA等外源激素的培养基中,研究了不同条件对愈伤组织诱导芽形成和芽继代增殖、生根和移栽效果的影响。结果表明,以MS为基本培养基,添加6-BA 1.0 mg·L-1和IAA0.5 mg·L-1为较适宜的外植体诱导愈伤组织和愈伤组织诱导芽的培养基。最佳继代增殖培养基为6-BA2.0 mg·L-1和NAA0.1 mg·L-1。最佳生根培养基为1/2MS添加NAA0.2 mg·L-1和IAA1.0 mg·L-1。25 d后,组培苗移栽成活率达到98%以上。