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近30年来,水稻离体培养及其体细胞无性系变异的研究取得了很大的进展,已成为水稻品种改良中提高变异频率、增加变异类型、加快育种进程、提高育种效率等的一个重要手段.本文较全面地综述了有关资料,并提出一些粗浅看法. 相似文献
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以树莓带芽茎段或顶芽为外植体,探讨不同激素种类与水平对其不定芽分化、增殖与不定根形成的影响,并筛选了树莓试管苗移栽的适宜基质。结果表明:不定芽启动培养以MS+BA 1.0 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L为宜;继代增殖以MS+BA0.5~1.0 mg/L+NAA 0.1~0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L+干酪素30~50 mg/L为宜;不定根分化以1/2 MS+IBA0.2~0.4 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L或1/2 MS+NAA 0.5 mg/L+蔗糖30 g/L+琼脂6.5 g/L为宜,生根率高于96%;在泥炭或泥炭∶蛭石=1∶1的基质中移栽,成活率高于93.8%。 相似文献
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体细胞无性系变异研究进展 总被引:14,自引:0,他引:14
综述体细胞无性系变异产生的类型、机制、分子检测和应用等,对利用植物组织培养进行离体选择和品种改良具有一定的指导作用,对微繁殖和遗传转化等也具有参考价值。 相似文献
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对大豆下胚轴离体培养的5个体细胞无性系 R_0、R_1及 R_2代的形态学、农艺性状和生理生化的研究表明,大豆体细胞无性系存在着广泛的变异,同一无性系不同株系间也有差异。初步选出产量性状好、酰脲含量高和光合效率较强的无性系3个。 相似文献
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棉花体细胞无性系变异的研究 总被引:5,自引:0,他引:5
在棉花组织培养中存在着广泛的无性系变异,概括起来可分为3类,植株水平上的变异,细胞水平上的变异和分子水平的上的变异,棉花体细胞无性系变异具有变异广泛,变异频率高,后代稳定快等特点,选育优点新品种(系),创造优异新种质等是体细胞无性系变异在棉花品种改良上的主要应用,该指出了这一生物技术目前存在的主要问题,展望了该技术将来的发展方向。 相似文献
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小麦未熟胚离体培养的研究──再生植株后代主要农艺性状变异的遗传稳定性 总被引:3,自引:0,他引:3
在已有研究的基础上,进一步研究胚培再生植株后代主要农艺性状变异的可遗传性及在小麦品种改良中利用的前景.结果表明,早熟及大粒性有很强的遗传力,株高也是可遗传的,所有性状在IE3代趋于稳定,IE4代完全稳定.某些优良的变异材料可直接应用于生产. 相似文献
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本试验采用在田间条件下栽培的6个不同基因型的未熟胚培再生植株后代(IE_2),分析其主要农艺性状的表现。结果表明,在成熟期、株高、产量性状以及抗病性方面均表现明显变异。但基因型间反应不同。同一基因型的株系间或同一株系内仍存在分离。IE_2代所观察到的表型变异在以后世代中的遗传稳定性和选择利用尚待进一步研究。 相似文献
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水稻体细胞无性系的变异研究 总被引:1,自引:0,他引:1
研究水稻胚,幼穗的无性系后代在生育期,株高,粒重及有效穗等方面的遗传变异,结果表明,无性系后代以幼穗培养的变异最大,各性状中以株高,有效穗的变异最大,其余性状均有一定的变异,变异能稳定遗传。通过对无性系后代的定向选择,可培育出优良的水稻品种。 相似文献
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分析了通35、延农糯2号、低amylose突变体、陆奥誉、秋光等5个水稻品种(系)体细胞无性系后代的性状变异.结果表明:水稻体细胞无性系有植株变矮、分蘖增加、每穗总粒数和实粒数减少、结实率和单穗重降低的趋势,株系之间差异很大,其具体表现因品种(系)而不同.在苗期出现白化苗、浅绿苗的分离。体细胞无性系的结实率和花粉可育率呈极显著正相关.体细胞无性系后代的减数分裂期观察到染色体桥、染色体断片、落后染色体及单价体等染色体结构变异. 相似文献
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本文介绍了用小麦体细胞离体培养的成苗技术,并明确用未成熟胚、幼穗以及嫩叶作外植体均可形成愈伤组织,但只有未成熟胚和幼穗的愈伤组织才分化出幼苗。幼穗的发育阶段对愈伤组织的形成无影响,但未成熟胚却不一样,采样过早不能长出愈伤组织,过迟自外植体直接长出幼苗数量多,影响愈伤组织的形成。研究认为以授粉12—14天的未成熟胚做外植体最好,愈伤组织形成的多,直接长出幼苗的外植体数量少。用根腐病菌毒素作选择压力,6%的毒素压力幼胚外植体可诱导成苗,12%的毒素压力虽也可形成愈伤组织,但未能获得成活的幼苗。品种对真菌毒素的耐力可能不同,因而各自的外植体及其愈伤组织对毒素的耐力也可能不一样,所以用毒素选择压力强度应根据品种确定。 相似文献
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广玉兰的离体培养研究 总被引:4,自引:0,他引:4
以广玉兰的叶芽、花托、花被、雄蕊、幼叶为试材,用MS为基本培养基,添加不同浓度的2,4—D,NAA,6—BA,筛选适合其脱分化、分化、生根的培养基,结果表明:最适外植体为叶芽,在MS 2,4—D3.5~5mg/L NAA3~5mg/L 6-BA0.8~1.2mg/L AC0.8g/L的培养基上都能很好地诱导出愈伤组织,其中速率最快的最佳培养基是MS 2,4—D4.5mg/L NAA3mg/L 6-BA1.2mg/L AC0.8g/L;愈伤组织继代培养基为MS 2,4—D2.5mg/L NAA2.5mg/L 6-BA1.2mg/L AC0.8g/L;胚状体的诱导培养基为MS 2,4—D1.5mg/L NAA1.5mg/L 6—BA2mg/L AC0.8g/L;诱导胚状体成苗培养基为MS 2,4—D0.2mg/L NAA0.2mg/L 6-BA2mg/L AC0.8g/L;生根培养基为1/2MS NAA0~1mg/L 6-BA1.5~2mg/L AC0.8g/L. 相似文献