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正猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV,俗称蓝耳病病毒)是引起全球养猪行业重大经济损失的病原之一。PRRSV每年给美国养猪业带来的经济损失达10亿美元以上~([1]),按照此标准估计中国每年因PRRSV造成的损失大约为50亿美元以上(中国出栏量为美国的5倍多)。然而,控制和净化PRRSV的关键一步是切断PRRSV在种猪群的循环,如此养猪生产体系才能生产出蓝耳病断奶阴性仔猪~([2])。 相似文献
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《中国预防兽医学报》2020,(5)
正伪狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)是伪狂犬病(PR)的病原,属于疱疹病毒科(Herpesviridae)、α-疱疹病毒亚科、水痘-带状病毒属,是一种线状双股DNA病毒~([1])。该病毒可以感染多种哺乳动物,人对PRV不易感,但近期报道有人疑似感染PRV的病例出现~([2])。猪是PRV的储存宿主,同时也是伪狂犬病 相似文献
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正猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)又称猪蓝耳病,是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)引起的猪的一种急性、高度接触性传染病,该病毒属于动脉炎病毒科动脉炎病毒属~([1])。临床症状主要表现为母猪发热、厌食、流产或产死胎和木乃伊胎,仔猪常出现呼吸 相似文献
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《中国预防兽医学报》2021,(8)
正猪繁殖与呼吸综合征病毒(Porcine reproductiveand respiratory syndrome virus,PRRSV)是一种球形、带囊膜的病毒。其基因组为单股正链、不分节段的RNA,大小约为15 kb~([1-3]),包含10个开放阅读框。PRRSV主要造成妊娠母猪流产、死胎和仔猪呼吸道疾病,高致病性PRRSV(HP-PRRSV)甚至能引起各日龄的猪发病。根据病毒基因组和GP5的抗原性差异,可将PRRSV分为PRRSV-I和PRRSV-II,我国常见的是以NADC30-like、 HP-PRRSV为代表的PRRSV-II~([4])。 相似文献
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应用PCR检测方法,对来自山东、河北、河南等10省44份表现高热病症状的临床发病猪病料,进行猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪圆环病毒(PCV)、猪伪狂犬病病毒(PRV)、猪巨细胞病病毒(PCMV)和猪流感病毒(SIV)6种病原的检测。结果发现,6种病原中PRRSV的检出率最高为72.7%;单纯PRRSV感染的比例仅为2.27%。根据PCR检测结果分析PRRSV与其他5种病毒的混合感染情况,结果发现两重感染中PRRSV/PRV并发率最高(62.50%),三重感染中PRRSV/PRV/PCV并发率最高(43.75%),四重感染中PRRSV/PRV/PCV/PCMV并发率最高(28.125%),五重感染中PRRSV/PCV/PCMV/CSFV/PRV并发率最高(15.625%),PRRSV/PCV/PCMV/CSFV/PRV/SIV六重感染的比例为9.375%。将PRRSV阳性病料接种猪肺巨噬细胞和Marc-145细胞,共分离到9株PRRSV,分离率为28.1%。结果表明,发病猪多为感染PRRSV的同时混合感染其他多种病毒,为制定合理的免疫程序预防猪场各种疾病提供科学依据。 相似文献
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《上海畜牧兽医通讯》2018,(6)
正鸡滑液囊支原体(Mycoplasma synoviae,MS)是引起鸡和火鸡的一种急慢性传染病,主要侵害鸡关节滑液、腱鞘膜和气囊,引起病鸡关节或足垫肿大、滑液囊和腱鞘发炎,也可引起呼吸道疾病及气囊炎~([1])。MS可以与新城疫病毒、传染性支气管炎病毒、大肠杆菌等病原微生物混合感染或继发感染。MS感染鸡群不仅能导致跛行、产蛋率下降、生长发育迟缓及胴体等级下降,而且MS感染种鸡可 相似文献
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影响猪繁殖与呼吸综合征病毒感染与增殖的因素 总被引:1,自引:0,他引:1
猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)感染宿主细胞以及在宿主细胞内进行复制的过程受到宿主细胞的细胞受体、胞内大分子及细胞因子影响。随着单克隆抗体制备技术、分子生物学技术与蛋白质研究技术的日趋成熟,使深入研究影响PRRSV感染与增殖的因素成为可能。目前在猪肺巨噬细胞(PAM)与Marc-145细胞中发现了多个PRRSV细胞受体,这与PRRSV感染宿主细胞所具有严格的细胞嗜性有关。同时胞内大分子物质可导致PRRSV在宿主细胞内产生增殖性感染。包括干扰素在内的细胞因子具有抑制PRRSV在宿主细胞内增殖的作用。研究影响PRRSV感染与增殖的因素,对于预防PRRSV感染与合理利用PRRSV具有重要意义。 相似文献
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猪繁殖与呼吸综合征病毒和猪圆环病毒2型共感染对猪体内病毒动态及免疫反应的影响 总被引:3,自引:0,他引:3
将猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪圆环病毒2型(PCV2)单感染和共感染6周龄健康仔猪,采用实时定量PCR(Real-time PCR)对血清、组织(心、肝、肺、肾、胰、脾、胸腺、扁桃体、腹股沟淋巴结、肠系膜淋巴结)中的PRRSV和PCV2载量进行检测,分别采用间接ELISA和间接IFA对血清中的PRRSV和PCV2特异性抗体进行检测,采用MTT法对猪外周血淋巴细胞(PBLC)的增殖能力进行检测.结果,PRRSV/PCV2共感染组血清、组织中PRRSV的载量均显著高于PRRSV单感染组,PCV2的载量均显著高于PCV2单感染组;共感染组PRRSV和PCV2特异性抗体阳转的时间均晚于并且效价均显著低于PRRSV或PCV2单感染组;共感染组和单感染组PBLC的增殖能力均受到抑制,其严重程度依次为:PRRSV/PCV2组>PRRSV组>PCV2组.由此表明,PRRSV和PCV2在猪体内对彼此的增殖具有促进作用;PRRSV和PCV2共感染对猪的免疫抑制具有加重作用. 相似文献
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PRRSV与PCV2体外共感染对猪肺泡巨噬细胞免疫学功能的影响 总被引:1,自引:0,他引:1
制备猪肺泡巨噬细胞,分别接种PCV2、PRRSV、PCV2 PRRSV(先接种PCV2,12h后接种PRRSV)、PRRSV PCV2(先接种PRRSV,12h后接种PCV2)、PRRSV/PCV2(同时接种)和对照组。接种后不同时间观察细胞病变(CPE),并用real-time PCR和IFA方法检测PRRSV和PCV2滴度,INF-α、INF-γ、TNF-α、IL-8和IL-10的mRNA。结果为:①PRRSV能在PAM中增殖,有CPE;PCV2在PAM中感染率较低,无CPE。②PRRSV对PCV2增殖无明显影响。PCV2先于或同时与PRRSV感染对PRRSV的复制具有抑制作用,而PCV2后于PPRSV感染,可促进PRRSV增殖。③PCV2单独感染PAM后能促进INF-α、INF-γ、IL-8和IL-10的大量表达,对TNF-α的表达量影响不大。④PCV2与PRRSV混合感染,尤其是PCV2后于PRRSV感染后,TNF-α、IL-8和IL-10的表达量与单感染组相比明显增加,而INF-γ的表达量明显受到抑制。实验结果表明,PCV2感染时间对PRRSV的增殖影响不同,PRRSV感染后如果再感染PCV2,可以明显促进PRRSV病毒增殖;两种病毒共同刺激了TNF-α、IL-8和IL-10的大量表达,抑制了抗病毒因子INF-γ的表达,从而可能抑制体液免疫和细胞免疫,加重了病理学免疫应答。 相似文献
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正0前言1971年英国首次报道猪流行性腹泻(PED),在架子猪和育肥猪群中暴发了急性腹泻,仔猪不发病,其临床症状类似猪传染性胃肠炎(TGE),被暂时命名为流行性病毒腹泻(Epidemic?viral?diarrhea,EVD)~([1])。直到1977年,在比利时第一次分离到一株冠状病毒被认为是病原,命名为猪流行性腹泻病毒(PEDV)-CV777毒株~([2-3])。PEDV在临床上与猪传染性胃肠炎 相似文献
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反向遗传学在猪繁殖与呼吸综合征病毒研究中的应用 总被引:1,自引:0,他引:1
<正>反向遗传学遵循"中心法则",在获得生物体基因组全部序列的基础上,通过对靶基因进行必要的加工和修饰,再按组成顺序构建含生物体必需元件的修饰基因组,让其装配出具有生命活性的个体([1])。猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)为单股正链RNA病毒,基因组约为15 kb,有8个开放阅读框架(ORF),ORF1位于基因组的5′末端,编码病毒非结构蛋白,ORF2([1])。猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)为单股正链RNA病毒,基因组约为15 kb,有8个开放阅读框架(ORF),ORF1位于基因组的5′末端,编码病毒非结构蛋白,ORF27位于基因组的3′ 相似文献