利用槐荫扦插扶芳藤

扶芳藤为卫矛科卫予属一种常绿匍匐灌木 ,长达 1.5m ,因其茎枝韧皮部能产生气生根而多用作垂直绿化 ,又称爬墙虎或爬行卫矛。园林造景中可用作绿篱、植物造型、墙体绿化等 ,用途甚广。夏季扦插扶芳藤多在 7、8月份进行 ,但此时由于气温高、光照强、蒸发快 ,极不利于插穗的生根成活 ,故必须进行控温、遮光和保湿处理。我处的 5年生国槐苗圃地 ,由于间苗出圃 ,形成了株行距较大 (一般 1m× 1.5m)的林荫疏地 ,这些空地土质为沙土 ,通气性好、透水性强 ,又有槐荫遮蔽 ,既避免了强光照射 ,又降低了温度 ,还保证了空气湿度 ,是理想的扦插扶芳藤用…     

常绿藤本植物扶芳藤的栽培及应用

近年来,以北京为代表的北方城市园林绿化建设取得了巨大成绩,但是用于环境垂直绿化的常绿植物品种明显不足。该文重点介绍了常绿藤本植物扶芳藤的栽培繁殖及应用研究。     

农杆菌介导的甜橙基因转化系统建立研究

以3个不同品种甜橙上胚轴为对象，进行了农杆菌介导的基因转化影响因素研究。研究结果表明：红心橙、柳橙、新会橙卡那选择浓度分别为140、100、80μg／mL；不同品种外植体达最高Gus瞬时表达阳性率所需的AS浓度不同，红心橙、柳橙、新会橙分别为150、150、100μmol／L；红心橙、柳橙、新会橙的最适预培养时间分别为2、2、3天，预培养基成分为不定芽分化培养基有利于外植体Gus阳性率的提高；实生苗苗龄以20～25天为宜。     

新型绿化材料——扶芳藤的园林应用研究

扶芳藤属常绿阔叶藤本状灌木,具有萌芽力强、成活率高、耐寒、耐干旱、耐阴、耐贫瘠、适应性强、固土保水能力强等优良特性。其生长快、生长期长,耐修剪,是观赏价值高、应用范围广的园林绿化材料,在平面绿化、垂直绿化、立体绿化以及水土保持等诸多方面得到应用,并取得显著效果,在立体绿化中的应用效果尤为突出,应用前景广阔。     

小叶扶芳藤的组织培养研究

概述了小叶扶芳藤的生物学生态学特性、园林上的应用价值、开发利用和展望及组织培养现状等。对小叶扶芳藤组织培养进行了试验,采用的培养基为MS+6BA(1mg/L,2mg/L,4mg/L)+NAA(0.05mg/L,0.1mg/L,0.5mg/L),9组处理对外植体进行培养。结果表明:在1/2MS和MS培养基的试验中,MS培养基的效果更好些;组织培养分化过程中的植物激素浓度配比为MS+6BA(2mg/L)+NAA(0.1mg/L)的培养效果更好些。通过对小叶扶芳藤组织培养的初步研究,为小叶扶芳藤的引种驯化及在园林中的苗木上的培育等提供了良好的技术上的支撑。     

农杆菌介导的喜树遗传转化(英文)

利用农杆菌介导法将与植物纤维素合成有关的纤维素合成酶基因导入喜树体内,并对影响遗传转化效率的几个因子进行了研究,建立了有效的喜树遗传转化体系。采用预培养的外植体在OD600(0.5)的农杆菌菌液中侵染10分钟,外植体与农杆菌侵染后在再生培养基上与农杆菌共培养三天,然后转入筛选培养基,获得了最佳的转化效率。Southern杂交结果证明UGPase基因已经整合到喜树的基因组中。在最佳的转化条件下获得了 6%的转化效率。这个转化系统对于利用遗传转化对喜树进行遗传改良是非常有意义的。     

农杆菌介导慈竹4CL基因遗传转化梁山慈竹

以梁山慈竹2种类型成熟胚的愈伤组织为材料,采用农杆菌遗传介导的方法,将已构建好的具有降低木质素含量的PBI121-4CL-RNAi表达载体导入愈伤组织,探讨愈伤组织预培养时间、菌液浓度、侵染时间、共培养时间和温度对遗传转化的影响。研究结果表明,淡黄色、颗粒状、疏松易碎的胚性愈伤组织是较好的遗传转化材料。以在愈伤组织培养基上预培养8天的淡黄色、颗粒状、疏松易碎的胚性愈伤组织为转化受体,在菌液浓度为OD600=0.05的EHA105中侵染20min后,在25℃、黑暗条件下共培养2天(共培养基表面加一层无菌滤纸),在含有卡那霉素为55mg.L-1的抗性筛选培养基上筛选30天,抗性愈伤组织率为90%,经PCR检测,慈竹4CL基因已导入梁山慈竹愈伤组织中。抗性愈伤组织在芽诱导培养基上诱导30天,可获得丛生芽,待丛生芽长至3～5cm后,在生根培养基上经过20～30天的诱导,可产生1～8条根,获得再生植株。经PCR检测,慈竹4CL基因已导入梁山慈竹再生植株中,获得了转基因植株,转化效率为9%。RT-PCR检测结果表明,转4CL基因的梁山慈竹愈伤组织和植株的内源4CL基因的表达受到抑制,且表达量比对照明显降低。     

农杆菌介导的山苍子遗传转化体系的构建

目的 筛选适合山苍子愈伤组织分化的激素比例,研究其对抗生素的耐受性,构建山苍子遗传转化体系。 方法 以山苍子无菌苗茎段诱导的愈伤组织为试验材料,研究不同激素浓度配比对山苍子愈伤组织诱导不定芽及不定芽生根的影响,探讨愈伤组织对潮霉素和头孢霉素的临界筛选浓度,并通过农杆菌介导法将外源基因导入山苍子愈伤组织中。 结果 筛选出诱导愈伤组织不定芽分化培养基为：MS + 2.0 mg·L−1 6-BA + 0.01 mg·L−1 IBA + 0.05 mg·L−1 TDZ,分化率为16.67%～36.67%;不定芽生根培养基为1/2MS + 0.5 mg·L−1 IAA,生根率为97.33%。遗传转化初期筛选抗性愈伤组织的潮霉素浓度为5 mg·L−1（约7～10 d）,通过逐步增加潮霉素浓度至30 mg·L−1进行筛选培养,头孢霉素最适浓度为300 mg·L−1。采用农杆菌介导法将外源基因转入愈伤组织中,并设计PCR引物进行鉴定,共检测16株抗性苗均含有目的条带,表明目的基因已插入山苍子基因组中,转化率为0.67%。通过Southern检测表明,目的片段已插入山苍子愈伤组织中。 结论 初步建立山苍子再生及遗传转化体系,且已获得多个基因的抗性愈伤组织,为进一步开展基因功能研究及遗传改良提供技术支持。     

农杆菌介导BADH基因转化美丽胡枝子的研究

以子叶节为外植体,草丁膦为选择剂,对根癌农杆菌LBA4404介导的美丽胡枝子遗传转化进行研究,建立美丽胡枝子遗传转化体系,获得转BADH基因植株,最高转化率可达28%.抗性植株经分子检测表明,目的基因已整合进美丽胡枝子基因组中.NaCI胁迫下,转基因植株能积累更多的甜菜碱,证明BADH基因在转化植株中得到正常表达.     

农杆菌介导高羊茅基因转化体系的建立

以高羊茅(FestucaarundinaceaSchrebb)品系宾哥(Bingo)为材料,建立了农杆菌介导的基因转化方法。高羊茅种子在9mgL-12,4-D作用下,获得胚性愈伤组织。愈伤组织经农杆菌侵染,在30和50mgL-1的潮霉素浓度梯度下筛选,得抗性愈伤组织。组织化学染色法证实,uidA基因在抗性愈伤组织中表达:抗性愈伤组织在分化培养基中分化得到转基因植株。PCR、Southern杂交法证实外源基因已导入到高羊茅植株中。图5参37。     

提高根癌农杆菌介导的香石竹遗传转化效率的研究

以无菌苗叶片为外植体,在根癌农杆菌介导下建立并优化了香石竹5个品种的遗传转化体系。预培养2d可明显提高转化率;香石竹品种间在转化上存在差异;培养基中添加20μmol的AgNO3抑制不定芽的分化。转化植株在含25mg·L-1卡那霉素的生根培养基上培养,生根率为72 1%,GUS检测结果55%的转化植株呈蓝色,PCR扩增表明阳性率为32 2%,Southern杂交证实外源基因已整合到植物基因组中。     

花叶扶芳藤扦插繁殖技术

以花叶扶芳藤枝条为试材,研究不同配比的泥炭、珍珠岩、蛭石和河砂混合基质以及不同质量浓度的NAA、IAA和IBA速浸插条基部对生根的影响。结果表明:以泥炭-珍珠岩-蛭石(4∶3∶3)为基质扦插花叶扶芳藤的成苗率和平均根数最高;扦插前用3种植物生长调节剂快速浸蘸插条基部,均能显著地提高花叶扶芳藤扦插成苗率、根长和生根数。但以NAA 200~400 mg/L浸蘸插条基部,成苗率最高,达91.05%;以半木质化枝条扦插生根率较高。     

农杆菌介导的杜仲叶片愈伤组织遗传转化体系

【目的】优化杜仲叶片愈伤组织的再生体系,研究愈伤组织对抗生素和抑菌剂的敏感性,探索影响农杆菌介导杜仲愈伤组织遗传转化的最适转化因子水平,构建农杆菌介导的杜仲愈伤组织瞬时转化体系,使杜仲成年植株外植体为受体的遗传转化成为可能,为杜仲基因功能的研究与定向改良奠定基础。【方法】以杜仲成年植株叶片为材料诱导愈伤组织,通过添加不同浓度植物生长调节剂与大量元素的MS培养基进行不定芽的诱导与增殖,确定最适培养基。在此基础上,在培养基中添加不同浓度抗生素及抑菌剂,研究愈伤组织对其敏感性。以获得的叶片愈伤组织受体系统为基础,通过L_(16)(4~5)的正交试验,探索不同转化因子对农杆菌介导叶片愈伤组织遗传转化的瞬时转化效率的影响,建立最适瞬时转化体系。使用获得的瞬时转化体系对愈伤组织进行遗传转化操作,筛选抗性芽,对抗性芽进行GUS组织化学染色与PCR检验。【结果】再生体系优化的结果表明,3/4大量元素浓度的MS培养基能够促进杜仲愈伤组织不定芽的诱导及生长;愈伤组织诱导不定芽的最适培养基为3/4MS+0. 27μmol·L~(-1)NAA+4. 4μmol·L~(-1)6-BA,诱导率为83%±10. 0%;不定芽复壮的最适培养基为3/4MS+0. 054μmol·L~(-1)NAA+4. 4μmol·L~(-1)6-BA,平均伸长长度为(2. 47±1. 33) cm。抗生素与抑菌剂敏感性试验表明,遗传转化的选择培养基中,抑菌剂头孢霉素的最适浓度为200 mg·L~(-1),筛选用的抗生素卡那霉素最适浓度为70 mg·L~(-1)。转化因子的正交试验表明,最适的农杆菌介导杜仲叶片愈伤组织遗传转化的转化因子组合为:预培养5天、侵染10 min和共培养3天。使用最适瞬时转化体系对约200个愈伤组织进行遗传转化操作,共筛选获得3个抗卡那霉素的抗性芽; GUS组织化学染色显示GUS基因在抗性芽中得到了表达,PCR检测证明这些抗性芽中存在NPTⅡ基因。【结论】杜仲叶片愈伤组织诱导不定芽的最适培养基为3/4MS+0. 27μmol·L~(-1)NAA+4. 4μmol·L~(-1)6-BA,不定芽复壮的最适培养基为3/4MS+0. 054μmol·L~(-1)NAA+4. 4μmol·L~(-1)6-BA。农杆菌介导的杜仲叶片愈伤组织瞬时转化体系为:预培养5天、侵染10 min和共培养3天,筛选培养基为3/4MS+0. 054μmol·L~(-1)NAA+4. 4μmol·L~(-1)6-BA+200 mg·L~(-1)Cef+70 mg·L~(-1)Km。利用此体系共获得3个抗性芽,PCR分析和GUS组织化学染色都表明T-DNA已整合到抗性芽基因组中。     

转录因子CBF基因转化烟草抗寒性指标的检测

为了解棉花转录因子CBF基因转化烟草的抗寒性,将苗龄21d的转基因及其野生型T2代烟苗进行0、-1、-2、-3、-4℃低温处理4h,分别进行各处理材料的电解质渗透率、丙二醛含量和可溶性糖含量的检测。结果表明转基因烟草的电导率和丙二醛含量均低于非转基因烟草,而转基因烟草的可溶性糖含量高于非转基因烟草。证实转CBF基因可以提高烟株的抗寒性。     

农杆菌介导的SeNHX1基因转化月季愈伤组织的研究

Pink Peace’rose was used to study the optimum conditions for transferring the SeNHX1 gene into the callus. The results showed that the optimal medium was MS+2,4-D 5.0 mg·L^-1 + TDZ 0.5 mg·L^-1. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation was able to take the target gene into callus and the blue spots were found. The optimum conditions for the transient expression of gusA gene are as following: bacterium density of OD was 0.5, infection time was 20 min, culture time was 3 days. Adding 100 μmol·L^-1 AS, the frequency of transient expression of GUS gene was the highest, which reached about 85% in present study.     

多胺物质对农杆菌介导欧美杨107遗传转化影响的研究

利用多胺对携带植物表达载体pBI121的农杆菌EHA105进行活化,之后侵染欧美杨107的叶环.GUS瞬时表达分析表明多胺活化使农杆菌的侵染效率增强,腐胺和亚精胺处理分别为对照的2.4倍和1.8倍.可见使用多胺活化农杆菌有助于提高杨树的转化率.     

根癌农杆菌介导的淡紫拟青霉遗传转化体系的建立

基于根癌农杆菌介导的遗传转化方法,选择植物线虫生防真菌淡紫拟青霉的分生孢子为受体,建立以G418为筛选标记遗传转化体系.通过优化遗传转化条件,达到较高的转化效率:1000～2400个转化子·10-6分生孢子.对转化子进行PCR验证,表明T-DNA已整合到淡紫拟青霉的基因组中,表型测定发现转化子的遗传表现稳定.农杆菌介导淡紫拟青霉突变体库的建立,为进一步筛选对植物线虫致病性高的突变体、了解淡紫拟青霉的侵染过程和侵染机制提供基础,对培育更优良的植物线虫生防菌株,开发高效生防制剂等具有重要的意义.     

彩叶扶芳藤扦插繁殖生根剂比较试验

采用不同生根剂用不同浓度和浸蘸方法进行彩叶扶芳藤扦插比试验。结果表明:采用"森生2号"生根剂500×10-6、穗条基部浸泡2s,生根率达87.96;采用"森生1号"生根剂500×10-6、穗条基部速蘸2s,生根率达84.26。在此基础上,组装成彩叶扶芳藤扦插繁殖配套技术。     

根癌农杆菌介导Caz基因转化烟草条件研究

利用根癌农杆菌介导Caz基因转化烟草,将外源基因导入烟草愈伤组织,建成可诱导表达细胞质和细胞核CaM/CaM结合多肽的转基因烟草．研究结果表明:植物材料的选择和培养、农杆菌的培养和稀释、植物材料与农杆菌共培养的程度及转基因植株的筛选条件是影响农杆菌转化效率的重要因素．