东北对开蕨孢子体诱导技术的研究

以东北对开蕨孢子为试材,采用无菌培养及常规繁殖的方法,研究了常规条件和无菌条件对孢子体诱导的影响。结果表明:孢子最佳萌发培养基为1/4MS无糖培养基;最佳增殖培养基为MS+15g/L蔗糖;最佳孢子体无菌诱导培养基为MS培养基;最适宜的常规诱导条件是以草炭为最适宜基质,温度20~30℃,空气湿度95%。     

萨米特甜樱桃离体快繁技术研究

以萨米特甜樱桃1年生枝休眠芽为外植体,进行离体快繁技术研究.结果表明,最佳诱导培养基为MS 6-BA 1.0mg/L GA0.5mg/L;最佳增殖培养基为改良MS 6-BA 1.0mg/L IBA 0.25mg/L;最佳生根培养基为1/2MS IBA 0.5mg/L.     

不同激素配比对碧桃离体快繁的影响

以碧桃的单芽茎段为试材,以MS培养基为基本培养基,研究了不同的激素浓度及配比对碧桃腋芽诱导、增殖和生根的影响,结果表明:碧桃腋芽诱导的最佳培养基为MS KT 0.5mg/L NAA 0.1 mg/L,在此培养基中碧桃腋芽诱导率可达93.3%,且生长良好;最佳增殖培养基为MS KT 0.3 mg/L NAA 0.08 mg/L,其增殖率可达75%,增殖系数为1.5;最佳的生根培养基为1/2 MS NAA 0.3 mg/L,生根率为50%。该研究结果可为生产提供一定的参考。     

甜樱桃新品种玲珑脆的组织培养和离体快繁技术

试验对河北省农林科学院昌黎果树研究所培育的新品种玲珑脆进行了组培快繁研究。结果表明:适宜的芽萌发培养基为MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.05 mg/L;增殖培养基为MS+6-BA 0.6 mg/L+NAA 0.05 mg/L,增殖系数平均3.2;生根培养基为1/2 MS+IBA 0.5 mg/L+IAA 0.5mg/L,移栽成活率达到85%以上,建立了一套较为简单、有效的甜樱桃组织培养和离体快繁技术程序。     

牡丹离体快繁技术研究

以“洛阳红”和“姚黄”等品种为试材,对牡丹的离体快繁技术进行了研究。结果表明：牡丹芽培养的适宜外植体是２月份取材的休眠芽。附加ＢＡ１ｍｇ·Ｌ－１和ＧＡ０．５ｍｇ·Ｌ－１的改良ＭＳ培养基对牡丹芽的增殖和生长最有效。１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１ｍｇ·Ｌ－１培养基有利于牡丹试管苗生根。在较低温度下,以腐殖土作基质,牡丹试管苗的移栽成活率达４８％。     

我国藏红花离体快繁技术研究进展

藏红花离体快繁技术是解决我国藏红花资源短缺、繁殖系数低及球茎退化问题的有效途径。研究综述近几年我国藏红花离体快繁技术研究进展,总结并探讨藏红花离体快繁技术研究结果,为建立高效稳定的藏红花离体快繁体系提供参考。     

抗病南瓜种质482-2离体快繁技术研究

以抗病南瓜种质482-2的种子为起始材料,通过对组培条件下的培养基筛选试验,建立离体快繁技术体系.结果表明:MS+6-BA 1.0 mg/L是南瓜子叶诱导不定芽的适宜培养基,不定芽在MS+6-BA 1.0 mg/L培养基中增殖系数能够达到4.0,在MS+IBA 0.2 mg/L培养基上不定芽生根率达到83.3%.再生小植株经驯化、移栽,成活率可达95%.     

3种软枣猕猴桃的离体快繁技术

以3种软枣猕猴桃的春季新梢为外植体,对其进行了离体快繁研究,结果表明:3种软枣猕猴桃初代诱导的最佳培养基为MS+BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L;桓优1号、魁绿2个品种的最适宜增殖培养基为MS+6-BA 0.7mg/L+NAA 0.05mg/L,龙成2号的最适宜增殖培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.05mg/L,3种软枣猕猴桃在培养基1/2 MS+IBA 0.1mg/L+NAA 0.05mg/L中生根率达90%以上。     

白藓优良单株的选择及离体快繁技术研究

以野生白藓地下幼芽为外植体,进行优良单株的选择和组织培养研究,以期建立其快繁体系.结果表明:丛生芽诱导的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L,诱导率为90％;最佳增殖培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L,增殖系数为4.6;最佳生根培养基为1/2MS+NAA 2.0 mg/L,生根率为70％.为提高试管苗的增殖率,其最佳继代周期为30 d.     

东北对开蕨两种繁殖技术的研究

以东北对开蕨（Phyllitis japonica Kom．）的孢子叶为繁殖材料,进行组织培养繁殖和常规人工播种繁殖。结果表明：不同的繁殖方法对东北对开蕨孢子的萌发和原叶体的增殖有明显影响,组织培养繁殖的孢子成活率较低但原叶体增殖率为45％;人工播种繁殖的孢子萌发情况很好但原叶体的增殖率为34％。从东北对开蕨完整植株形成来看,组织培养技术更适宜其生长。     

PEG渗透胁迫对对开蕨生理特性影响

研究在聚乙二醇6 000(PEG 6 000)室内模拟干旱条件下,比较不同浓度PEG渗透胁迫对对开蕨的形态、叶片含水量、细胞膜透性、可溶性糖、可溶性蛋白以及根活力的影响。结果表明:浓度为10%、20%和30%的PEG胁迫28 h后,其形态均受到不同程度损害,其复水存活率分别为46.7%、53.3%和0。其叶片含水量、细胞膜透性与胁迫程度呈正相关。可溶性糖均随着胁迫的时间延长而累积,20%浓度胁迫12 h时达到峰值31.9 mg/g,是参与对开蕨渗透调节的主要物质之一。可溶性蛋白含量在不同浓度胁迫下均呈下降趋势,但中期均有回升现象。不同程度胁迫后根活力均较对照有显著的提高,表明在渗透胁迫下对开蕨可以通过迅速提高根系活力来缓轻损伤,保存活性。     

薇菜孢子人工繁殖的环境条件

薇菜孢子适于在4～5℃低温下保存；薇菜孢子具有休眠特性,但光照可打破其休眠；孢子萌发温度为10～30℃,适宜温度为20～28℃,温度超过30℃时孢子萌发开始受抑制；原叶体可耐受2℃的低温,受精适宜温度为20～28℃；孢子体生长最适温度为25～28℃；孢子体繁殖的光照条件以2000lx为佳；A3(腐熟有机肥+草炭土+山林土)可作为薇菜孢子体繁殖技术推广的最佳基质.     

秋菊单芽茎段试管快繁研究

用秋菊优良品种"万盛"萌发的腋芽新梢作为外植体,以MS为基本培养基,进行了离体培养研究.结果表明:MS BA 2.0～3.0mg/L NAA 0.1mg/L适合于"万盛"芽的诱导,MS BA 0.5mg/L NAA 0.1mg/L适合于继代培养,1/2 MS IBA 0.15mg/L具有理想的生根效果.采用珍珠岩练苗过程,试管成活率可达100%;试管苗直接栽入营养土中,效果亦较好,成活率可达95.6%,是一种简捷有效的方法.     

滇润楠的组织培养及快速繁殖研究

 用滇润楠成年树带芽嫩茎、嫩叶和根部萌蘖枝条上带芽嫩茎为材料进行组织培养，在Ms+BA 4 mg·L^-1‘+NAA 0.5 mg·L^-1 的培养基上，树冠越冬芽褐化较轻，腋芽萌发率高，小苗生长良好，同时也有利于后期增殖；在MS+BA 8mg·L^-1+NAA 0.5 mg·L^-1 +KT 1.0 mg·L^-1的培养基上能分化出丛生芽，但增殖率低；在1/2 MS +NAA 0.1 mg·L^-1的培养基上诱导出白色健壮根。外植体取材部位、取材时间、激素等因素是引起滇润楠组培褐变及影响快速繁殖的主要原因。     

火炬姜离体快繁技术研究

 试验表明：火炬姜组培快繁以Ms+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.1 mg/L+CW 10%作为增殖培养基可以获得理想的效果，增殖倍数可达4.3倍；以双芽为外植体在该培养基上经30 d培养可增殖5.4倍；在不含任何激素的1/2 Ms+0.15%活性炭培养基上即可形成较发达的根系，生根率达100%；试管苗移栽对基质要求不严，移栽到疏松透气、富含有机质的表土中，成活率高达100%，而且植株生长良好。     

醉蝶花离体培养植株再生研究

 诱导醉蝶花下胚轴和子叶形成愈伤组织, 以MS + 6-BA 0.5 mg/L + NAA 0.5 mg/L + KT 0.5 mg/L培养基中子叶的出愈率最高, 达到100 % , 下胚轴出愈率最高只有93 %。MS + 6-BA 2 mg/L + NAA 0.05 mg/L最适合于芽的诱导, 诱导率达到100 %。再生苗在MS + NAA 0.1 mg/L 培养基中生根完成植株再生。带单个侧芽的茎作为外植体接种在MS + 6-BA 1 mg/L + NAA 0.05 mg/L 培养基中, 一个月以后形成无数丛生芽。     

旱金莲的离体培养与快速繁殖

选取生长健壮、无病虫害带3～4叶的旱金莲侧枝,常规表面灭菌后,顶芽除去肉眼能见到的幼叶,侧枝分切成单芽茎段,接种于诱导培养基上,适宜的培养基为MS BA0.5 mg·L-1(单位下同) LAA0.1～0.2.增殖培养基为MS BA 1.0 IAA0.1最合适,每3周作为一个继代周期,增殖倍数可达8～10倍.以1/2 MS NAA 0.2作为生根培养基,10 d生根,生根试管苗的移栽以混合基质草炭:蛭石:珍珠岩=3:2:1为好.     

珍稀濒危植物青岛老鹤草扦插繁殖研究

对珍稀濒危植物青岛老鹳草扦插繁殖技术进行研究。结果表明:基质、激素及其浓度、浸蘸时间对青岛老鹳草叶插、茎插生根效果有显著影响;叶插最优组合为:珍珠岩作基质,在IBA 100mg/L中浸蘸5s;茎插最优组合为:基质为草炭:素沙(1:1),在国光生根粉200mg/L中浸蘸15s。     

珍稀濒危植物珙桐离体快繁技术初步研究

 研究了我国一级珍稀濒危树种珙桐(Davidia involucrata Baill.) 带芽茎段的离体培养。筛选出最佳培养基: ( 1) 冬芽诱导培养基: WPM+BA 2.0 mg·L^-1+NAA 0.1 mg·L^-1; (2) 丛生芽诱导培养基: WPM + BA 2.0 mg·L^-1; (3) 丛生芽增殖培养基: WPM+ BA 2.0 mg·L^-1+ ZT 0.1 mg·L^-1; (4) 生根培养基: WPM + NAA 0.5 mg·L^-1。