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以毛百合鳞片为外植体,比较了不同激素种类及浓度对鳞片小鳞茎等诱导的影响,旨在建立毛百合鳞片组织培养再生体系.结果表明:最佳不定芽诱导培养基为MS+ 0.5 mg/L NAA+ 0.5 mg/L 6-BA,诱导率达到86.7%,分化系数6.77;最佳增殖培养基为MS+ 0.1 mg/L NAA+ 1.0 mg/L 6-BA,增殖系数7.8;毛百合小鳞茎生根较容易,最佳生根培养基为1/2MS +0.3 mg/L NAA,生根率91.7%,平均生根数7.20. 相似文献
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为野生卷丹种质资源的繁殖、保存与利用提供依据,采用随机区组试验方法探究NAA、6-BA和2,4-D不同配比对野生卷丹鳞茎不定芽诱导及再生植株形成的影响.结果表明:相同6-BA浓度下,生长素对野生卷丹鳞茎不定芽的诱导作用依次为NAA>NNA+2,4-D>2,4-D,最佳不定芽诱导培养基为MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.3 mg/L,平均产芽6.21个;最佳增殖培养基为MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA1.0 mg/L,其增殖系数3.46;最佳生根培养基为1/2 MS+NAA 1.0 mg/L,平均生根6.20个. 相似文献
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以东方百合‘Siberia’离体鳞片为外植体,研究不同激素质量浓度对芽的诱导、增殖、小鳞茎形成、叶片和叶柄再生及生根的影响。结果显示:最适不定芽诱导培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L,分化率85%;最适增殖培养基为MS+6-BA 0.7mg/L+NAA 0.2mg/L,芽增值系数为3.83;不定芽形成鳞茎的适宜培养基为:MS+6-BA 0.2mg/L+NAA 0.5mg/L+7%蔗糖,增值系数2.47。鳞片叶片的最适再生培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+2,4-D 1.0mg/L,分化率为92.5%;叶柄的最佳再生培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L,分化率为83.3%;暗培养对鳞片叶片及叶柄的再生无显著性的差异,分化率均在80%以上;最适生根培养基为1/2MS+NAA 0.2mg/L,生根率100%。 相似文献
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[目的]建立石蒜组培快繁体系。[方法]以石蒜鳞片为外植体,采用组织培养的方法对石蒜进行扩大繁殖,在不同诱导阶段对石蒜鳞茎进行试验以得到最佳激素类别及配比。[结果]石蒜鳞茎不定芽诱导的最佳激素及配比为MS+6-BA 10 mg/L+NAA 0.5 mg/L,不定芽增殖的最佳激素及配比MS+6-BA 5 mg/L+NAA 0.5 mg/L,生根培养基的最佳激素配比为MS+NAA 2.0 mg/L。[结论]为后续的试验和生产化提供一定的基础。 相似文献
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卫矛茎段组织培养中消毒方法及不定芽诱导 总被引:1,自引:0,他引:1
《东北林业大学学报》2016,(12)
以卫矛(Euonymus alatus(Thunb.)Sieb.)茎段为外植体,通过在4—9月不同时间取材,并采用升汞和次氯酸钠不同处理时间、升汞结合吐温、紫外线照射等消毒方法,筛选外植体最佳取材时间和最佳消毒方法;同时,研究了不同质量浓度的激素和琼脂对不定芽诱导的影响,并采用L_9(3~4)正交试验设计,探讨MS、B5、White不同培养基和不同质量浓度的6-BA、NAA、GA_3对不定芽增殖的影响,筛选出不定芽诱导和增殖的最佳培养基。结果表明:5月中旬为茎段的最佳取材时间;HgCl_28 min并加入两滴吐温-20为消毒的最佳方法;MS+6-BA2.0 mg/L+NAA0.05 mg/L+琼脂7.0 g/L是卫矛茎段不定芽诱导的最佳培养基,诱导率高达70.67%;在正交试验的9个处理中,以MS+6-BA0.5 mg/L+NAA0.05 mg/L的增殖系数最高为19.25,通过极差分析得出MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.05mg/L是卫矛不定芽增殖的最佳培养基,增殖系数为23.51。 相似文献
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以东方百合品种‘Sorbonne’鳞片为外植体,研究不同因子对‘Sorbonne’消毒、诱导、增殖、生根等的影响。结果表明:‘Sorbonne’外层鳞片消毒最为困难,而中层和内层差异不大;最佳消毒方法是外层鳞片用75%酒精处理30 s再用0.1%升汞浸泡18~20 min;中层和内层鳞片用75%酒精处理30 s,再用0.1%升汞浸泡14~16 min,其中不同部位鳞片诱导率从高到低分别为外层>中层>内层,其中外层的诱导率为76.7%;百合鳞片最佳增殖培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,增殖系数为6.8;最佳生根培养基为1/2MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA0.2 mg/L,平均生根数为20条。 相似文献
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[目的]探讨不同灭菌剂对外植体的灭菌效果及不同激素组合对马槟榔芽诱导和增殖的影响,建立马槟榔的组培快繁体系.[方法]用马槟榔一年生的幼嫩茎段及幼苗作为外植体,以MS为基本培养基,附加不同的激素组合对外植体进行芽诱导和增殖培养.[结果]相对于10%次氯酸钠,0.1%升汞对马槟榔外植体灭菌效果更理想,灭菌率达到90%,且外植体的生长状况良好.在芽诱导培养中,随着6-BA的增加,马槟榔芽的诱导数呈先增后减的变化趋势;当6-BA为1.0 mg/L时,诱导率最高;当NAA为0.5 mg/L时,诱导率相对较高.在增殖培养中,当6-BA用量大于NAA时,增殖系数较低;当6-BA用量小于NAA时,增殖系数较高,最高可达3.8,且丛芽长势好,芽苗粗壮,叶片颜色正常.[结论]升汞对马槟榔外植体的灭菌效果优于次氯酸钠;芽的最佳诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,芽增殖最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L. 相似文献
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欧李的组织培养与快速繁殖技术 总被引:11,自引:0,他引:11
以欧李春季萌发枝为外植体进行组织培养的初步研究。结果表明;L 6-BA1.omg/L NAA0.5mg/L培养基对欧李茎段的启动有较好的效果,同时MS的启动效果也较好;适宜继代增殖的6-BA浓度为0.5mg/L-1.0mg/L,NAA为0.img/L-0.5mg/L;增殖培养的激素组合中6-BA/NAA在1~10之间较适宜;较理想的生根培养基为L IAA0.5mg/L,生根率可达83.3%。 相似文献
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生姜芽的组培快繁 总被引:2,自引:1,他引:2
[目的]寻找生姜芽组培快繁的最佳方案。[方法]以MS为基础培养基,设计生姜芽组培快繁的两条途径,选择生姜芽组培快繁的最佳培养基配方。[结果]结果表明,茎尖→芽最适培养基为:改良MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;茎尖→愈伤组织→芽,茎尖诱导愈伤组织的最适培养基为:改良MS+2,4-D 2.0 mg/L+KT 1.0 mg/L,愈伤组织诱导芽分化的最适培养基为:改良MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L。采用超净工作台上用75.0%酒精30 s+10.0%NaClO 15 min+0.1%HgCl210 min+50 ug/L青霉素与台外消毒相结合对外植体进行表面消毒,去污效果最佳。[结论]对愈伤组织进行切割并继代培养后再诱导芽分化,可获得较大的增殖倍数。 相似文献
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索蚌百合鳞片的组织培养 总被引:3,自引:0,他引:3
以百合品种索蚌(Sorbonne)鳞片为外植体,比较各种消毒时间和接种方法的效果,研究不同激素质量 浓度对芽的诱导、增殖、小鳞茎培养及生根的影响.结果表明,索蚌鳞片最适合的消毒时间是70%酒精30s、0.1%升 汞15 min,成活率可达60.0%,百合鳞片不同部位的分化能力从大到小依次为下部、中部、上部,外层、中... 相似文献
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[目的]为乌药的规模化人工育苗提供理论依据。[方法]以乌药植物当年生健壮枝条为外植体,研究不同激素种类及浓度对其不定芽的诱导及生根的影响,筛选出最佳培养基。[结果]适宜于乌药组织培养的最佳外植体取材时间为6~7月,以当年生带芽茎段的嫩枝为最适宜;2.5 mg/L 6-BA是乌药不定芽增殖时最有效的浓度;诱导乌药外植体不定芽增殖的最佳培养基为MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.2 mg/L;乌药苗在增殖过程中的继代周期以40~50 d为宜;最佳壮苗培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L;最佳生根培养基为MS+NAA 0.5 mg/L,生根率98%~100%。[结论]采用合适的外植体以及激素种类与浓度为最佳配比的培养基可使传统的中药材乌药植物成功地诱导不定芽的分化、生根与再生。 相似文献
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以积雪草(Centella asiatica)的春芽作为外植体,以MS培养基为基本培养基,添加不同激素,分别组配成12种愈伤组织诱导培养基和丛芽增殖培养基进行组织培养,然后将诱导的积雪草丛芽切成单株后接入4种生根培养基,研究不同激素配比对愈伤组织的形成、丛芽的增殖及生根的影响.结果表明积雪草春芽在MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.20 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L培养基上容易诱导愈伤组织,诱导率为86%.丛芽在MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L+活性炭0.1 g/L培养基上的成活率为94%,增殖系数为5.9.以MS+6-BA 0.4 mg/L+NAA 0.2 mg/L+活性炭0.1 g/L为培养基较有利于生根培养. 相似文献
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以木本菊茎段为外植体,研究了木本菊的组织培养及快繁技术。结果表明,最佳芽分化培养基是MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/LIAA+1.0%糖,约60~70 d可诱导出丛生芽;在MS+0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+1.0%糖的培养基上增殖速度最快,每升10 g的蔗糖浓度也最有利于芽的增殖;最适的扎根培养基是1/2 MS+0.1~0.3 mg/L NAA+1.0%糖或1/2 MS+0.05 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+1.0%糖,6~10 d可扎根,35~40 d可移栽。 相似文献