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东北刺人参研究现状与展望 总被引:1,自引:0,他引:1
综述了目前东北刺人参的研究进展,包括种子休眠和萌发、分子生物学、栽培、生长环境、化学成分、药理作用等方面的研究,并对东北刺人参的进一步研究进行了展望。 相似文献
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[目的]研究东北刺人参的物候期。[方法]通过对东北刺人参物候期的观测,研究其与气温、空气湿度和地温的关系,掌握其生长规律。[结果]刺人参芽萌动期从5月7日开始,为期8 d,日均气温15℃,空气湿度41%,地温8.5℃;展叶期从5月15日开始,为期9 d,日均气温26℃,空气湿度43.5%,地温15.7℃。结实期从8月8日开始,日均气温26℃,空气湿度81%,地温26.7℃。落叶期从10月15日开始,日均温14℃,空气湿度53%,地温13.1℃。[结论]芽萌动期是5月7日,展叶期5月15日,结实期8月8日,落叶期10月15日。 相似文献
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东北刺人参人工扩繁技术研究现状 总被引:7,自引:1,他引:7
结合5年来对东北刺人参有性繁殖研究结果,综述了近20年来国内东北刺人参人工扩繁技术,包括形态特征,生物学特性,生态习性,分布特点,有性繁殖技术,无性繁殖技术以及仿生栽培等内容,为东北刺人参人工栽培提供依据。 相似文献
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以东北刺人参试管苗叶片为材料,建立东北刺人参RAPD反应优化体系.结果表明:20.0μL反应体系含250.0μmol/L dNTP,2.0μmol/L MgCl2,1×Buffer,0.3μmol/L引物,10.0 ng DNA模板,1.5 U Taq DNA聚合酶,9.8μL ddH2O;扩增反应程序为:94℃预变性5min,94℃变性45 s,36℃退火1 min,72℃延伸1.5 min,40个循环,最后72℃延伸7 min时获得的RAPD指纹图谱带型清晰、重复性好. 相似文献
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刺人参(Oplopanax elatus Nakai)为五加科植物东北刺人参的根。是我国长白山区特有珍贵药材。性温味辛苦。据报道,刺人参近做人参作用。为了阐明刺人参的药用机理,了解其化学成分,我们对其化学成分进行了系统的研究。 1 实验部分 1.1 仪器 722型光栅分光光度计(上海第三分析仪器厂),日立—835型氨基酸自动分析仪(日本),MarkⅡ型800系列等离子直读光谱仪。(美国),JMSD_(300)—JMA_(2000)色谱—质谱—计算机联用仪。 相似文献
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东北刺人参种子经第1个周期7个月的变温层积处理,完成形态后熟而裂口与完成生理后熟而萌发的种子比率均很低,种子裂口率为13.6%,发芽率为2.3%.第1周期处理未发芽的种子,经第2个周期11个月的层积处理,种胚可继续完成形态后熟并通过生理后熟而萌发,并且裂口率和发芽率均高于第1周期,其中室外树荫环境条件下层积处理的种子裂口率和发芽率明显高于室内-冰箱环境条件下处理的种子.第1周期完成形态后熟未萌发的种子在低温层积处理30 d后陆续完成生理后熟而萌发,至350 d时,总发芽率为56.8%. 相似文献
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东北刺人参播种苗移栽试验 总被引:4,自引:0,他引:4
刺人参当年生播种苗移栽到其原产地能够完全成活和正常生长。移栽后3a内苗高生长表现出快速增加的趋势;地径生长表现出缓慢的增长趋势;主根长增长量年度间差异不大;单株鲜质量呈增长趋势,但增长幅度小于苗高。2、3年生播种苗移栽到分布区外与原产地相似的生境条件下完全能够成活,但2年生播种苗栽后第一年生长受阻。移栽到原产地的播种苗比在温室内培养的播种苗生长快。 相似文献
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本文报道了东北刺人参的生药性状,组织显微构造和粉末特征,发现它与人参和西洋参有相似之处,亦有可资区别的固有特征。这对刺人参的生药鉴定有重要参考价值。 相似文献
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东北刺人参组培快繁的可行性研究 总被引:1,自引:0,他引:1
在MS培养基中加入BA1.0mg/L时可产生3个健壮的丛生苗。采用组织培养技术快速繁殖刺人参幼苗具有可行性,这对保护和开发濒危的刺人参资源具有极其重要的意义. 相似文献
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[目的]探明濒危植物东北刺人参(Oplopanax elatus Nakai)组培的可行性,为快速繁殖其种苗提供依据。[方法]以东北刺人参无菌播种苗为材料,研究了BA与NAA的组合浓度和接种方法对不定苗增殖的影响及NAA、活性炭和WPM培养基浓度对生根的影响。[结果]WPM培养基中加入1.0mg/LBA和0.2mg/LNAA,将试管苗顶端去除后进行培养可促进不定苗的形成。3/4WPM培养基中加入0.1mg/LNAA,1.0g/L活性炭时,试管苗生根率达到100%。[结论]利用组培方法扩繁东北刺人参具有可行性,该方法是保护和利用东北刺人参资源的有效途径。 相似文献
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以东北刺人参带叶柄的叶片为外植体,对愈伤组织诱导、增殖、分化、生根及种质保存的最适培养基进行了筛选。最适宜的愈伤组织诱导培养基为1/2B5 6-BA1.0mg/L NAA0.1mg/L IBA0.2mg/L KT0.1mg/L VC50mg/L;愈伤组织增殖培养基为2/3MS 6-BA1.0mg/L NAA0.5mg/L VC100mg/L;愈伤组织再分化培养基为MS 6-BA1.0~2.0mg/L NAA0.05mg/L VC100mg/L;生根培养基为1/5MS IBA0.01mg/L;种质保存最适宜的培养基为1/10MS(大量元素) 1/3MS(微量元素) 1/2MS(铁盐) 1/4MS(有机物质)。 相似文献