百合鳞片离体培养的研究

以'布鲁拉诺'、'提伯'和'索蚌'3个百合品种的鳞片为外植体,比较了不同的消毒方法、不同品种、不同取材部位及接种方法对百合鳞片离体培养的影响.结果表明,最佳的消毒方法是0.1%升汞消毒8 min,污染率较低,成活率最高,可达90.9%,且采用小鳞茎整体消毒可以有效降低污染率.不同百合品种分化小鳞茎的能力有较大差异,分化能力依次为'布鲁拉诺'＞'索蚌'＞'提伯'.百合鳞片不同部位分化小鳞茎的能力从大到小依次为下部、中部、上部.近轴面向上接种的鳞片分化能力强于远轴面向上,小鳞茎再生率最高,可达100%.     

有斑百合鳞片离体培养研究

以有斑百合鳞片为外植体,研究不同激素配比对不定芽诱导、增殖、生根的影响及不同基质对试管苗移栽成活的影响。结果表明:鳞片诱导不定芽的最佳培养基为MS+BA 0.5mg/L+NAA 0.5 mg/L,诱导率达80.0%;最佳继代培养基为MS+BA 1.0 mg/L+NAA 0.1mg/L,增殖系数达2.83;最佳生根培养基为MS+IBA 0.5 mg/L,生根率达100.0%;试管苗最适扦插基质为珍珠岩,扦插成活率达96.7%。     

百合远缘杂交未成熟子房的离体培养研究

以不同百合种间杂交获得的子房为外植体,根据子房的发育程度,采用子房切片、胚珠或者小胚进行离体培养,观察子房切片、胚珠和小胚的萌发和生长情况,以期筛选出适合小胚、胚珠和子房切片萌发和生长的培养基。结果表明:适合子房切片培养的培养基为MS+NAA 0~0.3mg/L+蔗糖30 000mg/L;适合胚珠培养的培养基为1/2MS+BA 0~0.2mg/L+蔗糖30 000mg/L;适合小胚培养的培养基为1/2MS+BA 0~0.2mg/L+NAA 0~0.2mg/L+蔗糖30 000mg/L。     

食用百合的离体快繁研究

百合（Lilium brownii var．viridulum Baker）是单子叶植物纲百合科百合属的总称。为多年生宿根草本植物。本属在世界上有90余种。原产我国的约有47种。百合除具有观赏价值外，大多数可以食用，是上等的滋补佳品。我国过去有四大传统的百合产区。分别是江苏宜兴、河南洛阳、湖南龙牙和甘肃兰州。前三个产地种植的百合鳞茎苦味重一些，主要是药用，只有兰州百合味道甘甜，适合做菜食用，因而有上百年的种植历史。随着人们生活水平的提高和对生活质量的追求，食用百合作为特种蔬菜日益受消费者青睐，市场需求越来越大。     

‘木门’组织离体培养与植株再生研究

以OT型百合‘木门’鳞片为试验材料,通过不同溶度激素,进行愈伤诱导及分化、生根诱导、组培苗移栽,建立OT型百合生根移栽体系。结果表明,最佳分化诱导培养基为MS＋1.0 mg/L 6-BA＋0.2 mg/L NAA;最佳生根培养基为1/2 MS＋0.1 mg/L NAA。     

2个蓝莓品种叶片离体培养技术研究

以蓝莓品种‘北陆’‘斯巴坦’的组培苗叶片为外植体,研究其离体培养技术。结果表明:在含有1.5 mg/L ZT、0.3 mg/L IAA、30 g/L庶糖、4.5 g/L琼脂、pH值4.5的改良WPM培养基上进行离体叶片再生培养,最早37.7 d观察到再生植株。60 d后‘北陆’再生率最高达到93.5%,‘斯巴坦’再生率最高达到89.8%,‘北陆’再生效果优于‘斯巴坦’。‘北陆’叶片再生的适宜pH值为5.0,斯巴坦为4.5。pH值过高或过低再生率降低,愈伤组织形成少或无,叶片发黄、最后枯萎。不同叶片处理方式和暗培养对蓝莓叶片再生影响均不大。     

蛇莲离体培养研究

采用不同培养基对蛇莲不同的外植体进行离体培养,对其组培苗作细胞渗透性分析.结果表明:以MS为基本培养基优于、WV基本培养基;6-BA(0.5mg·L-1)利于顶端茎段外植体增殖,而抑制底端茎段外植体增殖,各类外植体以顶端茎段为最佳培养材料;添加6-BA的MS培养基上的组培苗表现出低的细胞膜渗透率,更能适应出苗后大田环境生长.     

西瓜离体培养技术的研究

本文研究了西瓜主芽、子叶、下胚轴和根的离体培养技术。结果表明：芽增殖速度与ＢＡ、ＮＡＡ含量关系密切，诱导芽增殖以Ｗ１４（ＭＳ＋ＢＡ２＋ＮＡ０．１＋蔗糖３％）培养基较佳；子叶离体培养诱导不定芽与苗龄、培养基、子叶组织的部位有关；培养基中ＮＡＡ、ＩＢＡ的存在及含量对下胚轴、胚根愈伤组织的产生有直接的关系。芽经诱导成苗后，转移到生根培养基中（１／２ＭＳ＋ＩＢＡ１＋蔗糖３％），长出根后移到珍珠岩中保温保湿     

东方百合花器官组织培养研究

取东方百合Sorbonne的花萼、花瓣和花丝为外植体,接种于经过筛选的最佳诱导培养基上,进行诱导率和分化率的比较,将花丝分成3段,进行分段培养的最佳培养基和最佳花丝部位筛选.结果表明:花萼的愈伤诱导率和不定芽再分化率最高,分别为92.0%和89%,花瓣次之,花丝最低.花丝分段培养的最佳诱导培养基为MS NAA 1.0 mg/L BA 0.2 mg/L;花丝各部位分化能力是中部＞基部＞顶部;中部花丝在 MS NAA 1.0 mg/L BA 0.2 mg/L培养基上的愈伤诱导率和不定芽再分化率都达到100%.     

观赏羽衣甘蓝组织培养研究

羽衣甘蓝(Brassica Oleracea var. acephala)具有较高的食用和观赏价值.研究以羽衣甘蓝的幼茎和嫩叶为外植体,进行组织培养研究,结果表明:幼茎诱导愈伤组织的最佳培养基为MS 6-BA 4.0mg/L 2,4-D 0.1mg/L,此配方对嫩叶作为外植体同样适宜,诱导率高达90%以上; 以培养基MS 6-BA 2.0mg/L NAA 0.1 mg/L不定芽分化率最高;在生根阶段以培养基1/2 MS NAA 1.0mg/L生根效果最好, 生根率可达100 %,生根5.5条/株,根系健壮.     

荷兰百合新品种索尔邦的快繁技术研究

选用荷兰百合品种索尔邦鳞茎、顶芽、茎段、叶等不同部位进行离体,以鳞茎为最佳外植体,以MS 6-BA 2.0 mg/L IAA 1.0 mg/L的培养基诱导丛生芽效果最好,其诱导率为96.7%,而且鳞片诱导中鳞茎中部表现出较大的器官发生潜力.百合继代增殖培养以MS BA1.0 mg/L IAA0.4 mg/L培养基为宜,组培苗在MS IAA0.5 mg/L的培养基中较易生根,生根时间为25 d左右.     

测定百合花粉生命力的液体培养基研究

 以东方百合品种‘索蚌’的新鲜花粉为试材, 利用单因子试验比较了液体培养基中蔗糖浓度及硼、钙、镁、钾对其萌发的影响。在此基础上进行正交试验, 比较蔗糖、H₃BO₃ 、CaCl₂ 对百合花粉萌发的影响。试验结果表明: 蔗糖和H3BO3 对百合花粉萌发有极显著影响。适宜的花粉培养液为: 蔗糖100 g·L ^{- 1} +H₃BO₃ 20 mg·L ^{- 1} +CaCl₂ 20～30 mg·L ^{- 1}。纯水培养液会造成花粉原生质体破裂, 内含物外流;高浓度的蔗糖和盐会造成原生质体失水萎缩, 质壁分离, 这两种情况都抑制花粉萌发。     

促进观赏百合试管苗移栽成活的研究

对百合品种Connecticut King、Enchantment和Hinomoto在移植时期的营养液浓度和基质等方面进行了研究,结果表明,组培苗根长小于1cm时,是移植的最佳时期;在瓶苗移植过程中,不同时期应施用不同浓度的营养液。过渡培养15天后,即可将组培苗移植入土,最适宜的基质是1/3沙土 1/3草炭 1/3腐殖土。Hinomoto的组培苗较Enchant.ment和Connecticut King移植后容易成活,成活率达90％。     

九个百合品种在陕西关中地区的引种试验

以从智利引进的Siberia等7个东方百合品种和Manissa等2个OT杂交系品种为试材,研究9个百合品种在陕西关中地区的生长习性,观察其在陕西关中地区物候期、生长发育规律、切花性状及再繁品质。结果表明：百合各品种的物候期、生长发育规律、切花质量、种球性状均有显著差异,东方系中Siberia、Sorbonne和OT杂交系Manissa、Conca Dor适应性较好,花大、色艳、味香,植株生长健壮,观赏价值高,经济效益好,可推广种植。     

百合远缘杂交种组培诱导及增大鳞茎的研究

以东方百合‘Siberia’与新铁炮百合‘Sayaka’远缘杂交种的组培苗为试材,用正交实验方法筛选出最适合该组培苗诱导鳞茎培养基,并进一步研究不同浓度的JA、ABA对鳞茎增大的影响。结果表明:MS+0.2 mg/L 6-BA+0.06 mg/L NAA+85 g/L蔗糖为该远缘杂交种组培苗诱导成鳞茎的最适培养基,鳞茎平均直径达到10 mm;0.1 mg/L JA最有利于鳞茎的增大;0.5 mg/L ABA最适合鳞茎增大培养,ABA浓度越高鳞茎休眠越深。     

百合的花药培养研究

 对百合花药培养的影响因素研究显示, 小孢子最适培养时期为单核期; 愈伤组织诱导率最高可达42. 16 % , 最佳激素组合为2 ,42D 3. 0 mg·L^-1+ KT 3. 0 mg·L^-1; 低温预处理作用不大; 早分化出的花蕾中的小孢子更易诱导产生愈伤组织; 分化培养基以改良MS + NAA(2. 0、4. 0 mg·L^-1) 为宜; 花粉植株中单倍体(n = 12) 约25 % , 二倍体(2 n = 24) 约75 %。     

银柳胡颓子茎尖组织培养的研究

以银柳胡颓子(Elaeagnus angusti folia L.)茎尖为外植体,MS为基本培养基,添加不同比例的植物生长调节剂,进行了离体培养.结果表明,茎尖初代培养基最佳组合为:1/2 MS BA 3.0 mg/L IAA 0.01 mg/L 蔗糖20 g/L 琼脂10 g/L;芽继代增殖的最适培养基为:MS KT 1.0 mg/L 蔗糖20 g/L 琼脂7.5 g/L;无根苗转移到1/2 MS NAA 0.1 mg/L 蔗糖20 g/L 琼脂7.5 g/L的培养基上,生根率达100%.