解磷细菌 Burkholderia 的分离鉴定及对香草兰生长和 P 吸收 的影响

香草兰为喜磷作物,从香草兰种植园中分离筛选到一株解磷微生物——伯克霍尔德氏菌 V-29。在 NBRIP 液体 培养基中摇床振荡培养 5 d 后可溶性磷含量达 475.3 μg/mL,培养基 pH 下降。通过大田试验研究了接种绿色荧光蛋白 标记后的解磷菌株 V-29 及其与有机肥发酵制得的微生物有机肥对香草兰生长和磷素吸收的影响。结果表明：单独接种 V-29 或施用微生物有机肥可显著增加香草兰植株干重、土壤有效磷含量;移栽 4 个月后,标记菌株 V-29 在香草兰根际 土壤中的含量可达 106 cfu/g 土壤。由此可见,伯克霍尔德氏菌 V-29 可单独作为生物菌剂或与有机肥发酵制得微生物有 机肥后用于农业生产中,以减少化肥施用量。     

解磷细菌解磷机制研究进展及其在水稻上的应用

磷是植物生长不可缺少的元素。土壤中总磷含量丰富,但可被植物直接吸收利用的有效磷含量却很低。传统上主要通过施用磷肥提高缺磷地区的作物产量。然而,施入土壤中的磷不仅易被固定,还会转化成难以被植物直接吸收利用的有机磷,从而降低植物对磷的吸收利用率,造成环境污染。解磷细菌具有将土壤中难溶态磷转化为可被植物直接吸收利用的有效磷的功能,提高植物对磷的吸收利用率。解磷细菌种类繁多,作用机制复杂且影响因素众多。本文综述了解磷细菌解磷机制的研究进展,总结了解磷细菌在水稻生产上的应用情况,以为提高稻田土壤难溶态磷的利用效率提供理论依据。     

水稻根际土壤解磷细菌筛选及其解磷机制研究

解磷细菌通过提高植物根际有效磷的含量提高植物对磷的吸收利用,是重要的农业微生物资源。本文通过筛选和鉴定得到甲壳虫WSH-0021细菌（Bacillus megaterium WSH-0021）和阿氏芽孢杆菌（Priestia aryabhattai）2个菌株。甲壳虫WSH-0021细菌和阿氏芽孢杆菌分别在培养12 h和8 h进入对数生长期,并且2种细菌进入对数生长期后均显著降低培养液的pH值。用无机和有机磷细菌解磷能力鉴定液体培养基分别培养甲壳虫WSH-0021细菌和阿氏芽孢杆菌,培养基中有效磷含量分别较对照提升了392.78%和1 799.02%。将2种细菌分别接种至土样1（低磷土壤）和土样2（高磷土壤）后培养30 d,以单纯添加细菌培养基的土样作为对照,结果显示,土样1和土样2中的细菌丰度和微生物量磷含量均显著增加,说明细菌在土壤中存活并发挥作用。接种甲壳虫WSH-0021细菌后,土样1和土样2中的有效磷含量分别增加了21.15%和11.66%;接种阿氏芽孢杆菌后,土样1和土样2中的有效磷含量分别增加了13.68%和12.07%。进一步研究发现,接种解磷细菌后2个土样的pH值均显著...     

香草兰白绢病的初步研究

根据香草兰白绢病的症状,病原菌的形态、培养性状和寄主范围,将该菌鉴定为齐整小菌核菌（Ｓｃｌｅｒｏｔｉｕｍｒｏｌｆｓｉｉ　ｓａｃｃ）。菌核净药效试验结果表明,在室内,有效浓度等于或大于１００μｇ／ｍＬ可抑制病菌生长;苗期病害防治,有效浓度为５００μｇ／ｍＬ,防治效果达８９．７％。     

高产香草兰栽培土壤条件的研究

对海南不同管理水平香草兰种植园土壤理化性状调查分析和土壤ｐＨ、水分地表覆盖盆栽试验的研究结果表明,香草兰栽培要维持高产稳产,在土壤管理中必须达到如下主要条件：（１）香草兰对土壤ｐＨ反应极为敏感,最适于生长的土壤ｐＨ值为６．５,在ｐＨ６．０￣７．０范围内生长良好,低于ｐＨ５．５和高于ｐＨ７．０都抑制其生长,低ｐＨ的抑制作用大于高ｐＨ,酸性土壤施石灰对生长和养分吸收反应良好;２）香草兰喜湿而好气,土壤     

香草兰营养特性的研究

对海南不同生产水平的香草兰种植园植株的养分调查分析,及Ｎ,Ｐ,Ｋ,Ｃａ,Ｍｇ肥料的盆栽试验,研究香草兰的营养特性。结果表明,香草兰植株养分的吸收量以Ｋ〉Ｃａ〉Ｎ〉Ｍｇ〉Ｐ,叶片以Ｃａ〉Ｋ〉Ｎ〉Ｍｇ〉Ｐ;结果植株养分吸收量Ｎ：Ｐ：Ｋ：Ｃａ：Ｍｇ＝１．００：０．２４,１．３９：１．１８：０．４８,盆栽幼苗Ｎ：Ｐ：Ｋ：Ｃａ：Ｍｇ＝１．００：０．１０：１．３８：１．２３：０．３３;高产园植株Ｃａ,Ｐ含量极     

香草兰疫病疫霉菌种的鉴定

从云南西双版纳的景洪、勐腊两地的热带作物园香草兰疫病果荚、茎节、叶片上分离到10个疫霉分离菌,根据孢子囊、厚垣孢子、藏卵器、雄器形态、菌落形态及主要生长温度,鉴定为烟草疫霉（寄生疫霉）Phytophthoranicotianae(P.parasitice),10个分离菌株均属于A1交配型。      

香草兰生防细菌的筛选、分子鉴定及其抑菌机制的初步研究

通过平板对峙法从香草兰根际微生物中筛选出对香草兰根(茎)腐病菌(Fusarium oxysporum)、香草兰疫病菌(Phytophthora nicotianae)和香草兰细菌性软腐病菌(Erwinia carotovora)均有良好抑制效果的生防菌10株。通过16S rDNA序列比对及系统发育树分析,其中7株为解淀粉芽孢杆菌(Bacillus. amyloliquefaciens),2株为枯草芽孢杆菌(B. subtils),1株为甲基营养型芽孢杆菌(B. methylotrophicus)。提取脂肽类化合物进行抑菌分析,发现10株生防菌脂肽类提取物对香草兰根(茎)腐病菌和香草兰疫病菌均有良好的抑制效果,有4株的脂肽类粗提物对香草兰细菌性软腐病菌有强烈的抑制活性。对其中2个菌株脂肽类粗提物进行MALDI-TOF/TOF-MS检测,发现菌株 VX2R11 产生表面活性素(Surfactin)和伊枯草素A(IturinA)2种脂肽类化合物,菌株 VX2S02 仅产生伊枯草素A,推测产生伊枯草素A是菌株VX2R11和VX2S02拮抗香草兰根(茎)腐病菌和疫病菌重要机制;产生表面活性素是菌株VX2R11拮抗香草兰细菌性软腐病菌的重要机制。     

香草兰营养诊断方法的研究

通过多年多点的调查分析,初步确定高产香草兰营养诊断适宜的采样时间１０－１１月;采样部位为自茎蔓顶叶向下数第７－８片叶;香草兰营养诊断指标包括养分含量适宜范围和重要养分平衡比值。养分含量适宜范围为：Ｎ２．１５％－２．４０％,Ｐ０．４３％－０．５０％〉Ｋ２．７０％－３．２０％,Ｃａ３．６０％－４．２０％,Ｍｇ０．３５－０．７０％。重要养分平衡比值适宜范围为：Ｎ／Ｐ４．００－５．３３,Ｐ／Ｃａ０．０１８     

香草兰组培苗生根与移栽的研究

对香草兰组培苗进行生根与移栽试验。结果表明：香草兰组培苗生根培养基MS+6-BA 0.1mg/L与NAA 0.1mg/L,生根率达100%。移栽基质为椰糠＋细沙＋苔藓(体积比1∶1∶1),移栽成活率达82%。无主根组培苗在NAA 500 mg/L激素中速沾10 s后移栽成活率达60%以上。     

海南省香草兰种植园植株养分状况研究(简报)

对海南省香草兰主要种植区的香草兰种植园的植株样品进行了测试分析。结果表明:香草兰种植园植株养分缺乏严重,植株N、P、K、Ca、Mg缺乏的香草兰园分别占全省的62.07%、100%、6.90%、93.10%、79.31%,其中P、Ca缺乏最严重;且各养分之间比例严重失衡,N/P、P/Ca、Mg/P、Mg/Ca、K/P严重不平衡的香草兰园分别占全省的100%、93.1%、82.75%、82.76%、100%。由于香草兰是典型的喜P、Ca作物,因此建议各种植园加大P、Ca肥的投入,同时增施N、Mg肥,使各养分都达到最适香草兰生长的浓度,同时使各养分之间达到平衡。     

香草兰花芽分化期蛋白质及碳水化合物变化研究

以墨西哥香草兰花芽分化期花芽、混合花芽、叶芽及其功能叶为研究对象,研究香草兰花芽分化期蛋白质及碳水化合物变化及其差异,结果表明：香草兰叶芽蛋白质含量持续下降,花芽和混合花芽的蛋白质含量在花序分化初期上升至顶峰而后下降,说明香草兰花芽在花序分化前需要累积大量蛋白质。叶芽的可溶性糖、蔗糖含量均无显著变化,花芽和混合花芽均存在明显的上升和下降趋势;在整个花芽分化期,花芽可溶性糖和蔗糖含量均高于叶芽。叶芽的淀粉含量呈升高趋势,花芽和混合花芽的淀粉含量呈先上升后下降趋势。在整个花芽分化期过程中,花芽、混合花芽功能叶C/N比均高于叶芽功能叶,且花芽功能叶和叶芽功能叶间差异达显著水平。     

施用不同有机肥对香草兰生长及土壤酶活性的影响

通过大田试验研究施用不同有机肥对香草兰生长,叶绿素荧光特性及土壤酶活性的影响。结果表明:有机肥和生物有机肥混合施用的处理香草兰茎蔓和叶片干重显著高于施用牛粪的处理;施用生物有机肥和有机肥的处理香草兰叶片表观电子光合传递速率(ETR)和实际光化学效率(Yield)无显著性差异,但均显著高于施用牛粪的处理;有机肥和生物有机肥混合施用的处理土壤酸性磷酸酶、脲酶和蔗糖酶活性显著高于施用牛粪的处理。综上所述,有机肥和生物有机肥配合施用可显著促进香草兰生长,提高香草兰的光能利用效率和土壤酶活性。     

香草兰O-β-葡萄糖苷酶底物特异性和温度稳定性研究

香草兰是最重要的食品香料之一,其主要香味成分为香兰素,主要存在于香草兰豆荚中。香兰素一般由成熟豆荚中的香兰素葡萄糖苷经过漫长的发酵过程转化而来。O-β-葡萄糖苷酶在发酵生香的过程中起着关键作用。研究结果表明:香草兰的根、茎、叶和豆荚中都具有O-β-糖苷酶活性,豆荚活性最高,叶片活性最低;来自不同器官的O-β-糖苷酶的底物特异性一致,都能降解香兰素糖苷、2-NPG、4-NPG,都不能降解n-OG及硫代葡萄糖苷;香草兰糖苷酶提取物在50～60℃处理1 min,对酶活性影响很小,70℃处理1 min,酶活性丧失约40%,说明香草兰糖苷酶对高温具有一定耐受性,杀青后剩余糖苷酶活性在漫长的发酵过程中能够满足酶促反应的需求。     

种植年限对香草兰生理状况及根际土壤微生物区系的影响

对不同种植年限香草兰园植株生理指标及根际土壤微生物区系进行测定分析。结果表明:10 a以上园龄的香草兰叶片净光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量显著降低,而0～5 a园龄香草兰叶片各生理指标并无显著性差异。平板稀释涂布结果显示:5、10和20 a园龄香草兰根际可培养细菌和放线菌数量显著低于新植园,根际细菌与新植园相比分别降低了58.4%、91.6%、96.7%;根际真菌及尖孢镰刀菌数量呈相反趋势,与新植园相比,真菌数量分别是新植园的1.6、2.1和3.4倍。综上所述,种植10 a以上的香草兰园植株生长代谢缓慢,土壤微生物由细菌型向真菌型转变,微生物区系失衡。     

外源溶磷菌对不同土壤条件下大豆生长特性的影响

为了明确溶磷菌在多种土壤中的应用效果,探讨了两株溶磷菌对黑土及盐碱土种植大豆的促生效应。采用盆栽试验分析了不同处理对大豆光合作用、渗透调节物质含量、生物量、氮磷吸收及产量的影响。结果表明:加菌处理可增加植株Pn,显著降低R6、R8两时期叶片可溶性蛋白、可溶性糖及游离氨基酸含量,增加R2~R8时期大豆株高和根干重,混合土壤中加菌处理也可提高植株地上部分氮、磷及植株全磷、全氮含量。添加wj1和混合菌处理的植株干重优于添加wj3的处理。黑土加混合菌可显著提高大豆R2期叶片WUE,增加V3、R2和R8这3个时期大豆地上、地下部分氮、磷及植株全氮、全磷的含量。黑土加wj1与混合土壤加菌处理的大豆株荚数、总粒数、单株粒重及百粒重均高于未加菌处理。添加外源溶磷菌,对黑土及盐碱土栽培大豆均有不同程度的促生效果,能明显增强大豆在混合盐碱土壤中的适应性,增加植株生物量、氮磷吸收量和产量,且混合菌处理对大豆的促生效应优于wj1及wj3单一菌株处理。     

施用生物有机肥对可可苗期生长及土壤酶活性的影响

通过温室盆栽试验研究施用不同生物有机肥对可可苗期生长及土壤酶活性的影响.结果表明:施用生物有机肥BIOa和BIOb的处理可可植株干重,总根长、根系直径、根系表面积和根系总体积显著高于对照(单施化肥)及施用牛粪的处理;施用生物有机肥BIOa的处理可可叶片净光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量与对照相比分别增加了169％、270％和28％;施用BIOa的处理土壤酸性磷酸酶、脲酶和蔗糖酶活性与对照相比显著提高了98.7％、92.2％和83.2％.综上所述,施用生物有机肥BIO可显著促进可可地上部植株和根系生长,同时也可显著提高相关土壤酶活性.     

Nursery Growth of Banana (Musa spp.) Plantlets Rooted on Auxin-free and Auxin-supplemented Media

Abstract

This paper describes the effects of auxin added to the culture medium on main and branch root formation of banana (Musa spp.) shoots and growth characters of the plantlet rooted on the medium with and without auxin. Banana shoots cultured in vitro on Murashige and Skoog medium supplemented with 2 μM 1-naphthylacetic acid (NAA), rooted earlier and also had more adventitious roots than those cultured on the medium without NAA. However, the adventitious roots formed on the medium without NAA showed more lateral branching. Plant height and number of leaves per plantlet in in vitro culture were not influenced by the addition of NAA but under nursery conditions, plantlets rooted without NAA showed better growth in terms of days to the appearance of new leaf, plant height and number of leaves per plant. This might be due to the presence of abundant lateral roots. Even though auxins are generally known to promote rooting, NAA inhibited the formation of lateral roots in Banana plants.