蓬莪术的离体快繁研究

[目的]探索蓬莪术的离体快繁技术。[方法]以蓬莪术嫩叶、块茎和根为外植体,接种在以MS为基本培养基,外加不同浓度激素组合的培养基上进行愈伤组织诱导、增殖和分化培养;以幼芽为外植体,进行幼芽的增殖、生根培养和移栽等。[结果]诱导蓬莪术叶、块茎和根的愈伤组织形成的最适培养基为MS＋2,4-D1.0 mg/L＋6-BA0.5～1.0 mg/L＋NAA0.3 mg/L,其中蓬莪术叶诱导率最高,达96%;愈伤组织增殖和分化培养还有待进一步研究。幼芽最适增殖培养基为MS＋6-BA3.0 mg/L＋NAA0.1 mg/L＋KT1.0 mg/L,其增殖倍数达3.5以上;而生根培养基以1/2 MS＋NAA1.0 mg/L＋6-BA0.5 mg/L为最佳,生根率达100%,其移栽成活率达85%以上。[结论]该研究结果为蓬莪术的快速繁殖及工厂化生产奠定了基础。     

白花马蹄莲离体快繁技术研究

[目的]建立白花马蹄莲的离体快繁体系。[方法]选取白花马蹄莲球茎和叶片作为试验材料,采用组培法进行繁殖试验。[结果]接种前球茎的消毒时间以8 min为宜,叶片的消毒时间以4～6 min为宜,最佳球茎诱导分化培养基为MS+2.0 mg/L BA+0.1 mg/LNAA,最佳叶片诱导分化培养基为MS+1.0 mg/L BA+0.5 mg/L NAA;在相同的温度、湿度和光照条件下,应选择马蹄莲球茎作为培养材料;最佳增殖培养基为MS+1.0 mg/L BA;最佳生根培养基为MS+0.1 mg/L IBA;最佳移栽基质为珍珠岩∶蛭石∶草炭土∶沙子=2∶2∶4∶1;最佳移栽时期为生根培养后10～15 d。[结论]为白花马蹄莲的组织培养提供了参考依据。     

胡杨离体快繁及生根技术研究

采用MS为基本培养基,通过加入不同浓度的的生长调节剂,对胡杨的离体增殖与生根培养基进行筛选,结果表明:胡杨离体增殖培养的最适培养基配方为MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.5 mg/L,增殖率达87%;最佳生根培养基为1/2MS+IBA1.5 mg/L,生根率达到了97%,并将生根的胡杨苗进行移栽,成活率达24%。     

甜柿离体快繁技术研究

以“富有”和“次郎”的休眠芽为外植体,对甜柿离体快繁技术进行了研究。结果表明,聚乙烯吡咯烷酮（ＰＶＰ）可有效地防止外植体褐变,提高分化率。芽的增殖和生长适宜的ＺＴ和ＩＡＡ浓度分别为１～２ｍｇ／Ｌ和０．０５～０．１０ｍｇ／Ｌ。在含有ＺＴ１ｍｇ／Ｌ的改良ＭＳ（ＫＮＯ３和ＮＨ４ＮＯ３减半）培养基中加入ＢＡ１ｍｇ／Ｌ,能提高有效新梢率,降低试管苗成本。ＩＡＡ诱导生根的效果优于ＩＢＡ,用生长素溶液浸新梢基部后转入１／２ＭＳＯ培养基中对生根更有利。在较低温度下,以腐殖土作基质,试管苗的移栽成活率可达８５％以上。     

白芥离体快繁体系的建立

以白芥幼苗为外植体,MS和1/2MS为基本培养基分别加入不同浓度的6-BA、NAA和KT进行白芥离体再生技术体系研究.结果表明:以白芥幼苗为外植体进行培养,其不定芽增殖效果较好.6种不定芽增殖培养基增殖效果存在明显差异,其中最适宜的芽增殖培养基是MS+1mg/L 6-BA+1mg/L KT,侧芽及不定芽生长迅速、且旺盛,2周后不定芽平均增殖到10个;大量元素含量对幼苗的壮苗具有显著效应,其中3MS培养基的壮苗效果最好,培养21d的苗较对照明显变粗壮;组培苗接种在1/2 MS+0.133mg/L NAA的培养基上诱导生根的效果最佳,茎段培养约15d时发现白色根,主根较多、细长,有侧根,每单株可达7条根.     

月季粉扇离体快繁技术研究

为了建立月季粉扇离体快繁技术体系,以月季粉扇的健壮枝条为外植体,研究外植体的消毒、丛生芽诱导、丛生芽增殖、生根壮苗及炼苗移栽,建立一套适合月季粉扇的离体快繁技术体系.结果表明,外植体消毒的最佳方法为75％的酒精消毒1 min+0.1％HgCl2消毒15 min,培养基添加1 mL/L山农1号,污染率为12％,成活率可达...     

栝楼离体快繁的初步研究

对药用植物栝楼的离体快繁进行了研究.结果表明,MS培养基+BA 0.2～0.3 mg·L-1+NAA 0.1～0.2mg·L-1组合最适合诱导栝楼茎段腋芽形成无菌试管苗;MS+BA 0.1 mg·L-1+NAA 0.1～0.2 mg·L-1组合是继代增殖最适培养基:1/2 MS+NAA 0.2mg·L-1组合是生根最适培养基.     

春石斛离体快繁与瓶内开花

以春石斛假鳞茎为外植体,进行初代培养与瓶内开花试验。结果表明,MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.2 mg/L培养基的效果最佳,腋芽形成多,腋芽萌发高且壮,有利于增殖培养;萌发后的腋芽转入花芽诱导培养基中,20 d后瓶内开花,但花期较短,畸形花比例较高,且在花蕾成花过程中容易出现败育情况,试管内花芽诱导最佳培养基为MS+6-BA6.0 mg/L+NAA 0.3 mg/L。     

结球甘蓝的离体快繁技术研究

以结球甘蓝无菌苗的胚轴和子叶为材料 ,几乎不生长愈伤组织 ,分化出不定芽。不定芽在添加 6 -BA的MS培养基上增殖很快 ,适宜的生根培养基为 1/ 2MS IBA0 5mg/L NAA0 1mg/L。通过增加培养基中糖和琼脂粉的用量 ,提高培养时的光照强度等有效控制了玻璃苗的产生     

牛角瓜离体快繁技术研究

以牛角瓜幼嫩顶芽为外植体,研究了0.1%的升汞不同处理时间对无菌顶芽有效成活率的影响,即将所得无菌顶芽去顶后的茎段接种在分别添加了不同质量浓度的6-BA、TDZ、IBA、NAA的MS培养基上,进行离体培养。结果表明：采用0.1%的升汞消毒处理10min效果最好,牛角瓜顶芽的有效存活率为82.2%;适宜的增殖培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L,25d后的增殖倍数为3.9;组培苗的最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.1mg/L,其生根率可达100%;将生根苗移栽到混合基质[V（红心土）：V（腐殖土）：V（珍珠岩）=2：2：1]中,45d后的移栽成活率为90%以上。牛角瓜快繁体系的成功建立,可为其遗传改良及优良单株的快速繁育提供理论依据及实践指导。     

彩椒的离体快繁研究

以红盾彩椒为试材,进行组培快繁,研究不同激素类型与配比组合对愈伤组织诱导、不定芽分化及芽的伸长的影响,并初步建立彩椒的组培快繁体系.结果表明:子叶愈伤诱导最适培养基为:MS-+-0.3mg/L6-BA+1.0 mg/L NAA;不定芽诱导最适培养基为:MS+3.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L IAA+4.0 mg/L AgN03;芽伸长最适培养基为:MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA+2.0 mg/L ZT+2.0 mg/L GA3;最后在1/2MS+0.5 mg/L IBA(或0.5mg/L NAA)培养基上进行生根培养.     

芋离体快繁体系的优化

试验以芋芽茎尖为材料进行组培快繁研究。在BA,ZT,KT3种细胞分裂素中,以BA分化不定芽效果最好。其中MS BA3.0～4.5mg／L NAA0．2mg／L分化率较高。在进一步的芽增殖培养中,经过优化试验,发现培养芋芽半个月时,以MS BA4、0mg／L NAA0．2mg／L的增殖系数最高,为5．9。另外,芋芽的生根培养基以MS N从0．2mg／L最佳。     

桉树离体快繁研究

以细尾桉为试材进行离体快繁研究。结果表明:通过二步消毒法,0.1%升汞能有效控制褐变,提高芽苗成活率;芽苗增殖较适宜的培养基为MS+0.5 mg.L-1BA+0.2 mg.L-1NAA;生根较适宜的培养基为1/2 MS+0.2 mg.L-1NAA,生根率达96%以上。     

虎杖的离体快繁

[目的]为组培繁殖虎杖种苗提供参考。[方法]采用组培法,以虎杖带节的嫩茎段及顶芽为外植株进行离体培养。[结果]适于虎杖芽诱导的培养基为MS培养基,每一节段均长出一个芽;增殖培养基和生根培养基均为MS+0.05 mg/L BA+0.2 mg/L NAA+马铃薯5%;增殖系数为4～6,生根率96%以上,移栽成活率90%以上。[结论]此方法在很大程度上提高了虎枚组培的繁殖系数与移栽成活率。     

上西早生甜柿离体快繁技术研究

对上西早生甜柿的离体快繁技术进行了研究,比较了基本培养基、激素种类和浓度对组培苗生长状态和快繁指数的影响,结果显示MS培养基优于MS(1／2N),ZT1．0mg/L的快繁效果明显好于BA5．0mg/L。生长在ZT0．5mg/L、BA1．0mg/L中的组培苗高度及生长状态,与ZT 1．0mg/L相比无显著差异,IAA的快繁效果好于IBA和NAA。     

乌桕离体快繁再生技术研究

以乌桕当年生幼嫩茎段为外植体,研究不同种类和不同浓度植物生长调节剂对其组织培养过程的影响,建立乌桕离体快繁再生体系。结果表明：芽体诱导培养以MS+NAA 02mg/L+6-BA 3.0mg/L为最佳培养基,萌芽率最高,达8719%;在启动培养中,为了控制褐化现象,在培养基中添加2.0g/L PVP效果最好;增殖培养以MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 010mg/L为最佳培养基;1/2 MS+IBA 1.0mg/L+NAA 01mg/L诱导出的生根率最高。     

无籽西瓜离体快繁技术研究

以湘西瓜11号(无籽西瓜)的子叶苗茎尖、真叶苗茎尖和带1腋芽的茎段为外植体进行离体快繁技术研究.结果表明:带1腋芽茎段的外植体成苗效果最好.能够有效解决丛生芽诱导苗参差不齐、大小不一的问题,可为无籽西瓜种苗工厂化和规模化生产提供大量健壮、生长一致的嫁接材料.带-腋芽茎段离体快繁的最佳培养基为I/2MS 6-BA 0.6mg/L.