外源ABA对低温胁迫下蝴蝶兰叶片生理指标的影响

为研究脱落酸(ABA)对蝴蝶兰抗寒性的影响,以蝴蝶兰中苗为试材,叶面喷施50 mg.L-1脱落酸(ABA)1 d后,于6℃低温胁迫4 d,以清水喷施为对照,在低温处理0,1,2,3和4 d后测定叶片相对电导率、丙二醛(MDA)含量、脯氨酸(Pro)含量、过氧化氢酶(CAT)和超氧化物歧化酶(SOD)活性。结果表明:喷施ABA可以延缓蝴蝶兰叶片的相对电导率和MDA含量的上升,减少Pro的累积量,提高CAT和SOD的活性。说明喷施ABA提高了蝴蝶兰叶片的抗氧化酶活性,减少了膜脂过氧化产物的积累,降低了细胞膜透性,从而减轻了低温胁迫的伤害。     

叶面喷施外源ABA对烤烟生长及品质的影响

 为探明叶面喷施脱落酸（ABA）对烤烟生长及品质的影响,开展了不同浓度（0,0025,005,0075,010,0125,015mmol/L）的脱落酸条件下烤烟生育期、农艺性状、经济性状和化学成分的研究。结果表明,在005~0125mmol/L范围内,越高浓度的脱落酸水平,生育期缩短的优势越是明显,高于和低于此范围的脱落酸浓度都不利于缩短生育期;喷施010~0125mmol/L脱落酸既有利于烟株的生长发育,又有利于提高产量、产值、上等烟比例和中上等烟比例,且降低了氯含量、蛋白质含量和氮碱比,提高了总氮、总糖、还原糖、钾含量、钾氯比（K/Cl）和施木克值,明显改善了烟叶的品质。因此,浓度为010~0125mmol/L脱落酸的喷施效果最好,但要得出最适宜浓度还要进一步的试验研究。     

叶面喷施外源ABA对胡椒抗寒生理生化及ABA信号转导相关基因的影响

[目的]筛选出能提高胡椒抗寒性的脱落酸(ABA)适宜浓度,明确低温胁迫条件下外施适宜浓度ABA对胡椒叶片ABA信号转导相关基因SnRK2和PYL表达的影响,为生产上提高胡椒抗寒技术及揭示ABA信号在胡椒抗寒中的作用机理提供依据.[方法]以热引1号胡椒为试验材料,通过叶面喷施0(CK)、25(T1)、50(T2)、75(T3)、100(T4)mg/L ABA及4℃低温胁迫处理,测定各处理胡椒叶片叶绿素荧光参数、抗氧化酶活性(POD、CAT和SOD)、H2O2和MDA含量.在筛选出适宜ABA喷施浓度的基础上,进一步运用实时荧光定量PCR分析ABA信号转导相关基因的表达情况.[结果]低温胁迫后,不同浓度ABA处理的胡椒POD、CAT和SOD活性与CK相比均显著上升(P<0.05,下同),其中T2处理的POD活性升高最显著,T3处理的CAT和SOD活性升高最显著;随着ABA处理浓度的升高,H2O2和MDA含量呈先下降后上升的变化趋势,以T3处理含量最低,即一定浓度外源ABA处理对胡椒抗寒生理发挥积极作用.低温胁迫0 d时,不同ABA浓度处理的胡椒Fv/Fm和Fv/Fo无显著变化;低温胁迫4d时,其Fv/Fm和Fv/Fo均显著降低,但T3处理缓解Fv/Fm和Fv/Fo下降效果显著,即ABA预处理能够在一定程度上缓解低温对胡椒光系统潜在活性的抑制.低温胁迫0 d时,不同ABA浓度处理胡椒的qP和Yield无显著变化,但qN随着ABA处理浓度的升高明显下降,即正常生长条件下,外施不同浓度ABA对胡椒叶片的qP和Yield无影响,但会减弱胡椒的光保护能力;低温胁迫4 d时,不同ABA浓度处理的胡椒叶片qP、qN和Yield均有不同程度的下降,随着ABA处理浓度的升高,qN呈现下降、上升再下降的变化趋势,qP呈先下降后上升的变化趋势,T3处理成为转折点,即在低温胁迫下外源ABA能够提高胡椒的光保护能力,其中T3处理效果相对较好.低温胁迫条件下,ABA预处理可诱导ABA信号转导相关基因SnRK2和PYL提前并高表达.[结论]外源ABA通过提高胡椒抗氧化酶活性、降低H2O2和MDA含量及缓解低温对其光系统活性的伤害,从而提高胡椒抵抗低温胁迫的能力.外源ABA还能诱导胡椒ABA信号转导相关基因表达,启动和引发植株固有抗冻性基因的表达,进而提高其耐冻性.     

叶面喷施不同浓度ABA对美香桃果实品质的影响

为探讨外源物质脱落酸(ABA)对桃果实品质的影响,本试验以美香为试材,叶面喷施不同浓度ABA。结果表明,不同浓度ABA均未能显著提高果实的大小和平均果重,但提高了果实可溶性固形物含量、可溶性糖及糖酸比,其中可溶性糖及糖酸比与对照达显著差异水平;果实第二次膨大期(花后65 d)喷施25 mg/L ABA还显著提高了果皮花色苷含量、花色苷/叶绿素、色度角(h)及a/b值。综合比较,喷施25 mg/L的ABA对果实品质提高具有较好效果。     

外源ABA对棉花幼苗抗寒性的影响初探

[目的]研究脱落酸(ABA)在低温(5℃)条件下对棉花幼苗电导百分率、MDA含量、SOD活性的影响.[方法]以中棉所15号为材料,分别进行5℃低温处理0、2、4、6、12、24、48和72 h和ABA浓度0、10-8、10-7、10-6和10-5mol/L交叉处理,并做二因素方差分析和Duncan多重比较.[结论]低温时间和ABA浓度均极显著影响电导率、MDA含量、SOD活性,且低温时间和ABA浓度之间无相互作用; 5℃低温及ABA 10-7 mol/L条件下处理4 h,能极显著降低棉花幼苗电导百分率和MDA含量,提高SOD活性.在低温5℃、4 h、ABA 10-7 mol/L处理下比较中棉所15号、中棉所35号、新陆早8号三种棉花品种的抗寒性.[结论]抗寒能力大小为:中棉所15号>中棉所35号>新陆早8号.     

低温胁迫对蝴蝶兰内源激素的影响

以3个抗寒性不同的蝴蝶兰品种为试材,研究了不同低温条件下蝴蝶兰叶片内ABA、IAA与GA 3种内源激素等的变化规律,分析了蝴蝶兰抗冷的生理生化机理。研究结果表明:(1)低温胁迫条件下,随着温度的降低,叶片内部内源激素的变化越来越显著。C(昼23℃/夜18℃)处理温度下,内源激素变化较为平缓,而A(昼11℃/夜6℃)处理的变化则较为剧烈。3种内源激素的含量随着温度降低有显著增加的趋势。(2)随着处理时间的延长,各品种叶片内ABA、IAA与GA含量的高低均呈现先升高后降低的趋势。(3)低温胁迫条件下,抗冷性强的品种‘彩云’体内的ABA大量合成的启动时间早于另外两个品种,对低温处理的响应迅速,而IAA与GA则没有较大差异,对低温响应较为迟缓,在低温胁迫一段时间后才表现出显著增加的趋势。     

不同浓度乙烯利对铁皮石斛抗寒性的影响

用浓度为10、25、50、100 mg/L的乙烯利处理铁皮石斛,于4℃低温处理2 d后,观察铁皮石斛叶片的形态变化,并测定叶片的相对电导率。结果表明,随着乙烯利浓度的升高,铁皮石斛的黄叶数量越来越多,且增速加快,但未表现出明显的冷害症状。低温处理后,叶片的相对电导率升高,说明4℃低温处理对铁皮石斛产生了伤害。与对照相比,喷施乙烯利的铁皮石斛低温处理后的叶片相对电导率增加值较低,说明铁皮石斛叶片细胞膜受伤程度轻,抗寒性提高,且以50 mg/L乙烯利处理的铁皮石斛的抗寒性最高。     

蝴蝶兰叶片对低温胁迫的生理响应

以3个蝴蝶兰品种(系)(耐冷品种婚宴,不耐冷品种聚宝,中等耐冷性新品系ZD-1)为试验材料,经预处理后,测定各材料在低温(10℃、5℃和0℃)下处理12、24和48 h后叶片相对电导率、叶片中可溶性糖和丙二醛(MDA)含量以及过氧化氢酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)与抗坏血酸过氧化物酶(APX)的活性.结果表明:随着胁迫程度的加深,蝴蝶兰叶片的相对电导率和MDA含量逐渐增加,可作为蝴蝶兰耐冷性的鉴定指标;可溶性糖含量的变化无明显规律;CAT和SOD酶活性随着胁迫程度的加深先增大后减小;APX活性则呈持续增加趋势,也可作为蝴蝶兰耐冷性的鉴定指标;耐冷性品种婚宴在一定程度低温胁迫条件下能通过自身酶系统的保护,减少活性氧对其的伤害,而不耐冷品种聚宝的自身酶系统的保护能力较差.     

叶面喷施水杨酸对红掌植株抗寒性的影响

将红掌植株经0,100,200,300,400和500 mg·L-1水杨酸(salicylic acid, SA)常温25℃ 预处理1 d后再经6 ℃低温胁迫2 d后测定其相对电导率, 结果表明,当SA浓度为300 mg·L-1时 ,相对电导率比对照下降了20.38% , 抗寒效果显著。 测定此浓度下SA对红掌叶片相对电导率、丙二醛(MDA)含量、脯氨酸(Pro)含量、过氧化氢酶(CAT)、过氧化物酶(POD)和超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响,结果表明,SA处理可降低红掌叶片在低温胁迫下的相对电导率和MDA含量,增强Pro的累积量,提高SOD和CAT的活性,增加POD活性的稳定性,表明SA处理可以提高红掌叶片的抗氧化酶活性和脯氨酸含量,降低膜脂过氧化反应,减少细胞膜的伤害程度,从而提高红掌植株的抗寒性。     

后期喷施BA和ABA对水稻灌浆生理的影响

水稻后期叶面喷施ＢＡ能改善水稻后期叶片衰老进程，促进水稻弱势粒代谢，改善弱势粒灌浆充实，降低水稻空秕率；适宜浓度外源ＡＢＡ也能够促进水稻籽粒灌浆充实，减少空秕率。     

蝴蝶兰栽培管理初探

蝴蝶兰是我国主要的盆栽花卉,因其花色丰富花形奇特而深受人们喜爱,其不仅用于室内装潢、办公室布置。同时也是插花中不可缺少的主要花材。对蝴蝶兰的形态特征、生活习性、繁殖方法、养护管理、应用这几个方面进行论述。     

蝴蝶兰类原球茎的诱导

以蝴蝶兰优良杂交组合NoⅡ(♀)×No2(♂)和优良品种EA2003无菌苗的叶片为试材,对影响类原球茎(PLB)的发生、增殖等因子进行系统研究。结果表明:1/4MS+6-BA10 mg·L-1+椰子汁100 g·L-1是蝴蝶兰PLB诱导最适宜的培养基;100 g·L-1椰子汁对PLB诱导有明显的促进作用;适宜PLB增殖的培养基是1/4MS+2,4-D1.0 mg·L-1+6-BA2.0 mg·L-1;活性炭可以有效防止NoⅡ(♀)×No2(♂)叶片的褐化死亡,但活性炭对蝴蝶兰优良品种EA2003 PLB的诱导有阻碍作用;叶片基部PLB的发生优于叶片的其他部位。     

蝴蝶兰原球茎组织学研究

采用常规方法对蝴蝶兰原球茎结构进行了解剖研究。结果表明：蝴蝶兰原球茎表面存在透明的根状纤毛。中间有分生区。顶端有生长点,在原球茎上部有气孔。在原球茎外层组织中存在成簇的“棒状结构”．是兰花原球茎所特有的。在部分原球茎细胞中存在真菌的菌丝,是与兰花共生的真菌。     

蝴蝶兰杂交育种技术

介绍了蝴蝶兰杂交育种中常用的亲本、授粉方法、果实采后无菌处理及种胚培养、生根苗移栽等技术。     

蝴蝶兰的育种现状研究

介绍了蝴蝶兰生物学性状,育种常用亲本及优良新品种,综述了常规杂交育种、组织培养、诱变育种和基因工程等蝴蝶兰育种的常用方法,并提出了存在的问题与建议,为促进我国蝴蝶兰产业的发展提供参考。     

脱落酸预处理对蝴蝶兰类原球茎及其脱水耐性的效应

[目的]了解脱落酸(ABA)溶液预处理对蝴蝶兰类原球茎(PLB)的影响及对其耐脱水性的效应。[方法]观测H2O浸泡PLB对其耐脱水性的效应,H2O、ABA溶液预处理对PLB的影响,以及ABA溶液预处理PLB的耐脱水性。[结果]浸水PLB的含水率和成活率较新鲜PLB明显提高。H2O或ABA溶液浸泡1 h后的PLB重量(浸泡重)差异不显著,H2O或ABA溶液浸泡不能明显改变PLB干物质重量、相对电导率和成活率。较H2O浸泡,80μmol/L ABA溶液预处理使PLB脱水处理后的脱水重/鲜重提高24.8%,成活率提高51.5%。[结论]ABA溶液短时间预处理蝴蝶兰PLB并不能改变其重量和造成损伤。ABA预处理能稍提高脱水处理后PLB含水率,可能只是脱水耐性提高的原因之一。     

温度对蝴蝶兰成花诱导的影响

【目的】探讨适宜蝴蝶兰抽梗的温度,为生产管理提供依据,也为难催花品种及低温替代提供参考。【方法】以‘火凤凰’蝴蝶兰袋苗为材料,在人工气候箱条件下,采用单因素随机区组试验设计方法,设置 5个温度处理,分别为 29/22、26/19、23/16、20/13、17/10 ℃（日 / 夜）,每个处理温差均为 7 ℃,昼夜光周期10 h/14 h,相对湿度 75%。【结果】26/19 ℃处理后蝴蝶兰抽梗时间最早,处理后 30 d 抽梗,抽梗率为 100%,抽梗指数为 14.86;23/16 ℃处理后 36 d 抽梗,抽梗率达 100%,抽梗指数为 2.41;20/13 ℃处理后 40 d 抽梗,抽梗率为 95%,抽梗指数为 1.13。20~26 ℃处理抽梗前可溶性糖、可溶性蛋白质、丙二醛含量显著上升,抽梗后显著下降。抽梗前超氧化物歧化酶活性上升。【结论】蝴蝶兰最适抽梗温度为 26/19 ℃;29/22 ℃处理未抽出花序轴,表明高温条件下蝴蝶兰不能诱导开花;17/10 ℃处理引起低温伤害,培育一段时间后转移到较高温度可以抽出花梗,但花梗质量偏差。     

蝴蝶兰组织培养快速繁殖技术研究

[目的]对蝴蝶兰的组织培养快速繁殖技术进行研究,为蝴蝶兰的批量生产提供参考。[方法]以蝴蝶兰嫩叶、茎尖、花梗侧芽为外植体,进行蝴蝶兰原球茎诱导、增殖及试管苗生根的组织培养。[结果]结果表明,MS＋2．0mg／L6-BA＋1．0ng／LNAA＋200ml／L椰乳是诱导蝴蝶兰原球茎形成的最佳培养基,茎尖诱导率迭缸．37％;MS＋1．0mg／LNAA＋2．0mg／L6-BA是蝴蝶兰原球茎增殖的最佳培养基,增殖系数达9．62;1／2MS是蝴蝶兰生根培养的最佳培养基,生根率达94．42％,且根生长最快最整齐。[结论]在生产上,可采用试管苗生根继代培养的方法进行蝴蝶兰的快速繁殖。     

蝴蝶兰组织培养技术研究进展

蝴蝶兰是一种极具观赏和经济价值的花卉植物,具有广阔的市场前景。从外植体的选择、常用的3种培养方式（原球茎的诱导和增殖、丛生芽的诱导、无菌播种）等方面综合阐述了蝴蝶兰组织培养技术的研究进展,并对我国未来蝴蝶兰组培快繁技术的研究与开发前景进行了展望。     

蝴蝶兰快速繁殖关键技术研究

以蝴蝶兰嫩叶、茎尖、花梗侧芽、花梗节间为外植体,进行原球茎诱导,探求蝴蝶兰组织培养的最适外植体;通过不同培养基及各种激素配比组合进行原球茎诱导、增值及试管苗生根试验,探索各阶段最优培养基配方。结果表明：茎尖和花梗腋芽是蝴蝶兰形成原球茎的较佳外植体;MS＋0.5 mg/L NAA＋1.0 mg/L 6-BA＋100ml/L椰乳是蝴蝶兰原球茎增殖的最佳培养基,增殖系数达8.98;1/2 MS培养基最利于侧芽萌发形成丛生芽;生根最适培养基为1/2MS＋1.0mg/LIBA＋0.5 mg/LNAA。