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为探索建立紫椴组织培养快速繁育体系,以紫椴种子为材料,探讨基本培养基、植物生长调节剂浓度及配比对紫椴组培快繁效果的影响。结果表明,增殖培养基以1/2MS培养基最适宜,添加0.05 mg/L 6-BA和0.03 mg/L IBA后,增殖系数可达13.5;MS培养基最适宜做壮苗培养基和生根培养基,最佳壮苗培养基为MS+0.1 mg/L6-BA+0.1 mg/L IBA+0.03 mg/LGA3,平均苗高达5.15 cm;最佳生根培养基为MS+1.0 mg/L6-BA+0.05 mg/L NAA,生根率达93.3%,生根数达5.7根。 相似文献
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红果冬青具有较高的药用价值,但传统育苗方式效率低,采用组织培养方法可快速繁殖红果冬青。对红果冬青茎段进行组织培养试验,结果表明:红果冬青最佳灭菌方法为0.1%升汞灭菌8min;最佳启动培养基为MS+BA1.4mg·L-1+NAA0.2mg·L-1,萌芽率可达82.5%;继代培养基1/2MS+BA1.4mg·L-1+NAA0.2mg·L-1+KT0.2mg·L-1,增殖系数达4.1;生根培养基1/2MS+NAA0.2mg·L-1+IAA0.2mg·L-1,生根率达90%。 相似文献
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火龙果组培增殖快繁技术研究 总被引:1,自引:1,他引:0
为了建立火龙果的组培快繁体系,以火龙果的茎段为外植体,消毒后接种到含有不同浓度的6-BA和IAA的MS培养基上,从中筛选出增殖系数最高的培养基配方;将增殖出的火龙果芽接种到含有不同浓度的6-BA和IAA的MS培养基上,从中筛选出最好的伸长培养基配方;将生长到4cm的火龙果幼苗接种到含有不同生长素的生根培养基上,从中筛选出生根效果最好的培养基配方。试验结果显示,最好的增殖培养基配方是:MS+6-BA3.0mg·L-1+IAA0.5mg·L-1;最好的伸长培养基配方是:MS+6-BA1.0mg·L-1+IAA1.0mg·L-1;最好的生根培养基是:1/2MS+IAA1.0mg·L-1。 相似文献
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玉簪的组培快繁技术研究 总被引:6,自引:0,他引:6
以玉簪新品种INN的无菌苗基部组织为组培材料,进行组织快繁试验。结果表明,在玉簪诱导阶段以培养基Ms+0.5mg/LNAA+0.1mg/L6-BA效果最好;芽的分化增殖以培养基Ms+0,1mg/L6-BA(液)最佳;生根阶段的适宜培养基为MS+0.5mg/LIBA(液)和MS+50mg/LSAL。 相似文献
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应用组织培养快繁技术,对北海道黄杨培养基、培养条件和移栽过程进行系统的研究,可以提高繁殖速度和移栽成活率,降低成本,建立一套快速、经济的快繁技术体系。 相似文献
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以腋芽为外植体,建立莫氏兰的组织培养和再生体系。结果表明:腋芽采用0.1%升汞消毒2次的效果最好;6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.4 mg/L的激素配比适合原球茎诱导;原球茎增殖培养基的最佳6-BA、NAA浓度分别是1.0、0.1 mg/L;不定芽诱导培养基的最适6-BA、NAA浓度分别是0.5、0.05 mg/L;在生根培养基VW(含NAA 0.5 mg/L,香蕉40 g/L,土豆30 g/L,糖20 g/L,卡拉胶8.0 g/L,活性炭1.5 g/L)上幼苗生根率达到100%;移栽成活率达95%。 相似文献
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百合的组织培养及快繁技术 总被引:24,自引:0,他引:24
将一些百合的组织培养文献结合我们的实际工作经验加以综述,以使百合组织培养快繁技术迅速得以推广,从而解决百合种苗退化、带病毒多的现象,提高其繁殖系数。 相似文献
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细叶野牡丹(Melastoma intermedium Dunn)是我国特有的野生花卉,自然界种群数量少、种子繁殖效率低。组织培养方法是其开发利用的有效技术手段。在MS培养基上,细叶野牡丹的茎段腋芽可以直接诱导萌发,其中MS+6-BA1.0 mg.L-1+NAA0.5 mg.L-1的诱导率达到80%。经过MS+6-BA0.5 mg.L-1+NAA0.05 mg.L-1和MS+6-BA0.5 mg.L-1+NAA0.1 mg.L-1继代培养,83%直接在接种芽的基部形成丛生芽,平均每月芽增殖倍数可达3.6。在生根培养1个月后,生根率达100%,其中1/2MS+NAA0.1 mg.L-1根系生长状态最好。幼苗移栽到灭菌的栽培基质V(草炭):V(珍珠岩):V(腐叶土)=1:1:1中,成活率为87%。 相似文献
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蝴蝶兰组培快繁技术研究 总被引:6,自引:1,他引:6
通过组织培养的方法诱导蝴蝶兰花梗上的腋芽萌发,可以得到无菌的蝴蝶兰不定芽。以不定芽上的幼叶为外植体,建立蝴蝶兰的无菌培养体系。结果表明:诱导腋芽萌发的培养基为MS+5 mg/L 6-BA;利用幼叶进行原球茎诱导的最佳培养基为MS+5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+0.1 g/L活性炭(AC)+150 mL/L椰汁(CM);原球茎增殖的培养基为3 g/L花宝一号(HyponexNo.1)+5 mg/L 6-BA+1 mg/L NAA+150 mL/L CM;生根培养基为3 g/L Hyponex No.1+0.1 mg/L6-BA+1 mg/L NAA+0.5 g/L AC+100 mL/L土豆汁。 相似文献
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