西花蓟马对安祖花组培苗及其移栽苗危害的初步研究

以安祖花品种沙瑞德组培苗为试材,研究了西花蓟马对安祖花组培苗的危害。结果表明:西花蓟马可侵入培养瓶中,吸食组培苗茎尖与叶片,严重抑制组培苗生长,并传播病菌引起二次污染。     

长寿花叶片的组织培养与快速繁殖研究

选用长寿花叶片作为外植体,在附加有不同激素(细胞分裂素6-BA和生长素NAA)的MS培养基上进行培养,研究激素对长寿花叶片愈伤组织和不定芽增殖的影响.结果表明:不同浓度和种类的激素对长寿花愈伤组织及不定芽增殖的影响不同,最适宜的培养基为:MS 6-BA 2 mg/L NAA 0.3 mg/L.     

以叶片为外植体的多花黄精组织培养

以叶片为外植体建立多花黄精组织培养快速繁殖技术体系,通过添加不同浓度6-BA、NAA、2,4-D和蔗糖的MS培养基中培养,筛选愈伤组织诱导、愈伤组织增殖、丛生芽诱导、丛生芽生根诱导的最佳培养基。结果表明:愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+6-BA3.0mg·L~(-1)+NAA 4.0 mg·L~(-1)+蔗糖20g·L~(-1),愈伤组织诱导率最高为53.89%,生长情况最好;愈伤组织增殖培养的最佳培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L~(-1)+NAA3.0mg·L~(-1)+蔗糖20g·L~(-1),增殖倍数7.87,生长情况相对最好;丛生芽诱导培养的最佳培养基为MS+6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 4.0mg·L~(-1),出芽率最高为86.11%,生长情况最好,芽高最大为1.70cm;丛生芽生根诱导的最佳培养基为MS+NAA 1.0mg·L~(-1),生根率最高为66.67%,根数、根长和根粗最好,分别为31.0条、0.46cm和1.100mm。以叶片为外殖体可短时间获得大量多花黄精组培苗,解决种植生产上的种苗短缺问题。     

红龙草叶片的组织培养及其植株再生

 建立了红龙草叶片再生体系。叶片外植体在培养基MS + 6-BA 1.0 mg/L + 4-PU 1.0 mg/L +NAA 0.1 mg/L上形成浅绿色愈伤组织, 20 d后愈伤组织诱导率达100%。约45.31%的愈伤组织在添加6-BA 1.0 mg/L和NAA 0.4 mg/L的MS培养基上分化出紫红色的不定芽, 约6%的愈伤组织在该培养基上产生出细小叶片和绿色变异幼芽。所产生的紫红色不定芽在1/2MS +NAA 0.4 mg/L的培养基上可全部生根,长成完整植株。再生植株的移栽成活率达85%以上。     

安祖花的病虫与防治

本文主要介绍了安祖花的生物学特性及病虫害防治,以供大家参考。     

正交试验法优化红掌‘阿拉巴马’叶片的组织培养体系

以红掌品种阿拉巴马的叶片为材料,采用正交试验,通过极差分析和方差分析,对红掌愈伤组织诱导和不定芽分化条件的培养基种类、激素种类和浓度、活性炭(Activated carbon,AC)浓度进行优化,以探索阿拉巴马的叶片组培快繁的最适体系。结果显示,培养基种类、6-BA、2,4-D对叶片愈伤组织的形成产生显著作用,影响程度依次为培养基种类>6-BA>2,4-D,愈伤组织诱导最适的培养基组合为1/2MS+2.0mg/L IBA+0.6mg/L 2,4-D,愈伤组织诱导率为88%;6-BA、IBA、AC对不定芽分化诱导产生显著作用影响程度依次为IBA>6-BA>AC,不定芽分化最适的培养基组合为MS+1.5mg/L 6-BA+0.6mg/L IBA+1g/L AC,不定芽分化诱导率为91%。研究结果对红掌‘阿拉巴马’叶片的组织培养体系进行了优化,为实现红掌的标准化组培快繁提供试验依据。     

安祖花细菌性疫病的Nested-PCR检测

根据基因库中已发表的安祖花细菌性疫病致病菌粉黛黄单胞杆菌（Xanthomonas campestris pv.dieffenbachiae）基因序列设计引物XcF1/XcR1、XcF2/XcR2,通过扩增条件优化,建立了安祖花细菌性疫病的Nested-PCR检测方法,可以直接从感染细菌性疫病的安祖花组织DNA中扩增出1...     

非洲茉莉组织培养技术研究

以非洲茉莉的茎段和叶片进行外植体诱导试验表明,茎段外植体诱导不定芽效果较好,诱导率达53.3%;试验条件下,适宜外植体诱导的培养基是MS+TDZ 1.0 mg/L,适宜丛生芽增殖的培养基是MS+6BA 2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L,适宜生根的培养基是1/2 MS+NAA 0.25 mg/L+IBA0.25 mg/L;试管苗移栽到体积比为1∶1∶2的草炭、蛭石、园土基质中,成活率达90%以上。     

秋子梨叶片植株再生研究

以秋子梨的春梢茎段和无菌叶片为试材,探讨不同激素配方对叶片再生的影响。结果表明,适宜诱导外植体不定芽的初代培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA2.0mg/L+IBA0.5mg/L+GA30.6mg/L;增殖培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA1.0mg/L+IAA0.6mg/L+GA30.6mg/L;诱导叶片产生愈伤组织培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA6.0mg/L+NAA1.5mg/L+TDZ1.0mg/L,诱导不定梢培养基为MS培养基+蔗糖30g/L+琼脂6g/L+6-BA5.0mg/L+NAA1.5mg/L+TDZ1.5mg/L;生根培养基为1/2MS培养基+IBA1.0mg/L。