人参愈伤诱导及其次生代谢产物的影响因素研究进展

人参是中国传统名贵中药,具有良好的药用和食用价值。从诱导人参愈伤组织的不同外植体、植物生长调节剂和培养条件等方面,综述了人参愈伤组织诱导的研究进展,并总结了组织培养条件,如糖类、无机盐、CO₂、植物生长调节剂及各种诱导剂对人参次生代谢产物(主要为人参皂苷)的影响,归纳促进人参次生代谢产物积累的因素,以期为组织培养提高人参的质量和人参皂苷的产量提供参考方法和理论依据。     

土人参的营养价值及加工利用现状

土人参是一种营养丰富、药用价值较高的蔬菜,在我国分布广泛。目前土人参的研究主要集中在成分提取、栽培技术及组织培养等方面,但对其作为食品产品加工方面的研究较少,尤其是对根部的加工利用几乎没有。而土人参根部的淀粉和糖含量较高,可用于制作发酵酒,从而提高其根茎利用率,另一方面也可以满足广大消费者对营养型低度酒的需求,具有良好的发展空间和价值。该文主要介绍了土人参的营养价值及功能,分析了其加工利用现状。     

蔬菜新秀—土人参的潜在价值研究

土人参是一种集食用、药用、观赏为一体的新型保健蔬菜,它以营养价值高、保健功能强、风味独特而被美食家认为“土人参补胜似人参”。近年来的研究多集中在土人参的生物学特性、利用价值、栽培技术以及组织培养等方面,但在营养学、药理学、育种学及加工利用方面等方面的研究较少,甚至还存在空白。当务之急是必须尽快加强对土人参进行科学研究,并借助于现代生物学技术对其进行遗传改良。笔者介绍了一种新的遗传改良方法即离子束生物技术。     

月季组织培养研究进展

介绍了月季组织培养的研究概况,阐述了影响月季组织培养的主要因素,其中对外植体的选择及灭菌、启动培养和继代增殖以及生根培养中的培养基及激素的选择、组培苗移栽等相关研究进行综述,并讨论了月季组织培养中存在的问题。     

西洋参组织培养研究近况及其技术相关问题的探讨

通过查阅、归纳、总结国内外西洋参组培相关文献及报道看出,当前西洋参组织培养主要以愈伤组织诱导、体细胞悬浮培养、冠瘿组织培养及毛状根培养方式获得次生代谢物研究为主,大规模生物发生器培养研究不足,西洋参快繁及育种研究进展缓慢,亟需组培方法的进步和技术提升.今后需加大西洋参组织培养研究,突破组培芽诱导生根的瓶颈,推动西洋参的...     

马铃薯组织培养技术研究进展

马铃薯组织培养技术被广泛应用在马铃薯育种、脱毒快繁等应用研究方面,以及细胞、组织的代谢生理及生化方面的基础理论研究上,具有十分重要的意义。文章对马铃薯组织培养中外植体材料的选择及预处理、愈伤组织的诱导和继代培养、再生植株的诱导三个方面进行了归纳和总结。     

东北刺人参愈伤组织诱导和继代的研究

[目的]研究东北刺人参愈伤组织的诱导和继代方法。[方法]以取自长白山的刺人参植株为材料,研究不同外植体、培养基、激素对刺人参愈伤组织诱导的影响。[结果]叶片为刺人参组织培养的最适宜外植体;5月为外植体的最佳取材时期;以MS为基本培养基,并添加1.0 mg/L 2,4-D和1.0 mg/L 6-BA的培养基中愈伤组织诱导率最高;最佳继代培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2mg/L。[结论]东北刺人参的最适愈伤诱导培养基和继代培养基分别是:MS+2,4-D 1.0 mg/L+6-BA 1.0 mg/L和MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L。     

彩色马蹄莲组织培养影响因素分析

就近年来国内彩色马蹄莲组织培养的研究进展作了简要综述,着重介绍目前在彩色马蹄莲组织培养过程中外植体的选择及灭菌、组织培养过程中各培养阶段的培养基及激素的选择、微型种球的诱导以及组培苗移栽等方面的研究进展,阐述了目前彩色马蹄莲组织培养存在的问题,为其今后工厂化生产提供借鉴和帮助。     

高丽人参快繁条件的优化

[目的]优化高丽人参的快繁条件。[方法]应用组织培养方法,以高丽人参无菌苗幼嫩的叶片为试材,通过研究不同植物生长调节物质及其组合对高丽人参不同组织的诱导,优化人参的快繁条件。[结果]结果表明,诱导愈伤组织最佳的培养基为MS＋KT0.5mg/L＋NAA 0.2mg/L;诱导丛生芽最理想的培养基为MS＋NAA 0.1mg/L＋6-BA 2.0mg／L;最佳诱导不定芽生根的培养基为1／2MS＋KT0.1mg／L＋6-BA 0.1mg／L＋IAA 0.3mg／L＋活性炭3.0g／L。[结论]该研究为更有效的开发利用人参提供参考依据。     

水飞蓟组织培养的研究进展

对水飞蓟组织培养中外植体来源、愈伤组织诱导、再生植株诱导、毛状根诱导以及组织培养物中活性成分等方面进行了综述,以期为解决水飞蓟的资源需求以及以组织培养为基础的基因与代谢工程研究提供理论及技术指导。     

红芽大戟组织培养研究进展

[目的]论述红芽大戟组织培养的研究现状。[方法]从外植体的选择及消毒、培养基及激素选择、组培苗生根及移栽等方面进行论述,并探讨了红芽大戟组织培养研究中存在的问题以及未来的研究和发展方向。[结果]芽或茎尖是红芽大戟组织培养合适的外植体;不同植物种类或不同品种对激素的要求不同,目前所采用的培养基主要为MS、B5、Miller培养基,不同诱导阶段所采用的培养基的种类和浓度也不尽相同;组培苗移栽主要注意基质、移栽温度和湿度、移栽季节及水肥等方面。组织培养快繁技术研究仍处在初步研究阶段,技术尚未成熟,今后应该加强研究的关键问题主要有解决外植体污染难题,提高外植体诱导成功率;提高芽苗生根率及组培苗移栽成活率等。[结论]该研究为人工栽培红芽大戟提供有价值的参考。     

香椿离体再生技术研究进展

香椿是中国药食同源传统木本蔬菜,食用、药用和材用价值兼备。香椿离体再生技术多局限于芽微繁途径,基于愈伤组织诱导分化的组织培养再生技术尚未建立。本文从外植体选择、基本培养基类型和植物生长调节剂组合等方面总结香椿微繁技术和组织培养技术的研究进展及存在问题,并对未来香椿组织培养研究进行了展望。     

濒危植物南川木菠萝组织培养技术研究

南川木菠萝是我国最为珍稀的特有极危物种之一,开展其组织培养研究具有十分重要的意义。从外植体选择到幼苗移栽,对南川木菠萝组织培养各相关环节进行了研究。首次建立起了南川木菠萝的组织培养体系。结果表明:南川木菠萝组织培养适宜的外植体为带芽茎段,并探明了获得无菌外植体的方法;南川木菠萝愈伤培养的优选培养基为WPM+2.0 mg/L 2,4-D+0.2(或0.3)mg/L 6-BA+3 g/L PVP,芽诱导优选培养基为WPM+3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+3 g/L PVP,生根优选培养基为WPM+1.5 mg/L IBA+0.1 mg/L NAA+3 g/L PVP;适宜的组培苗炼苗时长为6~9 d,使用灭菌营养土较好,移栽存活率可达90%以上。     

垂枝樱花外植体灭菌及不定芽的诱导研究

[目的]探讨垂枝樱花外植体灭菌及不定芽诱导的相关技术.[方法]以垂枝樱花当年生带腋芽茎段为外植体,对其组织培养繁殖技术中外植体选择、灭菌方法与程序、不定芽的诱导等环节进行了初步研究.[结果]适宜外植体采集时间为晴天中午,采集部位为当年生枝条的中上部,适宜的表面灭菌程序为：洗衣粉中浸泡15 min,流水冲洗lh,70％乙醇浸泡30 s,0.1％ HgCl2浸泡10 min,最后无菌水冲洗5遍,成活率达68.3％.适宜垂枝樱花不定芽诱导的培养基为1/2MS ＋6-BA 0.5 mg/L＋ NAA 0.10 mg/L,分化率达68.3％.[结论]为垂枝樱花的组织培养提供相关技术支持.     

人参皂苷生物合成的研究进展

人参皂苷是药用植物人参的主要生物活性成分,其具有抗疲劳、提高免疫力等滋补效果,已得到十分广泛的应用;由于人参栽培的困难和人参细胞、组织培养的低生产效率,利用代谢工程手段来提高人参皂苷生物合成能力成为近年来人参研究的热点之一。因此,文中综述了人参皂苷生物合成方面国内外的最新进展,为人参皂苷的进一步研究奠定基础。     

金钱树组织培养研究进展

金钱树是国际上新发掘的一种热带观叶佳品,近年来的生产发展很快,国内有关金钱树的研究也逐渐增多,但主要集中在快繁技术上.对国内金钱树组织培养的研究概况进行了综合评述,详细介绍了影响金钱树组织培养的主要因素,包括外植体的选择及消毒,愈伤组织诱导、分化中的基本培养基和激素种类、浓度的选择,生根培养以及组培苗移栽,并讨论了金钱树组培中的存在问题以及发展前景.     

国兰无菌快繁体系的研究进展

综述了国兰组织培养及快繁技术,包括不同时间段的植物生长调节剂的选择,以及诱导、增殖、生根过程中培养基的筛选。     

蕨类植物组织培养研究进展

简要介绍国内外蕨类植物组织培养研究概况,综述培养基成分、培养方式及培养条件对蕨类植物组织培养过程中生长发育的影响,同时介绍蕨类植物组织培养中世代转换的诱导及调控。     

酸浆属植物组织培养的研究进展

酸浆属植物具有较高的营养价值、药用价值和经济价值,组织培养技术可以保存其优良性状并提高繁殖效率,从而成为酸浆属植物快速繁殖的一条重要途径。本研究从酸浆属植物组织培养中外植体选择、培养环境、植物生长调节剂、组织培养等方面进行了综述,总结了酸浆属植物组织培养技术的相关成果,并提出目前存在的问题及展望。     

燕麦组织培养体系的建立与优化

燕麦(Avena sativa)组织培养体系的建立是通过遗传转化手段对燕麦进行品质改良的基本环节之一,以白燕10号裸燕麦为材料,对该品种燕麦组织培养中外植体的选择、组织培养各阶段所用激素及浓度进行了筛选研究。结果表明,成熟胚是较理想的外植体;诱导愈伤的培养基为MS培养基+0.5 mg/L2,4-D+0.1 mg/L NAA;诱导分化的培养基为MS培养基+1.5 mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA+0.4 mg/L IAA。