水貂病毒性肠炎细小病毒无血清细胞培养灭活矿油疫苗的安全性试验

水貂病毒性肠炎细小病毒(MEV)无血清细胞培养灭活矿油疫苗大剂量按种小鼠、豚鼠、家兔、貉子、军警犬、猫、水貂,经14天至3年多时间的观测,无任何不良反应,注射局部吸收良好:水貂不排毒,生产和繁育性能正常。本疫苗消除了水貂病毒性肠炎同源脏器灭活铝胶疫苗中极易潜在水中阿留申病毒和传染性水貂脑病类病毒的危险,而接种动物后不发生“再次注射血清病”。疫苗在2～8℃保仔15～17个月,其物理性状和安全性仍保持不变,安全系致高达100%(1770只/1770只).矿物油用作细小病毒疫苗佐剂首次取得成功,这就为多种细小病毒疫苗的研制和批量生产找到了一种理想、经济的新佐剂。     

水貂病毒性肠炎细胞培养灭活苗的研制

<正> 目前用于预防水貂病毒性肠炎的疫苗有脏器组织灭活苗和细胞培养灭活苗两种,前者因有传播阿留申病的危险已基本淘汰。细胞培养灭活苗安全、可靠,国内已有不少地区应用,但其生产的技术环节未作报道。为了进行生产技术开发,我们对生产水貂病毒性肠炎细胞培养灭活疫苗的各个技术环节作了研究。现报告如下。     

水貂病毒性肠炎细胞培养灭活疫苗及其免疫研究(摘要)

本试验从敏感细胞系、接毒量、接毒时机、换液时机、收毒时机、营养液成分及血清含量等方面进行优选,确定了水貂病毒性肠炎的病原——水貂细小病毒(MPV)的最适培养条件:敏感细胞系为猫肾细胞系F81株,MPV接种量为10~(-2),同步接毒,培养1d后换液,至残存细胞数仅有5％左右时收毒,并证明维持液中无血清不影响病毒的增殖。采用敏感性不同的细胞系交替培育的方法,从6株MPV(HA 2~×～64~×)中筛选     

水貂细小病毒性肠炎灭活疫苗保存期试验

对2~8℃条件下保存90,120,150,180,210,240,300,360 d的水貂细小病毒性肠炎灭活疫苗接种水貂进行免疫试验,结果表明:保存300 d的疫苗接种水貂30 d后血清中水貂肠炎细小病毒(MEV)HI抗体均在1∶32以上,免疫水貂强毒攻击均获得100%保护,确定水貂细小病毒细胞灭活疫苗保存期为300 d。该结果为水貂细小病毒细胞灭活疫苗运输和保存提供了理论依据。     

水貂细小病毒性肠炎弱毒疫苗的研究

用猫泛白细胞减少症病毒(FPV)弱毒作为制苗毒种,经CRFK细胞培养15代,使其滴度稳定在10~(5.0)～10~(5.0)TCID_(50)/0.03mL之间.经4代猫体返祖试验证明,该弱毒无返祖现象.10倍免疫剂量的水貂安全试验证明,该弱毒毒力稳定,对水貂无感染性.用FPV弱毒4～15代病毒研制成功的水貂肠炎弱毒疫苗,各项试验证明,该苗安全可靠,免疫剂量为10~(3.0)×1mL,免疫效果好,保护率在95%以上,免疫期6个月以上.     

水貂病毒性肠炎无血清细胞培养灭活疫苗的临床免疫力观测研究

本研究证明,5周龄以上的无MEV健康貂、MEV隐性感染貂、MVE症状典型貂均可按种水貂病毒性肠炎无血清细胞培养灭活疫苗,适宜免疫程序为皮下或肌肉注射1ml。7万多只份MEV矿油苗和700多万只份MEV铝胶苗接种野外水貂、貉子和狐狸的临床免疫预防和紧急控制效力观测结果表明,两种佐剂MEV疫苗的免疫效力等同,不同效价(HA64~x—8192~x或TCID_(50)Log~(7.6～9.7))MEV疫苗的免疫产生期为3～10天,免疫期不低于6～12个月,2～8℃保存期不低于9个月,免疫保护率达100％。效价为HA64~x或TCID_(50)Log_(10)~(7.6)的MEV疫苗接种水貂后20～40天的血清HI抗体效价均值约为32~x,达此标准疫苗的免疫产生期为7～10天,免疫期为12个月,保存期为9个月,保护率为100％。     

水貂细小病毒性肠炎的诊治

<正>水貂细小病毒性肠炎又称传染性肠炎,是由细小病毒引起,临床上以出血性肠炎和非化脓性心肌炎为特征。2014年11月份以来,该病在文登区时有发生,而且均是免疫过的水貂发病。经过综合治疗,取得了良好的效果。1病原及流行水貂细小病毒属细小病毒科细小病毒属RNA病毒,病毒颗粒直径约20um,呈20面体对称。该病各年龄均可感染,但主要感染幼水貂。未免疫接种水貂最     

水貂细小病毒性肠炎的诊治

<正>水貂肠炎是危害养貂业的主要传染病,临床特征主要为呕吐和腹泻。病理变化为胃肠黏膜炎症和白细胞高度减少。急性传染,高发病率,高死亡率。1病原水貂肠炎病毒为细小病毒。2流行病学患貂是直接传染源,通过直接接触传染,或通过食具、笼子、工具等间接接触传染,各个年龄段的貂均易感,幼貂更容易感染。6~10月份多见发病,幼貂发病率60%,死亡率90%,随着天气转冷,发病率逐渐降低,冬     

水貂病毒性肠炎脏器灭活苗的研究

水貂病毒性肠炎,目前已成为我国水貉三大疫病之首,每年为了预防和紧急接种需要大量水貂病毒性肠炎脏器灭活苗。但如何保证疫苗的质量,保证其安全有效,是现在急需解决的问题。例如水貂病毒性肠炎脏器灭活苗的最小免疫量、免疫产生期、免疫期、疫苗的检验标准及疫苗的保存条件等均没有系统的研究和报导,尤其是缺乏一个水貂病毒性肠炎脏器灭活苗的制造及检验规程。为了填补这方面的空白,我们开展了本项课题的研究。现将研究结果摘要报导如下: 1、分离出一株具有良好免疫原性及抗原性的水貂肠炎病毒,定名为MEV—DL1。此毒株给水貂肠炎脏器灭活苗的研究打下了可行的基础。 1)MEV—DL1种毒的效价为1024×(HI     

水貂病毒性肠炎组织灭活菌的研制

1983年某地引入丹麦水貂导致水貂病毒性肠炎爆发。为控制该病,我们进行了水貂病毒性肠炎组织灭活菌的研制,在生产上取得一定的经济效益。报告如下。一、灭活菌的制作(一)病料处理:取病料除去被膜及结     

水貂细小病毒性肠炎的诊断与防治

<正>水貂细小病毒性肠炎(Mink parvoviral enteritis),又称水貂传染性肠炎(Mink infectious enteritis),是由细小病毒科、细小病毒属的水貂肠炎病毒(Mink enteritis virus,MEV)引起的患貂以剧烈腹泻为主要临床特征的急性、烈性、高度接触性和高致死性传染病。该病是世界公认的危害养貂业较严重的病毒性传染病之一,给水貂养殖业造成了巨     

实验性水貂细小病毒性肠炎的病理形态学研究

健康水貂6只,3只作对照,另3只口服-20℃保存9个月的水貂细小病毒性肠炎粪毒。实验貂临床症状典型,小肠粘膜出现“气球样”上皮细胞,肠腺和绒毛上皮细胞广泛变性、坏死、脱落,胞浆内可见嗜酸性小体;胞核可见两种类型Cowdry A型包涵体;在肠系膜淋巴结、骨髓、脾和肾上腺也观察到了核内包涵体。在小肠绒毛上皮细胞膜上和肠腺腺腔中发现大量G-小杆菌。同时,用扫描电镜观察了各肠段粘膜表面的变化;用透射电镜研究了空肠前段粘膜上皮细胞中水貂细小病毒(MPV)的形态发生及其所引起的超微病变,发现核仁及其相随染色质参与了核内包涵体的形成。     

水貂病毒性肠炎快速诊断盒和水貂肠炎病毒疫苗质量快速检验盒研制成功

北京军区后勤部军马防治检验所病毒免疫室,将MEV无血清细胞培养活毒抗原应用于MVE微量HA/HI实验室诊断及MEV含量和灭活疫苗免疫效力检验已取得成功;在系统筛选出HA/HI试验最佳条件的基础上,研制成功了具有敏感、准确、简便、     

水貂阿留申病对犬瘟热及细小病毒性肠炎疫苗免疫的影响

对81份水貂血样进行了水貂阿留申、犬瘟热及细小病毒性肠炎的抗体进行检测,并对检测结果进行了对比分析,表明阿留申抗体阳性水貂的犬瘟热及细小病毒性肠炎抗体合格率、均值,均远低于阿留申抗体阴性貂,验证了阿留申病对水貂的免疫应答有较为明显的影响。